$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Начните с обезболенной мыши-реципиента, предварительно облученной для подавления иммунной системы хозяина.
Получение гемопоэтических стволовых клеток от генетически иной донорской мыши для имитации аллогенной трансплантации стволовых клеток.
Удалите донорские Т-клетки с помощью магнитных шариков.
Введите эту истощенную Т-клетками суспензию в ретробульбарное пространство мыши-реципиента.
Трансплантированные клетки попадают в кровоток, мигрируют в сосуды костного мозга и с помощью молекул адгезии проникают в нишу, инициируя кроветворение.
Введите Т-лимфоциты селезенки от аллогенной донорской мыши в ретробульбарное пространство реципиента, чтобы индуцировать иммунную перекрестную реактивность.
Эти аллореактивные Т-клетки мигрируют в различные ткани.
Поверхностные рецепторы Т-клеток связываются с антигенами клеток-реципиентов, распознавая их как чужеродные.
Это запускает каскад сигнальных событий внутри Т-лимфоцитов, что приводит к их активации.
Активированные Т-клетки запускают воспалительный каскад, характеризующийся привлечением дополнительных иммунных клеток, которые в совокупности повреждают ткани хозяина, что приводит к развитию реакции «трансплантат против хозяина».
Через день после полного облучения тела мышей-реципиентов BALB/c поместите CD45.1/Ly5.1 B6. Мышь-донор SJL находится в положении лежа на чистой рабочей оболочке, и с помощью одного 13-сантиметрового изогнутого и зазубренного кончика щипцов Semken приподнимает шерсть на одну ахиллесову пяту.
С помощью закаленных 8,5-сантиметровых тонких ножниц с прямыми кончиками разрежьте кожу между щипцами и одной пяткой, удлиняя разрез краниально, чтобы облегчить удаление кожи и шерсти с задних конечностей. Когда кожа будет снята с задних конечностей, разрежьте каждый тазобедренный, голеностопный и коленный суставы.
Храните бедро и голень каждой задней конечности в одной 92-миллиметровой чашке Петри, наполненной PBS, на льду и осторожно удаляйте как можно больше мышц из каждой кости, перенося каждую очищенную бедренную и большеберцовую кости в 50-миллилитровую пробирку со стерильной средой RPMI 1640 на влажном льду.
Чтобы изолировать костный мозг, перенесите по одной кости за раз в новую 92-миллиметровую чашку Петри, наполненную свежей средой RPMI 1640, и с помощью скальпеля отрезайте концы каждой кости. Затем с помощью 1-миллилитрового шприца, оснащенного иглой 26-го калибра, промывайте кости одним миллилитром свежей среды за один раз в 50-миллилитровую пробирку для сбора, содержащую пять миллилитров среды.
Когда все кости будут промыты, осторожно несколько раз пипетируйте рассыпчатые кусочки костного мозга вверх и вниз, чтобы получить одноклеточную суспензию. Перед фильтрацией клеток через сетчатый сетчатый сетчатый фильтр толщиной 40 микрон в новую 50-миллилитровую пробирку для сбора, гранулируйте клетки центрифугированием и ресуспендируйте клетки в пяти миллилитрах буфера для лизиса хлорида аммония для трехминутной инкубации при комнатной температуре. По окончании инкубации остановите реакцию с 10 миллилитрами PBS и снова центрифугируйте клетки.
Повторно суспендируйте гранулу в двух миллилитрах свежей PBS для подсчета и отложите аликвоту 6 x 106 клеток для последующего проточного цитометрического анализа. Затем используйте коммерчески доступный набор для очистки клеток для магнитного истощения CD90.2-положительных Т-клеток из суспензии одиночных клеток костного мозга в соответствии с инструкциями производителя и отложите аликвоту 1 x 106 клеток обедненного Т-клетками элюата для последующего проточного цитометрического анализа чистоты и состава клеток до и после разделения.
Затем с помощью одномиллилилитрового шприца, оснащенного иглой 30-го калибра, введите 5 x 10 клеток костного мозгас 5 Тл-клетками и 100 микролитров PBS внутривенно в ретробульбарное пространство венозного синуса каждого облученного животного-реципиента.
На следующий день поместите селезенку, собранную у донорского животного, на сетчатое ситечко толщиной 40 микрометров в 50-миллилитровой пробирке для сбора и с помощью поршня шприца вдавите ткань селезенки через ситечко в трубку. Промойте сетчатое фильтр и поршень PBS, чтобы собрать все спленоциты, и гранулируйте клетки центрифугированием после лизиса эритроцитов, как показано на рисунке. Повторно суспендируйте лейкоциты для подсчета и отложите аликвоту 6 x 106 клеток для последующего проточного цитометрического анализа.
Для полного выделения CD3-положительных Т-клеток из общего количества спленоцитов используйте имеющийся в продаже набор для очистки клеток в соответствии с инструкциями производителя и отложите аликвоту 1 x 106 CD3-положительных Т-клеток из положительной клеточной фракции для последующего проточного цитометрического анализа чистоты и состава клеток до и после разделения. Затем введите 7 x 105 аллореактивных CD3-положительных Т-клеток и 100 микролитров PBS внутривенно в ретробульбарное пространство каждой мыши-реципиента, чтобы вызвать РТПХ.