RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Начните с многолуночной пластины с плоским дном, содержащей прилипшие мышиные микроглии — фагоцитарные клетки мозга.
Введите бессывороточную среду, содержащую иммунокомплексы. Эти комплексы состоят из антител, прикрепленных к фосфорилированным агрегатам тау-белка, которые образуются при некоторых нейродегенеративных заболеваниях.
Агрегаты Tau помечены pH-чувствительным зеленым флуоресцентным красителем.
Во время инкубации эти иммунокомплексы взаимодействуют с Fc-рецепторами клеток микроглии, способствуя их поглощению.
Эта эндосома, содержащая иммунокомплекс, сливается с лизосомой, образуя эндолизосому. Кислая среда эндолизосомы заставляет молекулы красителя флуоресцировать.
Промойте для удаления неинтернализованных иммунокомплексов.
Обработайте раствором трипсин-ЭДТА для отделения клеток.
Перенесите клеточную суспензию на U-образную донную пластину, расположенную над льдом, чтобы стабилизировать эндолизосому. Гранулируйте клетки и выбросьте надосадочную жидкость.
Промойте и повторно суспендируйте элементы с помощью буфера FACS.
Используя FACS, определите отдельные живые клетки и количественно оцените интенсивность зеленой флуоресценции для оценки поглощения тау-белка микроглией.
В первый день эксперимента подготовьте клетки BV-2, предварительно промыв их 1x PBS в колбе, в которой они были культивированы. Затем инкубируйте их с 0,05% трипсина ЭДТА при 37 градусах Цельсия и 5%CO2 до тех пор, пока они не отделятся от колбы. Ресуспендируйте клетки в культуральной среде путем пипетирования вверх и вниз от 3 до 5 раз.
Подсчитывают клетки и получают клеточную суспензию с конечной концентрацией 100 000 клеток на миллилитр в культуральной среде, содержащей 200 мкг гепарина на миллилитр. Добавьте 250 микролитров этой клеточной суспензии на лунку в 96-луночный планшет с плоским дном для культуры тканей. Инкубируйте планшет при температуре 37 градусов Цельсия с 5%CO2 в течение ночи.
После размораживания на льду предварительно приготовленных агрегатов pH-красителя Tau разбавьте их в 65 микролитрах в расчете на кондицию бессывороточной среды с получением 500-наномолярного раствора. Разведите антитела в 65 микролитрах бессывороточной среды для достижения удвоенной желаемой концентрации. Смешайте агрегаты красителя pH и антитела в 96-луночной U-образной нижней пластине. Закройте эту пластину для разбавления и инкубируйте в течение ночи при температуре 37 градусов Цельсия.
На следующий день удалите среду из 96-луночного планшета с клетками BV-2. Промойте ячейки в каждой лунке 100 микролитрами комнатной температуры 1x PBS. Снимите PBS с клеточной пластины BV-2. С помощью многоканальной пипетки перенесите 125 микролитров иммунокомплексов из разбавляющего планшета в каждую лунку 96-луночного клеточного планшета BV-2 и инкубируйте в течение двух часов при температуре 37 градусов Цельсия с 5%CO2.
После инкубации удалите иммунокомплексы из клеток и промойте клетки в каждой лунке 100 микролитрами комнатной температуры 1x PBS. После удаления 1x PBS добавьте 50 микролитров 0,25% трипсина-ЭДТА и инкубируйте в течение 20 минут при температуре 37 градусов Цельсия с 5%CO2. После этого добавьте 200 микролитров питательной среды и повторно суспендируйте лунку пипетированием вверх и вниз, чтобы отделить клетки.
Перенесите ячейки на 96-луночный U-образный планшет и центрифугируйте его при 400 умноженных на g в течение 5 минут при температуре 4 градуса Цельсия. Поставьте тарелку на лед и удалите среду. Добавьте 150 микролитров ледяного 1x PBS и снова центрифугируйте при 400 г в течение 5 минут при температуре 4 градуса Цельсия. Поставьте тарелку на лед и снова вымойте, удалив ранее добавленный 1x PBS и добавив 150 микролитров ледяного PBS на лунку. Снова центрифугируйте в тех же условиях.
Поставьте пластину на лед и промойте ячейки, удалив ранее добавленный PBS, и добавив 150 микролитров буфера FACS на лунку. Снова центрифугируйте при 400 г в течение 5 минут при температуре 4 градуса Цельсия. Поместите пластину на лед, удалите ранее добавленный буфер FACS и снова суспендируйте ячейки в 200 микролитрах буфера FACS на лунку. Немедленно приступайте к анализу с помощью FACS, чтобы получить 20 000 событий в затворе живой клетки.
Related Videos
12:27
Related Videos
13.5K Views
06:43
Related Videos
12.5K Views
05:51
Related Videos
6.2K Views
04:11
Related Videos
476 Views
02:19
Related Videos
337 Views
07:38
Related Videos
18.8K Views
08:37
Related Videos
7.2K Views
07:19
Related Videos
9.9K Views
10:46
Related Videos
11.5K Views
12:55
Related Videos
9.2K Views