RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Возьмем, к примеру, мышь под наркозом с обнаженными ганглиями заднего корешка L4 и L5, содержащими тела сенсорных нейронов.
Загрузите в пипетку для микроинъекций РНК-конструкции, помеченные флуорофорами, которые регулируют регенерацию аксонов, и индикаторный краситель.
Впрыскивать смесь в ДРГ.
С помощью электродов электропорации подайте электрические импульсы на ДРГ.
Это разрушает мембраны клеточных тел сенсорных нейронов, создавая поры, которые позволяют конструкциям проникать в цитоплазму, облегчая трансфекцию.
Зашите разрез и дайте мыши восстановиться.
Через несколько дней повторно проведите обезболивание и закрепите мышь.
Сделайте разрез сбоку от средней линии слева. Рассеките мышцы, чтобы обнажить седалищный нерв.
Раздавите нерв, чтобы травмировать аксоны сенсорных нейронов. Отметьте участок шовным узлом.
Зашите разрез и дайте мыши восстановиться.
Трансфицированный конструирует целевые мРНК в телах клеток сенсорных нейронов DRG, временно модулируя продукцию белка для улучшения регенерации сенсорных аксонов после травмы.
Для инъекции DRG загрузите плазмиды ДНК или олигоны РНК в стеклянную капиллярную пипетку. Затем осторожно вставьте кончик пипетки из капиллярного стекла в ДРГ. И постепенно вводите 1 микролитр раствора ДНК-плазмид или олигон РНК с помощью системы дозирования внутриклеточных микроинъекций.
Для электропорации следует аккуратно зажать целевую ДРГ электродами и подать 5-угольные электрические импульсы с помощью системы электропорации. Впоследствии закройте мышцу, затем кожу слоями капроновыми нитями. Через два-три дня после электропорации DRG обезболите мышь внутрибрюшинно, прикрепите ее конечности к пробковой доске и сделайте разрез в 1 сантиметр в 0,5 сантиметра слева по средней линии.
Затем разрежьте мышцы, такие как большая ягодичная мышца и грушевидная мышца в продольном направлении. Затем обнажите сегмент седалищного нерва между большим седалищным отверстием и седалищной выемкой. Раздавите нерв микрохирургическими щипцами в течение 12 секунд и отметьте место раздавливания нейлоновым эпиневральным швом. После этого закройте мышечные и кожные слои нейлоновым швом.
Related Videos
05:40
Related Videos
9.2K Views
09:48
Related Videos
18.6K Views
10:45
Related Videos
3.8K Views
05:26
Related Videos
15.8K Views
09:41
Related Videos
16.5K Views
09:42
Related Videos
27.1K Views
02:30
Related Videos
102 Views
02:40
Related Videos
175 Views
04:38
Related Videos
383 Views
02:59
Related Videos
248 Views