ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Авторы хотели бы поблагодарить Боба Фримена для обучения и Kirschner лабораторию для использования лягушка-центр и члены лаборатории Ван Vactor за поддержку. Мы благодарим Nikon Imaging Центр Медицинской школы Гарварда за помощью световой микроскопии для изображения на рисунке 1. Эта работа финансировалась в следующей редакции: АЯРБ NIH общение и NIH K99 общение с LAL, фундаментальной науки партнерства финансирования ( <a href="https://bsp.med.harvard.edu/" target="_blank">https://bsp.med.harvard.edu/</a> ) для AEF, и NIH RO1 NS035909 для DVV

<ol><li>Lowery, L. A., Van Vactor, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+trip+of+the+tip%3A+understanding+the+growth+cone+machinery%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The trip of the tip: understanding the growth cone machinery.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 10, 332-343 (2009).</li>
<li>Buck, K. B., Zheng, J. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+cone+turning+induced+by+direct+local+modification+of+microtubule+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Growth cone turning induced by direct local modification of microtubule dynamics.</a> J. Neurosci. 22, 9358-9367 (2002).</li>
<li>Lee, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+microtubule+plus+end+tracking+protein+Orbit%2FMAST%2FCLASP+acts+downstream+of+the+tyrosine+kinase+Abl+in+mediating+axon+guidance%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">The microtubule plus end tracking protein Orbit/MAST/CLASP acts downstream of the tyrosine kinase Abl in mediating axon guidance.</a> Neuron. 42, 913-926 (2004).</li>
<li>Santiago-Medina, M., Myers, J. P., Gomez, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+adhesion+and+signaling+dynamics+in+Xenopus+laevis+growth+cones%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Imaging adhesion and signaling dynamics in Xenopus laevis growth cones.</a> Dev. Neurobiol. , (2011).</li>
<li>Tanaka, E. M., Kirschner, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microtubule+behavior+in+the+growth+cones+of+living+neurons+during+axon+elongation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Microtubule behavior in the growth cones of living neurons during axon elongation.</a> J. Cell Biol. 115, 345-363 (1991).</li>
<li>Tanaka, E., Kirschner, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+microtubules+in+growth+cone+turning+at+substrate+boundaries%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The role of microtubules in growth cone turning at substrate boundaries.</a> J. Cell Biol. 128, 127-137 (1995).</li>
<li>Tanaka, E., Ho, T., Kirschner, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+microtubule+dynamics+in+growth+cone+motility+and+axonal+growth%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The role of microtubule dynamics in growth cone motility and axonal growth.</a> J. Cell Biol. 128, 139-155 (1995).</li>
<li>Gomez, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Working+with+Xenopus+spinal+neurons+in+live+cell+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Working with Xenopus spinal neurons in live cell culture.</a> Methods Cell Biol. 71, 129-156 (2003).</li>
<li>Sive, H. L., Grainger, R. M., Harland, R. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSive%2C+HL+%22Early+Development+of+Xenopus+laevis%3A+A+Laboratory+Manual+2010%22">Early Development of Xenopus laevis: A Laboratory Manual 2010</a>. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. (2010).</li>
<li>Cross, M. K., Powers, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Obtaining+Eggs+from+Xenopus+laevis+Females%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Obtaining Eggs from Xenopus laevis Females.</a> J. Vis. Exp. (18), e890(2008).</li>
<li>Mimoto, M. S., Christian, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manipulation+of+gene+function+in+Xenopus+laevis%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Manipulation of gene function in Xenopus laevis.</a> Methods Mol. Biol. 770, 55-75 (2011).</li>
<li>Lavery, D. L., Hoppler, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gain-of-function+and+loss-of-function+strategies+in+Xenopus%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Gain-of-function and loss-of-function strategies in Xenopus.</a> Methods Mol. Biol. 469, 401-415 (2008).</li>
<li>Nieuwkoop, P. D., Faber, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNieuwkoop%2C+PD+%22Normal+Table+of+Xenopus+Laevis+%28Daudin%29%22">Normal Table of Xenopus Laevis (Daudin)</a>. , Garland Publishing Inc. New York. (1994).</li>
<li>Guirland, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+cAMP+signaling+through+G-protein-coupled+receptors+mediates+growth+cone+attraction+induced+by+pituitary+adenylate+cyclase-activating+polypeptide%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Direct cAMP signaling through G-protein-coupled receptors mediates growth cone attraction induced by pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide.</a> J. Neurosci. 23, 2274-2283 (2003).</li>
<li>Spitzer, N. C., Lamborghini, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+development+of+the+action+potential+mechanism+of+amphibian+neurons+isolated+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">The development of the action potential mechanism of amphibian neurons isolated in culture.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 73, 1641-1645 (1976).</li>
<li>Turney, S. G., Bridgman, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laminin+stimulates+and+guides+axonal+outgrowth+via+growth+cone+myosin+II+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Laminin stimulates and guides axonal outgrowth via growth cone myosin II activity.</a> Nat. Neurosci. 8, 717-719 (2005).</li>
<li>Weinl, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+turning+of+Xenopus+retinal+axons+induced+by+ephrin-A5%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">On the turning of Xenopus retinal axons induced by ephrin-A5.</a> Development. 130, 1635-1643 (2003).</li>
<li>Knoll, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stripe+assay+to+examine+axonal+guidance+and+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Stripe assay to examine axonal guidance and cell migration.</a> Nat. Protoc. 2, 1216-1224 (2007).</li>
<li>Wheeler, G. N., Hamilton, F. S., Hoppler, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inducible+gene+expression+in+transgenic+Xenopus+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Inducible gene expression in transgenic Xenopus embryos.</a> Curr. Biol. 10, 849-852 (2000).</li>
</ol>

Нет конфликта интересов объявлены.

Xenopus Хепориз нейронных эксплантов отправить нейритов в очень надежным способом, через 24 часа после покрытия на ламинин / поли-лизин подложку, если условия являются приемлемыми. При этом подложка, конусы роста очень подвижны и могут достичь аксона длиной до 1 мм, расширения во всех направлениях наружу от эксплантов, хотя типичные длины 100 мкм и более. Если нейриты не растут, Есть ограниченное количество причин, чтобы это было так. Одна возможность заключается в том, что нейронная эксплантов не правильно при...

<table border="1"><tbody><tr><td> Название реагента </td><td> Компания </td><td> Номер по каталогу </td></tr><tr><td> Хорионический гонадотропин </td><td> Серебряный химических лабораторий </td><td> C-HCG-НА-10 </td></tr><tr><td> Цистеин </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 52-90-4 </td></tr><tr><td> mMessage mMachine комплект </td><td> Ambion </td><td> AM1340 </td></tr><tr><td> Капиллярные Borosil иглы 1,2 мм (наружный диаметр) х 0,9 мм (ID) </td><td> FHC </td><td> 30-31-0 </td></tr><tr><td> Ficoll </td><td> Сигма </td><td> F2637 </td></tr><tr><td> Дюмон # 5 Biologie Inox пинцет </td><td> Средства изобразительных наук </td><td> 11252-20 </td></tr><tr><td> Коллагеноз </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 9001-12-1 </td></tr><tr><td> Маттек блюд </td><td> Мат Tek корпорации </td><td> P35G-1.5-14-C </td></tr><tr><td> L-15 </td><td> Invitrogen </td><td> 21083-027 </td></tr><tr><td> Поли-L-ЛисиНебраска </td><td> Сигма </td><td> P-1399 </td></tr><tr><td> Ламинин </td><td> Сигма </td><td> L2020 </td></tr><tr><td> NT3 </td><td> Сигма </td><td> N1905 </td></tr><tr><td> BDNF </td><td> Сигма </td><td> B3795 </td></tr></tbody></table>

Нейронных культур эксплантов от<em&gt; xenopus Хепориз</em

Neural Explant Cultures from Xenopus laevis

Сложный процесс руководства аксонов в значительной степени обусловлено ростом конус, который является динамическим подвижные структуры на кончике растущего аксона. Во время аксона результат, рост конуса должна включать различные источники информации руководства кия, чтобы модулировать ее цитоскелета того, чтобы продвинуть вперед конуса роста и точно перемещаться, чтобы найти его конкретных целей 1. Как эта интеграция происходит на уровне цитоскелета только формируется, и изучение цитоскелета, белки и эффектор динамику в пределах конуса роста может позволить выяснение этих механизмов. Xenopus конусов Хепориз роста достаточно большие (10-30 мкм в диаметре) для выполнения высокой разрешение изображений живых динамики цитоскелета (например, 2-4) и легко изолировать и манипулировать в лабораторных условиях по сравнению с другими позвоночными. Лягушка является классическим модельной системой для развития исследований нейробиологии, и важно раннее понимание рост микрофон конусаrotubule динамика изначально были найдены с помощью этой системы 5-7. В этом методе 8, яйца собирают и оплодотворенных в пробирке, вводили РНК, кодирующей флуоресцентно отмеченных белки цитоскелета слияния или другими конструкциями манипулировать экспрессии генов, а затем позволили разработать на стадии нервной трубки. Нейронные трубы изолированы путем рассечения, а затем культивируют, и рост шишек на перерастает нейриты загружаются. В этой статье мы расскажем, как выполнять этот метод, цель которой заключается в культуре Xenopus Хепориз конусы роста для последующих изображений с высоким разрешением анализ. Хотя мы и предоставляем пример + TIP гибридного белка EB1-GFP, этот метод может быть применен к любому количеству белков выяснения их поведения в конус роста.

Культивирование нейронных эксплантов от расчлененного<em&gt; Xenopus Хепориз</em&gt; Эмбрионов, которые выражают флуоресцентных белков слияния позволяет изображений конуса роста динамики цитоскелета.

Нейронных культур эксплантов от<em&gt; Xenopus Хепориз</em

Сложный процесс наведения аксонов в значительной степени определяется конусом роста — динамичной подвижной структурой на кончике растущего аксона. В ходе...

Целью данной процедуры является культивирование конусов роста Xenopus laevis для последующего анализа изображений с высоким разрешением. Это достигается путем предварительного введения самкам лягушек гормона для стимуляции продукции икры. На втором этапе производится сбор и оплодотворение икры с последующим введением в нее мРНК или других интересующих конструктов.На следующий день эмбрионы препарируют, изолируют нейральные трубки, разрезают их и высевают на покровные стекла. Заключительным этапом является получение изображений растущих аксонов и конусов роста. В конечном итоге с помощью флуоресцентной микроскопии высокого разрешения можно проследить изменения локализации белков в конусах роста с течением времени.Визуальная демонстрация этого метода имеет решающее значение, так как освоить препарирование нервной трубки, основываясь только на описании в разделе «Методы» без непосредственного наблюдения за техникой, может быть сложно. Используйте икру самок лягушек, которым за 12–14 часов до этого ввели 400 единиц хорионического гонадотропина. Соберите икру в модифицированный раствор Рингера X marks.Затем проведите оплодотворение собранных X in vitro с использованием измельченных семенников, как было описано ранее, и по прошествии не менее 20 минут добавьте 0,1 XMMR. Удалите среду и инкубируйте эмбрионы в 2% цистеине в одном XMMR при pH 7,8 в течение трех-пяти минут для удаления желеобразной оболочки эмбрионов. Затем перенесите эмбрионы в стакан.Затем после финальной промывки промойте эмбрионы 0.1 XMMR или 0.1-кратным модифицированным физиологическим раствором от трех до пяти раз. Храните эмбрионы в 0.1 XMMR при комнатной температуре до момента инъекции или по мере необходимости. Для замедления развития перед инъекцией поместите эмбрионы при температуре от 14 до 18 °C.Разведите предварительно подготовленную кэпированную РНК до конечной концентрации от 50 до 200 пг/мл с помощью дважды дистиллированной воды, после чего храните на льду до момента микроинъекции. Затем подготовьте инъекционную иглу, вытянув боросиликатную капиллярную трубку с помощью пуллера или аналогичного прибора. Затем под микроскопом с помощью пинцета отломите кончик иглы под углом, чтобы придать ему форму пера, и заполните иглу 0,5–1 µL разведенного раствора РНК.Установите иглу на микроманипулятор; в данной работе используется инжектор PLI 100 PICO системы A medical system. Теперь поместите оплодотворенные эмбрионы на стадии от одной до четырех клеток в пластиковую чашку, содержащую 5% fol в 0,1 XMMR. Калибруйте объем инъекции для каждой новой микропипетки с помощью окулярного или предметного микрометра.Затем настройте пикоинжектор на подачу необходимого количества РНК для каждой инъекции. В данном случае используется объем инъекции 1 нл. Удерживайте эмбрионы пинцетом или, при необходимости, поместите их на платформу для фиксации и введите требуемый объем в бластомеры животного полюса.Распределите инъекции по нескольким точкам по всему эмбриону для обеспечения равномерного распределения РНК. Для эмбриона на четырехклеточной стадии в каждый бластемер делают одну или две инъекции, в то время как для эмбриона на двухклеточной стадии делают от двух до четырех инъекций. После инъекций перенесите обработанные эмбрионы в пластиковую чашку с 0.1 XMMR и оставьте их развиваться до стадии 20–23.В зависимости от желаемой скорости развития эмбрионы инкубируют при температуре от 14 до 22 °C; чашки для культивирования, обработанные PLL, покрывают ламинином в PBS в концентрации 10 µg/mL и выдерживают при 37 °C в течение одного часа. По истечении времени инкубации чашки трижды промывают PBS, стараясь не допускать контакта поверхности, покрытой ламинином, с воздухом после последнего промывания. PBS заменяют на культуральную среду.Наконец, подготовьте три чашки с агаровым покрытием, нанеся на дно культуральной чашки 1% агарозы в 0,1 XMMR и дав ей затвердеть. После затвердевания наполните одну чашку средой Штайнберга; вариабельность экспрессии инъецированной мРНК может привести к тому, что эмбрионы будут демонстрировать мозаичную флуоресценцию перед проведением диссекции. Проведите скрининг эмбрионов на наличие флуоресценции и выберите те, в которых флуоресцентный слитый белок экспрессируется в нервной трубке.Затем перенесите флуоресцентные эмбрионы на стадиях с 20 по 23 в пластиковую чашку с агаровым покрытием, содержащую среду Штайнберга. Поместите чашку под диссекционный микроскоп и с помощью тонкого пинцета удалите вителлиновую оболочку. Затем, удерживая эмбрион одним пинцетом, вторым сделайте надрез сбоку эмбриона, чтобы открыть его полую внутреннюю часть.Затем с помощью обоих пинцетов зажмите ткань между дорсальной и вентральной половинами эмбриона, чтобы разрезать его пополам и изолировать дорсальную часть, содержащую нейральную трубку. Поместите дорсальный эксплантат X в микроцентрифужную пробирку, содержащую коллагеназу в концентрации 2 mg/mL в среде Стейнберга, и поместите на ротатор на 15–20 минут. После этого перенесите дорсальный эксплантат в чашку с агаровым покрытием, заполненную свежей средой Стейнберга.Работая под микроскопом, препарируйте нервную трубку, отделяя ее от дорсального эпидермиса и вентральной хорды: осторожно просуньте кончик пинцета между эпидермисом и подлежащей тканью и медленно оттяните эпидермис назад. Затем одним пинцетом зафиксируйте ткань, а другим удалите ткани, окружающие нервную трубку. После этого перенесите препарированную нервную трубку в чашку с агарозным покрытием, наполненную свежей культуральной средой.После сбора нескольких нейральных трубок заострите вольфрамовые иглы или пинцеты, чтобы разрезать каждую трубку примерно на 20 фрагментов. Затем выложите фрагменты на культуральные чашки, покрытые ламинином, равномерно распределяя их по рядам. После высева нейральных трубок чашки нельзя перемещать, так как это нарушит прикрепление клеток.Инкубируйте вырезанный фрагмент нервной трубки на планшете при температуре от 20 до 22 °C. Для культивирования нейронов XUS lavis в течение 12–24 часов после посева использование инкубатора для культур клеток не требуется; визуализацию нейронов и конусов роста проводите при комнатной температуре. Имейте в виду, что вариабельная экспрессия РНК может привести к разному уровню флуоресценции в различных конусах роста.На данном DIC-изображении видны аксоны и нейриты, растущие из экспланта X в верхнем левом углу поля зрения. Масштабный отрезок на этом и последующих изображениях соответствует 10 microns. На этом видео с большим увеличением показан конус роста на кончике растущего аксона.Наконец, на этом видео с флуоресцентной микроскопии показана экспрессия EB1-GFP в конусе роста. В данном примере мы демонстрируем визуализацию слитого белка плюс-конца EB1-GFP. Данный метод с использованием нейральных эксплантатов может быть применен к любому количеству белков для изучения их поведения в конусе роста в процессе выроста нейритов.

neural-explant-cultures-from-xenopus-laevis

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Нейронауки

Черепной мезенхимы происходят драматические движения морфогенный которые, вероятно, представляет собой движущую силу для возвышения нервных...

Эксплантов анализа для оценки сотовой поведение черепно Мезенхима

Xenopus Хепориз обеспечивает идеальную модельную систему для изучения клетки спецификации судьбы и физиологические функции отдельных клеток сетчатки в первичной культуре клеток. Здесь мы представляем технику для рассечения тканей сетчатки и формирования первичных культур клеток, что загружаются кальция деятельности и проанализированы в гибридизация.

Dissection, культуры и анализ<em&gt; Xenopus Хепориз</em&gt; Эмбриональные ткани сетчатки

Этот протокол описывает улучшенную процедуру эксплантов, что включает в...

Экс внутриутробно электропорации и всего Экспланты полушарии: Простой экспериментальный метод исследования раннего развития коры

Методика пересадки "Экстремальный Передней домен" лицевой ткани между Xenopus Laevis эмбрионы была разработана. Ткань может быть перемещен из одного гена фоне выражения в другую, что позволяет изучение местных требований к черепно-лицевого развития и для взаимодействия между регионами лица сигнализации.

Трансплантация лица в<em&gt; Xenopus Laevis</em&gt; Эмбрионы

Этот протокол описывает, как препарировать премиграторных черепной нервный гребень (NC) от Xenopus Laevis neurulas. Эти экспланты можно покрыть на фибронектине и культивировали в пробирке, или привиты обратно в эмбрионы хозяев. Этот метод позволяет изучать механизмы НК эпителий-в-мезенхимы перехода, миграции и дифференциации.

Рассечение<em&gt; Xenopus Laevis</em&gt; Нервного гребня для<em&gt; В пробирке</em&gt; Эксплантата Культура или<em&gt; В естественных условиях</em&gt; Трансплантация

У эмбрионов Xenopus клетки с крыши бластоцеля являются плюрипотентными и могут быть запрограммированы на генерацию различных тканей. В этой статье мы описываем протоколы использования кровельных эксплантов амфибий в качестве системы анализа для исследования ключевых особенностей раннего развития нервной системы in vivo и in vitro.

Стволовых клеток, как<em&gt; Xenopus</em&gt; Эмбриональные эксплантов для изучения раннего развития, особенности нейронных<em&gt; In Vitro</em&gt; И<em&gt; В Vivo</em

Эпителиально-мезенхимальный переход (ЭМП) позволяет раку стать инвазивным. Для исследования ЭМП описана модель in vitro на основе нейральных стволовых клеток (НСК), лишенная сыворотки и ферментов. Эта стандартизированная система позволяет количественно и качественно оценить миграцию клеток, экспрессию генов и белков. Модель подходит для разработки лекарств.

Модель энзимов и бессывороточной Neural стволовых клеток культуры для ЕМТ Исследование Пригоден для обнаружения лекарственных средств

Мы представляем двухчастичную протокол, которая сочетает в себе флуоресцентную визуализацию кальция с гибридизацией на месте, позволяя экспериментатору соотносить закономерности активности кальция с профилями экспрессии генов на одноклеточном уровне.

Флуоресцентные изображения кальция и последующей на месте гибридизации для нейрональной характеристики прекурсоров в Xenopus laevis

Экспланты бластодерм рыбок данио генерируются путем выделения эмбриональных клеток из эндогенных сигнальных центров в раннем эмбрионе, производя относительно наивные кластеры клеток, которыми легко манипулировать и культивировать ex vivo. В этой статье приведены инструкции по изготовлению таких эксплантов и демонстрируется их полезность путем опроса ролей узловой сигнализации во время гаструляции.

Поколение наивных эксплантов Бластодерм из эмбрионов рыбок данио

Это видео демонстрирует, как протокол к дискриминации и перечислить добросовестных нервные стволовые клетки в смешанной популяции нейронных клеток-предшественников помощью нейронных колониеобразующих ячейки анализа.

Neural-колония Формирование анализа клеточной: Пробирной различать Добросовестный нервные стволовые клетки из нервных клеток-предшественников

Узнайте метод культивирования нейронных эксплантов Xenopus laevis для визуализации динамики ростковых конусов с помощью флуоресцентной микроскопии. Этот подход позволяет исследовать цитоскелетные изменения в реальном времени.

Нейронных культур эксплантов от

Больше видео