-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Immunology and Infection
Заражение эмбрионов данио рерио с внутриклеточные бактериальные патогены
Заражение эмбрионов данио рерио с внутриклеточные бактериальные патогены
JoVE Journal
Immunology and Infection
This content is Free Access.
JoVE Journal Immunology and Infection
Infection of Zebrafish Embryos with Intracellular Bacterial Pathogens

Заражение эмбрионов данио рерио с внутриклеточные бактериальные патогены

Full Text
44,621 Views
11:18 min
March 15, 2012

DOI: 10.3791/3781-v

Erica L. Benard1, Astrid M. van der Sar2, Felix Ellett3, Graham J. Lieschke3, Herman P. Spaink1, Annemarie H. Meijer1

1Department of Molecular Cell Biology, Institute of Biology,Leiden University, 2Department of Medical Microbiology and Infection Control,VU University Medical Center, 3Australian Regenerative Medicine Institute,Monash University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Прозрачный эмбрионов данио оказались полезными хостов модель для визуализации и функционально взаимодействия между врожденными исследование иммунных клеток и внутриклеточных бактериальных патогенов, таких как

Общая цель этой процедуры заключается в микроинъекции эмбрионов рыбок данио с флуоресцентными бактериями для визуализации взаимодействия с иммунными клетками хозяина в реальном времени. Это достигается путем предварительной подготовки и загрузки инъекционной иглы бактериальными суспензиями. Затем эмбрионы помещаются в стадию и выравниваются на инъекционной пластине.

Затем бактериальный инокулюм вводится путем для достижения либо местной, либо системной бактериальной инфекции. Наконец, эмбрионы монтируются и визуализируются эмбрионы. В конечном счете, могут быть получены результаты, которые показывают внутриклеточную локализацию бактериальных патогенов внутри флуоресцентных фагоцитов прозрачного эмбрионального хозяина данио-рерио с помощью флуоресценции и конфокальной микроскопии.

Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области иммунологии, потому что модель эмбриона рыбки данио очень мощна для визуализации взаимодействия патогенов хозяина в жизни. После вытягивания стеклянных микрокапиллярных игл и скоса кончиков под углом 45 градусов поместите эмбрионы рыбок данио через 28 часов после оплодотворения, проверив постоянное кровообращение. Начало пигментации в глазу, прямой хвост и сердце, расположенное вентрально к глазу.

После того, как эмбрионы будут обезболены, используйте наконечник микрозагрузчика, чтобы загрузить иглу заранее подготовленным бактериальным инокулянтом. Установите заряженную иглу на микроманипулятор, подключенный к стойке, и расположите его под стереомикроскопом. Установите время впрыска на 0,2 секунды и компенсационное давление на 15 Гектор Паскалей.

Отрегулируйте давление впрыска в диапазоне от 700 до 900 Гектора Паскалей, чтобы получить правильный объем инъекции для используемой иглы. Перед введением установите микроманипулятор с заряженной иглой в правильное положение. Поместите обезболенные эмбрионы на плоскую пластину для инъекций с 1%-ной агарозой и удалите излишки воды из яиц.

Затем используйте инструмент для петли для волос, чтобы выровнять эмбрионы для каждой инъекции. Перемещайте пластину вручную во время инъекций, чтобы ориентировать эмбрионы так, чтобы их хвосты были направлены к кончику иглы. Поместите кончик иглы непосредственно над зубчатой веной рядом с урогенитальным отверстием.

Проткните перидерму кончиком иглы и введите желаемую дозу флуоресцентно меченных бактерий. Мы используем около 250 колониеобразующих единиц или КОЕ сальмонеллы typhimurium и около 120 КОЕ mycobacterium marum. Введенная бактериальная суспензия будет следовать за кровотоком через кожуховую вену к кардиомонитору, если инъекция была выполнена правильно, путем проверки расширения объема сосудистой системы сразу после пульса.

Часто проверяйте, чтобы объем инъекции оставался неизменным во время эксперимента. Чтобы обеспечить контроль за консистенцией инъекций на протяжении всего эксперимента, введите каплю бактерий непосредственно в каплю стерильного PBS на бактериальной питательной среде. Примерно после каждой 30-й инъекции эмбриона выкладывайте эту каплю и подсчитывайте колонии бактерий после инкубации.

Чтобы определить КОЕ в объеме инъекции, используйте флуоресцентный стереомикроскоп для наблюдения за отдельными флуоресцентными клетками штирии, циркулирующими в кровотоке непосредственно после инъекции, и отбраковывайте эмбрионы, которые не были введены должным образом. Флуоресцентные агрегаты бактерий M. marum должны быть заметны через два дня после заражения и со временем увеличиваться в размерах. Чтобы ввести в проток кювье, выстройтесь под наркозом через два-три дня после оплодотворения эмбрионов.

Что касается инъекции в вену няньки под углом 45 градусов от дорсальной стороны эмбриона, введите иглу в начальную точку протока кювье. Только дорсально к месту, где проток начинает расширяться над желточным мешком для инъекции заднего желудочка мозга. Обезболите эмбрионы через 32 часа после оплодотворения их тыльной стороной к кончику иглы.

Введите иглу в задний желудочек мозга из переднего положения, не касаясь нейрогелия, чтобы ввести его в хвостовые мышцы. Поместите эмбрионы под наркоз через один-два дня после оплодотворения так, чтобы их хвост был направлен к кончику иглы, и с углом иглы примерно 65 градусов, введите их в мышцу над мочеполовым отверстием для введения глазных пузырьков. Ориентируйте обезболивание через два-три дня после оплодотворения эмбрионов так, чтобы хвостики были направлены в сторону иглы.

Вводите под углом 65 градусов и при низком давлении для инъекции в узелковый канатик в течение одного-двух дней. После оплодотворения эмбрионы с хвостом, направленным в сторону от иглы. Введите иглу через мышечную ткань хвоста в спинной мозг.

Для инъекции желтка от 16 до 1000 эмбрионов на клеточной стадии прокалывают иглу через корион в центр желтка, чтобы визуализировать инфекцию. Обезболивайте инфицированные эмбрионы в 1%-ной слоеной чашке Петри, покрытой яичной водой, содержащей трику. С помощью инструмента для петли для волос выровняйте эмбрионы в правильном положении для визуализации под флуоресцентным стереомикроскопом.

Можно наблюдать циркуляцию отдельных флуоресцентных клеток S tym в кровотоке сразу после инъекции. Если требуется положение, отличное от бокового обзора. Поместите эмбрионы в 1,5% метилцеллюлозу и используйте инструмент для волосяной петли, чтобы манипулировать эмбрионом в нужном положении, чтобы визуализировать инфекцию с помощью инвертированного конфокального микроскопа.

Положите каплю аэроса с низкой температурой плавления на тарелку со стеклянным дном. Поместите обезболенный эмбрион в аэрокаплю с ограниченным количеством яичной воды и используйте инструмент для петли для волос, чтобы манипулировать эмбрионом в нужном положении. Дайте аэро застыть и погрузите аэрокаплю в яичную воду, содержащую трику.

Теперь образец готов к конфокальной визуализационной инъекции бактерий salmonella typhimurium или Mycobacterium marum в кровяной остров эмбрионов в течение одного дня. Постоплодотворение приводит к быстрому фагоцитозу путем распространения макрофагами относительно крупных и ярко флуоресцентных DS. Штирийские бактерии с красной меткой могут быть визуализированы непосредственно с помощью стереофлуоресценции и конфокальной визуализации в течение двух часов. Постинфекция показывает, что многие бактерии фагоцитозно фуресцируют флуоресцентными макрофагами.

Инъекционная доза 250 КОЕ дикого типа штирии вызовет сильную провоспалительную реакцию и приведет к летальному исходу в течение суток. Напротив, внутривенное введение эрума приводит к персистирующей инфекции, при которой инфицированные макрофаги образуют плотные агрегаты, которые рассматриваются как начальные стадии гранулем, которые являются отличительным признаком туберкулеза. Конфокальная визуализация такого гранулемоподобного агрегата в трансгенной линии EG one EGFP через пять дней после заражения показывает внутриклеточный рост меченых M num бактерий с вишней.

Внутри зеленых флуоресцентных макрофагов бактерии могут быть введены в задний желудочек мозга, который представляет собой компартмент, лишенный макрофагов, через 32 часа после оплодотворения инъекция от 20 до 100 М меченых вишневых бактерий M. marum в этот компартмент приводит к быстрой инфильтрации макрофагов, которые фагоцитируют бактерии, как показано здесь. Использование трансгенного M-P-X-E-G-F-P введения примерно 20 КОЕ Штирии в отический везикулу приводит к привлечению нейтрофилов через три часа после инфицирования. Хотя эта реакция не наблюдается при контрольных инъекциях PBS, хорда, которая, по-видимому, устойчива к инфильтрации лейкоцитами, является разрешительным компартментом для роста мутантов эрума, которые сильно ослабляются при введении в другие ткани.

После введения дозы 2240 КОЕ бактерии распространяются в течение нескольких дней в эмбриональные ткани и образуют гранулемы, похожие на агрегаты. Аналогично тем, которые наблюдаются при обычном методе внутривенного введения. Пытаясь провести эту процедуру, важно помнить, что правильное определение стадии эмбрионов рыбок данио имеет решающее значение, потому что иммунная система эмбриона становится все более компетентной во время развития.

После этой процедуры могут быть выполнены другие методы, такие как профилирование транскриптома и иммуногистохимия, чтобы ответить на дополнительные вопросы, например, как врожденная иммунная система эмбриона реагирует на патогенные инфекции.

Explore More Videos

Иммунологии выпуск 61 данио рерио эмбриона врожденный иммунитет макрофаги инфекции сальмонеллы микобактерии микро-инъекции флуоресценции Danio рерио

Related Videos

Неинвазивная визуализация диссеминированный кандидоз в Личинки данио рерио

10:45

Неинвазивная визуализация диссеминированный кандидоз в Личинки данио рерио

Related Videos

15.3K Views

Внутрибрюшинная инъекция: метод доставки раствора в брюшную полость взрослой рыбки данио

02:53

Внутрибрюшинная инъекция: метод доставки раствора в брюшную полость взрослой рыбки данио

Related Videos

8.8K Views

Флуоресцентная визуализация бактериальной инфекции, ассоциированной с биоматериалом, у эмбрионов рыбок данио

02:39

Флуоресцентная визуализация бактериальной инфекции, ассоциированной с биоматериалом, у эмбрионов рыбок данио

Related Videos

315 Views

Анализ in vivo бактериальных инфекций, ассоциированных с имплантатами, с использованием эмбрионов рыбок данио

03:12

Анализ in vivo бактериальных инфекций, ассоциированных с имплантатами, с использованием эмбрионов рыбок данио

Related Videos

236 Views

Микроинъекция бактерий в хвостовую вену эмбрионов данио-религии

03:10

Микроинъекция бактерий в хвостовую вену эмбрионов данио-религии

Related Videos

33 Views

Выделение и культивирование бактерий из эмбрионов данио для оценки нагрузки на инфекцию

02:29

Выделение и культивирование бактерий из эмбрионов данио для оценки нагрузки на инфекцию

Related Videos

43 Views

Живое изображение взаимодействий хозяина и патогена в эмбрионах данио-рерио, инфицированных Mycobacterium abscessus

02:18

Живое изображение взаимодействий хозяина и патогена в эмбрионах данио-рерио, инфицированных Mycobacterium abscessus

Related Videos

26 Views

Расшифровка и визуализации патогенез и запи- Микобактерии abscessus У эмбрионов данио рерио

10:38

Расшифровка и визуализации патогенез и запи- Микобактерии abscessus У эмбрионов данио рерио

Related Videos

11K Views

Данио рерио эмбриона модель визуализации Vivo и связанные прижизненной анализ биоматериала стафилококк инфекций

10:04

Данио рерио эмбриона модель визуализации Vivo и связанные прижизненной анализ биоматериала стафилококк инфекций

Related Videos

7.5K Views

Визуализация макрофаг Lytic Cell Смерти во время микобактериальной инфекции в эмбрионах зебрафиш а через интравитальную микроскопию

06:49

Визуализация макрофаг Lytic Cell Смерти во время микобактериальной инфекции в эмбрионах зебрафиш а через интравитальную микроскопию

Related Videos

6.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code