$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Во время инфекции альвеолярные макрофаги высвобождают макрофагальные внеклеточные ловушки или МЕТ для уничтожения патогенов.
МЕТ состоят из хроматиновых волокон в комплексе с пептидиларгининдеиминазами, ЗПА, матриксными металлопротеиназами и цитруллинированными гистонами.
Чтобы визуализировать МЕТ в макрофагах из жидкости бронхоальвеолярного лаважа, сначала центрифугируйте жидкость.
Поместите ресуспендированные элементы на покровные стекла в колодцы с несколькими лунками.
Макрофаги прикрепляются к покровным стеклам, в то время как другие клетки остаются во взвешенном состоянии и отбрасываются
от них.
Фиксируют макрофаги, сохраняя клеточную структуру. Проникайте в них для доступа к клеточным целям.
Добавьте блокирующие белки, препятствующие связыванию неспецифических антител.
Дополните первичным коктейлем антител, который связывается с целевыми цитруллинированными гистонами, ЗДА и матриксными металлопротеиназами соответственно.
Добавьте различные вторичные антитела, помеченные флуорофорами, которые связываются с первичными антителами-мишенями, связанными с белком MET.
Установите элементы с помощью монтажной среды, содержащей DAPI. DAPI, флуоресцентный краситель, окрашивает волокна хроматина.
С помощью конфокального микроскопа визуализируйте МЕТ, характеризующиеся флуоресцентными внеклеточными хроматиновыми волокнами с цитруллинированными гистонами, ЗПА и металлопротеиназами.
После получения макрофагов легких от человека и мышей с помощью бронхоальвеолярного лаважа, или БАЛ, согласно текстовому протоколу, используют трипановый синий и гемоцитометр для проведения подсчета жизнеспособных клеток на растворе БАЛ. Пипеткой от 1 до 4 х 105 макрофагов в 500 мкл питательной среды на покровные стекла в лунках 24-луночных планшетов. Затем инкубируйте клетки при температуре 37 градусов Цельсия в течение ночи, чтобы клетки прилипли.
Удалите питательную среду и используйте PBS для промывки клеток один раз. Затем добавьте 2% параформальдегид/периодат/лизин или фиксатор PLP и инкубируйте образцы в течение 10 минут. После использования PBS для кратковременной промывки клеток добавьте 0,2% Tween-20 в PBS и инкубируйте клетки в течение 20 минут.
Далее, чтобы заблокировать клетки, добавьте 10% куриную сыворотку в 5% BSA, разведенную в PBS, и инкубируйте образцы при комнатной температуре в течение 30 минут. Затем замените блочный раствор первичными и изотопными контрольными антителами в концентрации 1 к 100 и инкубируйте клетки при комнатной температуре в течение одного часа. После инкубации используйте PBS для промывания клеток перед добавлением соответствующих вторичных антител. Затем инкубируйте образцы в течение 40 минут при комнатной температуре.
После промывки ячеек в PBS смонтируйте образцы с помощью монтажной среды на основе DAPI. Затем визуализируйте образцы с помощью конфокального микроскопа.