1 октября 2007 г.
Мы демонстрируем простой метод для размещения клеток в нужное место на подложке. Этот метод модели клетки, щелкая силиконовых чипов содержащие лунки заполнены клеток на подложке. Этот метод обеспечивает новый способ модуляции диффузии и juxtacrine сигналов между клетками.
Я никель Митал. Я учусь в аспирантуре в лаборатории Боумана. Сегодня я расскажу об устройстве, разработанном двумя бывшими студентами нашей лаборатории, которое называется bio flip chip.
И это устройство позволяет доставлять клетки на подложку по выбору экспериментатора в конфигурацию по выбору экспериментатора. Так что само устройство, у нас одно из них здесь очень простое. В основном он состоит из крошечных углублений в кусочке силикона.
Каждая скважина обычно рассчитана на одну ячейку, но при необходимости мы, конечно, можем сделать их больше. Конструкция устройства производится таким образом, что лунки расположены в том же порядке, в котором ячейки в конечном итоге окажутся на подложке. Так что само устройство выполнено с использованием фотографий мягкого лита.
В частности, мы используем PDMS, который представляет собой полидиметилсубоксан, и лепим его из кремниевой пластины. У нас здесь есть один из них. Таким образом, сама формовочная пластина изготавливается с использованием стандартной фотолитографии для создания фоторезиста SUA, который наносится на кремниевую пластину.
Итак, в двух словах, клетки переносятся на выбранный субстрат путем заполнения этими клетками лунок на био-флип-чипе. Затем мы наносим чип на выбранную подложку, часто на тканевую культуру полистирола. И, наконец, мы переворачиваем комбинацию, позволяя клеткам выпасть из лунок на субстрат.
Меня зовут Стефани Флавин. Я являюсь студентом-исследователем в лаборатории Голдмана, и сегодня я продемонстрирую, как использовать биофлип-чип для моделирования клеток, сделанных накануне. Мы хотим провести эксперимент по выкройке.
Мы прикрепим PDMS плазмой к стеклянному предметному стеклу размером один дюйм на один дюйм. А затем замачиваем чип на ночь, хорошо вниз и раствор PBS. Мы также вырежем прокладки, которые будут использоваться в эксперименте по нанесению рисунка, и соберем связующие зажимы, которые также будут использоваться.
Нанесите 200 микролитров BSA на поверхность каждой микросхемы. Взбалтывайте поверхность чипа наконечника пипетки, чтобы удалить пузырьки и позволить раствору BSA заполнить лунки. Оставьте чипы под капотом на один час в ячейках для прохождения ультрафиолетового света, как обычно.
Через час отсадите раствор BSA из чипов и выверните каждую микросхему с 200 микролитрами PBS, нанесите 200 микролитров раствора пассажной ячейки с плотностью от 10 до шести клеток на мил. После пяти-10 минут ожидания, когда клетки попадут в лунки, промойте поверхность чипа PBS. Наклоните чип в один угол под углом примерно 15 градусов и медленно отпижьте раствор ячейки от нижнего угла чипа.
Верните чип на уровень и медленно добавьте 50 микролитров PBS в верхний угол. Повторите этап стирки столько раз, сколько необходимо. После того, как xls будет смыт с поверхности чипа, добавьте примерно 50 микролитров фильтрующего материала во внутреннюю прокладку посуды.
Добавьте носитель в верхнюю часть каждого чипа. Далее переверните чашку и наклоните и опустите на поверхность чип, начиная с одного угла. А затем расплющивая чип на чипсе, прижимаем блюдо к чипсу так, чтобы избежать образования пузырьков между блюдом и чипсом.
Добавьте зажимы для связующего с каждой стороны чипа, чтобы закрепить его на месте. И снимите ручки с каждого зажима для связывания, чтобы при переворачивании чипса он сидел ровно на чашке, переместите чип в инкубатор и быстро переверните, избегая и избегая всех ненужных движений.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном исследовании представлен новый метод позиционирования клеток на подложке с использованием устройства под названием био флип чип. Переворачивая силиконовый чип с микробьелами, заполненными клетками, на подложку, исследователи могут эффективно контролировать расположение клеток, улучшая модуляцию сигнализации между клетками.
Precise spatial control of cell populations enables mechanistic interrogation of diffusible and juxtacrine signaling pathways critical for target validation in stem cell-based disease models. The Bio Flip Chip provides a substrate-agnostic, chemistry-preserving method to pattern defined cellular microenvironments, supporting reproducible assay development for phenotypic screening. This approach enhances predictive confidence in early discovery by reducing variability in cell-cell contact and paracrine factor exposure, thereby improving translational continuity from in vitro models to preclinical validation.
The Bio Flip Chip integrates into early discovery workflows by enabling reproducible patterning of stem cells prior to compound exposure, supporting hypothesis-driven screening and mechanistic follow-up in lead optimization.