$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с размороженной культуры Mycobacterium bovis BCG lux, генетически модифицированного биолюминесцентного штамма аттенуированной Mycobacterium bovis, экспрессирующего репортерный фермент люциферазу.
Инокулируйте суспензию в культуральную колбу, содержащую питательную среду с добавлением антибиотика. Инкубировать. БЦЖ Люкс содержит ген устойчивости к гигромицину, способствующий его выживанию и росту.
После инкубации приготовьте подходящие разведения культур с помощью буфера в люминометром. Переложите на люминометр, загруженный длинноцепочечным раствором алифатической альдегидной подложки. Во время прогона альдегид вводится в суспензию микобактерий, которая проникает в клетки.
Бактериальная люцифераза катализирует окисление эндогенного восстановленного мононуклеотида флавина и альдегида, что приводит к излучению сине-зеленого света. Измеренная интенсивность биолюминесценции указывает на метаболическую активность БЦЖ люкс и коррелирует с показателем жизнеспособных бактерий или колониеобразующих единиц, КОЕ.
Далее центрифугируют оставшуюся культуру микобактерий. Ресуспендируйте микобактериальную гранулу в буфере, содержащем неионогенное поверхностно-активное вещество, чтобы предотвратить слипание микобактерий.
Используя измерения биолюминесценции, разбавьте суспензию для получения желаемой плотности клеток. Приготовьте серийные разведения микобактерий и нанесите их на тарелки с добавленным гигромицином питательным агаром. Инкубируют, позволяя BCG lux образовывать колонии.
Рассчитайте КОЕ для подтверждения корреляции с интенсивностью биолюминесценции. Приготовленный инокулюм БЦЖ люкс может быть использован для исследования инфекций.
Для начала разморозьте замороженный 1,2-миллилитровый глицериновый запас Mycobacterium bovis BCG lux. Монреальский вакцинный штамм трансформировался с помощью челночной плазмиды PSMT-1, несущей гены luxAB. В маркированную 250-миллилитровую колбу Эрленмейера закиньте 15 миллилитров бульона Middlebrook 7H9 размороженной 1,2-миллилитровой аликвотой BCG lux.
Поместите колбу в герметичный контейнер биобезопасности и инкубируйте при температуре 37 градусов Цельсия в орбитальном вибростенде со скоростью 220 об/мин в течение 72 часов. После инкубации приготовьте от одного до 10 разведений культуры в фосфатно-солевом буфере в люминометных трубках. Завихрите, и загрузите трубки люминометра в люминометр.
Загрузите подложку с 1% n-децилальдегидом в абсолютном этаноле в платформу инжектора и измерьте биолюминесценцию. Преобразуйте биолюминесценцию в колониеобразующие единицы, чтобы проверить рост культуры люкс БЦЖ.
Переложите культуру в центрифужную пробирку и центрифугируйте при 2175 переданных g в течение 10 минут при комнатной температуре, чтобы гранулировать клетки. Сбросить надосадочную жидкость в соответствующее дезинфицирующее средство с известной микобактерицидной активностью. Промойте клеточную гранулу дважды в 50 миллилитрах PBS-T центрифугированием при 2175 г в течение 10 минут, чтобы предотвратить слипание бактерий.
После окончательной промывки сцедите отработанную надосадочную жидкость и ресуспендируйте клеточную гранулу микобактерии в необходимом объеме PBS-T, чтобы разбавить суспензию микобактерий до желаемой плотности клеток. Затем приготовьте 10-кратное серийное разведение инокулюма в 24-луночных планшетах с использованием PBS-T.
Выложите по 10 микролитров каждого разбавления на агаровые пластины Middlebrook 7H11 в двух экземплярах, чтобы подсчитать количество КОЕ в инокуляте.