-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Обнаружение модификации гистонов в листьях растений
Обнаружение модификации гистонов в листьях растений
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Detection of Histone Modifications in Plant Leaves

Обнаружение модификации гистонов в листьях растений

Full Text
25,187 Views
07:08 min
September 23, 2011

DOI: 10.3791/3096-v

Michal Jaskiewicz1,2, Christoph Peterhansel3, Uwe Conrath2

1Department of Botany,RWTH Aachen University, 2Department of Plant Physiology,RWTH Aachen University, 3Department of Botany,Leibniz University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Надежный и полезный подход для обнаружения модификации гистонов на конкретных растительных генов описано. Подход сочетает хроматин иммунопреципитации (чип) и в режиме реального времени количественной ПЦР. Она позволяет обнаруживать модификации гистонов на конкретных генов с роли в различных физиологических процессах.

Transcript

Следующий метод обеспечивает надежное и чувствительное обнаружение специфических модификаций хроматина в выбранных генах растений. Сначала сшивка модифицированных гистонов и ДНК с формальдегидом. Затем экстрагируйте и ультразвуком хроматин для облегчения иммунопреципитации с модификацией специфических антител.

Наконец, проанализируйте реакцию чипа путем связывания комплексов гистоновой ДНК и ген-специфичной количественной ПЦР в реальном времени. У растений этот подход может обеспечить молекулярные идеи, такие как специфические модификации гистонов, связанные с фотосинтезом C 4 в лабиринте и системным иммунитетом у Arabidopsis. Основное преимущество иммунопреципитации хроматина по сравнению с существующими методами, такими как марсианская спектрометрия, заключается в том, что этот метод позволяет обнаруживать модификации гистона на выбранных последовательностях в геноме растений.

Как правило, люди, плохо знакомые с этим методом, будут испытывать трудности, потому что протокол включает в себя несколько шагов, правильное выполнение которых является ключом к успеху процедуры. В этом видео мы используем анализ чипов, чтобы получить представление о дерегуляции экспрессии генов в модельном растении Arabidopsis ANA, демонстрируя процедуру mic yakovich, аспирант Для каждого образца начните с сбора двух граммов листьев arabidopsis и 50-миллилитровой пластиковой трубки. Заполните отметку 40 миллилитров буфером для сшивки и расположите специальную фильтрующую губку прямо над буферной поверхностью, чтобы листья оставались погруженными.

Теперь поместите образцы в влагопоглотитель с вакуумом и отфильтруйте в течение 10 минут. Чтобы остановить реакцию сшивания, добавляют 2,5 миллилитра двух молярных глицинов и перемешивают методом инверсии. Затем снова проникните на пять минут, продолжайте пылесосить, проникайте еще пять минут.

Затем сбросить жидкость во время уборки листьев на сито. Промыв листья дважды одним литром воды в пластиковом стакане, тщательно обсушите листья бумажными полотенцами, соберите листья в свежую пластиковую трубочку и заморозьте в жидком азоте. Храните образцы при температуре минус 80 градусов Цельсия до выделения хроматина.

С помощью жидкой азотной охлажденной ступки и пестика измельчить замороженные образцы до мелкого порошка. Переложите порошок в пластиковую тубу объемом 50 миллилитров. Суспендируйте порошок в 30 миллилитрах экстракционного буфера номер один, и инкубируйте в течение 15 минут при четырех градусах Цельсия на верхнем шейкере.

Пропустите суспензию через четыре слоя зеркальной ткани в свежую пластиковую трубку объемом 50 миллилитров. После центрифугирования выбросьте натин SUP. Затем с помощью кисти повторно суспендируйте гранулу в 50 микролитрах экстракционного буфера номер два, затем добавьте еще 950 микролитров экстракционного буфера.

Во-вторых, переложите суспензию в микропробирку объемом 1,5 миллилитра и центрифугируйте в течение 10 минут. Тем временем приготовьте две миллилитровые микропробирки, содержащие 1,5 миллилитра экстракционного буфера. Номер три.

Далее отбросьте надосадочную жидкость, чтобы постепенно суспендировать гранулу в 300 микролитрах экстракционного буфера. Номер три. Для начала добавьте небольшой объем буфера.

Номер три, подвесьте гранулу кистью, а затем добавьте оставшийся буфер. Теперь тщательно выложите образцы поверх подготовленных пробирок 1,5 миллилитров экстракционного буфера. В-третьих, гарантия того, что две фазы не будут смешивать образцы центрифуги в течение одного часа при температуре 16 000 раз G при четырех градусах Цельсия.

Выбросьте супнатин и суспендируйте гранулу хроматина малярной кистью в 300 микролитрах ультразвукового буфера звукового хроматина до размера ДНК примерно 400 пар оснований. При ультразвуковой обработке убедитесь, что хроматин не будет нагреваться выше примерно 30 градусов по Цельсию. Для защиты термочувствительных поперечных связей центрифугируйте образец ультразвука для осаждения нерастворенного материала и собирайте надосадочную жидкость в двух миллилитровых микропробирках, содержащих белокагарозу и буфер, связывающий антитела.

Добавьте 200 микролитров образца препарата хроматина. Инкубируйте пробирки в течение одного часа на верхнем шейкере. После центрифугирования соберите пробу надосадочной жидкости и аликвотируйте 30 микролитров белка.

А. А. А. А. к свежим пробиркам объемом 1,5 мл для определения концентрации хроматина в исходном материале. Резервируйте 40 микролитров обработанного ультразвуком хроматина. Затем добавьте 400 микролитров ультразвуковой суспензии хроматина к 30 микролитрам белка aros и соответствующее количество модифицированного специфического антитела инкубируйте в течение ночи в верхнем вибростенде при температуре четыре градуса Цельсия.

Соберите шарики в течение двух минут при 440 градусах G. Удалите надосадочную жидкость и выполните последовательные 10-минутные промывки гранул шариков с 900 микролитрами соответствующего буфера на верхнем встряхивателе. После окончательной промывки полностью удалите остатки буфера. Чтобы освободить ДНК от гистонов, добавьте 400 микролитров буфера для поперечной сшивки D к гранулам и 40 микролитров входного образца, сохраненного ранее в течение пяти минут в центрифуге, и инкубируйте при температуре 65 градусов Цельсия в течение ночи.

Теперь очистите ДНК с помощью коммерческого набора для очистки ДНК и выполните обычный локус-специфичный количественный R-T-P-C-R в режиме реального времени. В этом примере экспрессия защитного гена Arabidopsis ANA PR two была индуцирована бензодиасом оле, синтетическим аналогом растительного гормона салициловой кислоты. Результаты показывают, что активация экспрессии PR two связана с увеличением ацетилирования остатков лизина на гистонах H 3 и H 4 на промоторе PR two.

При попытке выполнить эту процедуру важно помнить, что добавление экстракционного буфера 1 к порошку листьев вызывает избыточное давление в закрытой пробирке fcon. Не забывайте время от времени открывать трубку. Также помните, что нельзя удалять кисть после суспензии гранул перед добавлением следующего буфера.

После просмотра этого видео у вас должно быть хорошее понимание того, как определять его модификации и простые рычаги, где образуются альдегидные сшивания ДНК и гистонов, выделение иммунопреципитации хроматина и количественное определение локус-специфической ДНК, чтобы ответить на ключевые вопросы о роли хроматина и его модификаций в различных областях биологии растений.

Explore More Videos

Молекулярная биология выпуск 55 хроматина хроматин иммунопреципитации чип модификации гистонов ПЦР завод молекулярной биологии контроль завод промоутер регуляции генов

Related Videos

Идентификация пост-трансляционных модификаций растительных белковых комплексов

10:07

Идентификация пост-трансляционных модификаций растительных белковых комплексов

Related Videos

24.3K Views

Эффективный метод для количественного, анализа одноклеточные хроматина Модификация и ядерной архитектуры в целом монтажа яйцеклеток в Arabidopsis

09:33

Эффективный метод для количественного, анализа одноклеточные хроматина Модификация и ядерной архитектуры в целом монтажа яйцеклеток в Arabidopsis

Related Videos

13.4K Views

Хроматина иммунопреципитации для идентификации Arabidopsis взаимодействий белок-ДНК В Vivo

12:36

Хроматина иммунопреципитации для идентификации Arabidopsis взаимодействий белок-ДНК В Vivo

Related Videos

20.9K Views

Полный рабочий процесс для анализа гистонов посттрансляционные модификации Использование снизу вверх Масс-спектрометрия: От Гистона добычи до анализа данных

11:02

Полный рабочий процесс для анализа гистонов посттрансляционные модификации Использование снизу вверх Масс-спектрометрия: От Гистона добычи до анализа данных

Related Videos

29.9K Views

Изоляция гистона от ткани листьев сорго для Top Down Масс Спектрометрия Профилирование потенциальных эпигенетических маркеров

07:10

Изоляция гистона от ткани листьев сорго для Top Down Масс Спектрометрия Профилирование потенциальных эпигенетических маркеров

Related Videos

4.8K Views

Геномный анализ распределения модификаций гистонов с использованием метода секвенирования иммунопреципитации хроматина в Magnaporthe oryzae

09:25

Геномный анализ распределения модификаций гистонов с использованием метода секвенирования иммунопреципитации хроматина в Magnaporthe oryzae

Related Videos

3.1K Views

Профилирование модификации H3K4me3 в растениях с использованием расщепления под мишенями и меткой

09:48

Профилирование модификации H3K4me3 в растениях с использованием расщепления под мишенями и меткой

Related Videos

4.3K Views

Количественная оценка гистонов на глобальном уровне посттрансляционных модификаций в 3D-модели клеточной культуры печеночной ткани

08:12

Количественная оценка гистонов на глобальном уровне посттрансляционных модификаций в 3D-модели клеточной культуры печеночной ткани

Related Videos

4.2K Views

Бесконтактная маркировка на основе AirID для белок-белкового взаимодействия в растениях

08:36

Бесконтактная маркировка на основе AirID для белок-белкового взаимодействия в растениях

Related Videos

2K Views

Исследование взаимодействий между гистон-модифицирующими ферментами и факторами транскрипции in vivo путем флуоресцентного резонансного переноса энергии

11:33

Исследование взаимодействий между гистон-модифицирующими ферментами и факторами транскрипции in vivo путем флуоресцентного резонансного переноса энергии

Related Videos

1.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code