-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Контролируемые травма шейного Laceration у мышей
Контролируемые травма шейного Laceration у мышей
JoVE Journal
Medicine
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
Controlled Cervical Laceration Injury in Mice

Контролируемые травма шейного Laceration у мышей

Full Text
17,243 Views
07:28 min
May 9, 2013

DOI: 10.3791/50030-v

Yi Ping Zhang1, Melissa J. Walker2, Lisa B. E. Shields1, Xiaofei Wang2, Chandler L. Walker2, Xiao-Ming Xu2, Christopher B. Shields1

1Norton Neuroscience Institute,Norton Healthcare, 2Spinal Cord and Brain Injury Research Group, Stark Neurosciences Research Institute, Department of Neurological Surgery and Goodman and Campbell Brain and Spine, Medical Neuroscience Graduate Program, and Department of Anatomy and Cell Biology,Indiana University School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article describes a novel technique for creating a reproducible in vivo model of cervical spinal cord laceration injury in mice. The method utilizes spine stabilization and precise laceration using an oscillating blade, achieving high accuracy.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Spinal cord injury models
  • Experimental techniques

Background

  • Existing methods for spinal cord injury often result in incomplete or inaccurate lesions.
  • Previous techniques have led to issues such as contusion and excessive hemorrhage.
  • Accurate models are essential for studying axon regeneration and potential cures for spinal cord injuries.
  • The need for improved precision in creating spinal cord injuries is critical for research advancements.

Purpose of Study

  • To develop a reliable method for creating spinal cord laceration injuries in mice.
  • To enhance the accuracy of spinal cord injury models for better experimental outcomes.
  • To facilitate research into spinal cord injury recovery and treatment.

Methods Used

  • Mouse cervical spine stabilization using a specially designed device.
  • Posterior exposure of the cervical lamina and identification of the spinal cord.
  • Controlled laceration using an oscillating blade with precise depth measurement.
  • Post-operative care and assessment of injury precision.

Main Results

  • The technique allows for a controlled and precise laceration of the spinal cord.
  • Demonstrated high accuracy in creating lesions at specified depths.
  • Reduced complications associated with traditional injury methods.
  • Potential to revolutionize experimental spinal cord injury models.

Conclusions

  • This novel technique significantly improves the reproducibility of spinal cord injury models.
  • It addresses previous limitations in injury creation methods.
  • The method may enhance research into spinal cord injury recovery mechanisms.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of this new technique?
The main advantage is the high precision in creating spinal cord lacerations, reducing complications from previous methods.
How does the stabilization device work?
The stabilization device immobilizes the cervical spine, allowing for accurate laceration without displacement.
What are the implications of this research?
This research could lead to better understanding and treatment of spinal cord injuries, improving recovery outcomes.
What depth of injury can be achieved with this technique?
The technique allows for precise control over injury depth, with demonstrated accuracy down to 0.01 mm.
Who conducted this research?
The research was conducted by a team including a neurosurgeon and research scientists in the field.
What are the next steps in this research?
Future studies will explore the effects of these injuries on axon regeneration and potential therapeutic interventions.

Новый метод для создания воспроизводимых

Общая цель эксперимента заключается в создании воспроизводимого разрывного поражения спинного мозга мыши. Это достигается за счет обнажения шейной пластинки сзади при нахождении животного в аппарате травматологической системы Луисвилля. В качестве второго шага используется специально разработанное стабилизирующее устройство для фиксации целевого позвонка позвоночника мыши.

Далее определяется целевой спинной мозг между пластинчатыми дугами после удаления желтой связки в конце. Шейный дорсальный полусекция на глубине 0,75 миллиметра точно создается с помощью качающегося лезвия и микродрайвера. Основным преимуществом методики, которую мы разработали в лаборатории, является создание очень точного метода получения разрывной травмы спинного мозга.

Это важно, потому что методы, которые использовались до сих пор, то есть ножницы или скальпель, создали проблемы, которые являются неполными и неточными методами травмы спинного мозга. Теперь у нас есть методы, позволяющие избежать ушиба спинного мозга, смещения спинного мозга в сторону от разрывного устройства и чрезмерного кровоизлияния, которое происходит при травме спинного мозга. Используя эту технику, мы можем создать очень точный метод, который позволяет избежать метода визуальной оценки глубины повреждения спинного мозга.

Используя эту технику, мы чувствуем, что можем революционизировать методы экспериментальной травмы спинного мозга, используемые в модели разрыва, которая может быть по своей сути важна для регенерации аксонов, а также для поиска лекарства от травмы спинного мозга. Эинг Джанг, нейрохирург, который является нейрохирургическим научным сотрудником в нашей лаборатории, начинает эту процедуру со стерилизации следующих хирургических инструментов, двух-трех пар щипцов, трех пар микроножниц, иглы 30-го калибра, шовной нити micro URS, иглодержателя кожных зажимов и аппликатора клипс. Затем продезинфицируйте после этого стабилизатор позвоночника, обезболите мышь коктейлем из кетамина, ксилазина или триэтанола внутрибрюшинно.

Далее сбрейте волосы с шеи мыши. Очистите кожу раствором повидон-йода и 70%-ным спиртом. Затем перенесите мышь на операционный стол с помощью предварительно разогретой грелки.

Нанесите офтальмологическую мазь на глаза, чтобы предотвратить высыхание роговицы. После индукции анестетиком сделайте задний разрез кожи шейного отдела по средней линии от опута до подкожно-жировой клетчатки питомца нижнего шейного отдела позвоночника. Под микроскопом сделайте разрез кожи по средней линии между трапециевидными мышцами в точке С-2 и втяните полуфиналистку головные мышцы в боковом направлении.

Далее продлите рассечение средней линии мышцы слегка до Т-двух остистых отростков, который служит надежным ориентиром. Отделите мышцы от Т-двух остистых отростков. Затем удаляют хрящевую часть Т-двух остистых отростков.

После этого рассеките параспинальные мышцы от пластинчатых дуг с помощью микроножниц с обеих сторон от С четыре до Т два. Она начинается рядом с остистыми отростками и распространяется по обеим пластинчатым дугам до фасеточных суставов. После того как боковые грани обнажаются, поместите мышь на U-образный канал стабилизатора позвоночника мыши.

Затем поместите рычаги стабилизатора мыши из нержавеющей стали под открытые грани с обеих сторон. Как только рычаги будут на месте, затяните винты с накатанной головкой стальных рычагов, чтобы обездвижить позвоночник под микроскопом. Удалите flamum-связку между С-пятью и С-шестью пластинчатыми дугами, чтобы обнажить нижележащую твердую мозговую оболочку между межпластинчатым пространством.

Используйте иглу 30 калибра для создания небольшой dur otomy и микроножницы для расширения dur otomy. Теперь спинной мозг готов к контролируемому рваному поражению. При этом стабилизатор позвоночника и мышь помещаются на сцену системы травматологии Луисвилля, к которой прикреплено лезвие, положение которого контролируется микродрайверами.

Способен к трем диапазонам движений для выполнения поражения дорсального сечения HEMI между пятью-шестью пластинками C с плоской лопастью диаметром 2,3 мм, прикрепленной к осциллятору. Установите амплитуду качающегося лезвия на 0,5 миллиметра, так как более низкая амплитуда может уменьшить легкость полного разрыва шнура. Затем включите переключатель лезвия вибратора под микроскопом, поместите спинной мозг мыши непосредственно под вибрирующее лезвие.

Затем поднимите столик по направлению к качающемуся лезвию с помощью записи микродрайвера. Нулевое положение, когда лезвие едва касается тыльной вены спинного мозга, измеряется глубина разрыва спинного мозга относительно нулевого положения. Затем поднимите положение рабочей области с помощью микродрайвера.

Поворот ручки микродрайвера на 360 градусов поднимает сцену на 0,25 миллиметра. Таким образом, поражение дорсального геми-сечения диаметром 0,75 миллиметра создается путем трехкратного поворота ручки микродрайвера, когда лезвие начинает рвать спинной мозг, смазывать операционное поле солевым раствором. Как только заданная глубина будет достигнута, выключите переключатель вибратора, опустите столик, поддерживающий мышь, и зажим с режущего лезвия.

Удалите кровь путем орошения хирургическим раствором места операции. Затем высушите участок ватными ватными палочками, так как гемостаз обычно происходит в течение одной минуты. В конце снимите мышь со стабилизатора позвоночника и закройте кожу нержавеющей сталью.

Мишель зажимает. Шейный отдел позвоночника фиксируется путем помещения рук под боковые фасетки, а затем фиксации винтами с накатанной головкой, как показано на этом рисунке, твердая мозговая оболочка обнажается между слоистой оболочкой C пять-шесть C, шесть - семь и C seven - Tone без какого-либо удаления кости. Здесь показаны сагиттальные виды четырех разрывов спинного мозга на глубине 0,5, 0,8, 1,1 и 1,4 миллиметра.

Они свидетельствуют о высокой степени точности при использовании данной методики. Одной из проблем, которая была присуща возникновению травм спинного мозга, было отсутствие стабилизации шейного отдела позвоночника. Используя стабилизатор позвоночника, разработанный нашей группой, мы теперь можем создать абсолютно неподвижный шейный отдел позвоночника.

Это позволит усилить травму спинного мозга с помощью ушиба спинного мозга, инъекций спинного мозга, а также трансплантации клеток в спинной мозг для всех методов исследования спинного мозга.

Explore More Videos

Медицина выпуск 75 нейробиологии анатомии физиологии неврологии иммунологии инфекция хирургия нервной системы диагностика терапия хирургические процедуры оперативный методов расследования позвоночника повреждение спинного мозга SCI мышь рваная рана стабилизация аксональное регенерации травмы мышей животных моделях хирургические методы

Related Videos

Измененный Техника для лигирования коронарной артерии у мышей

05:47

Измененный Техника для лигирования коронарной артерии у мышей

Related Videos

26.8K Views

Прямое соединение шейных нервов для восстановления подвижности передних конечностей у мыши

02:21

Прямое соединение шейных нервов для восстановления подвижности передних конечностей у мыши

Related Videos

286 Views

Мышиной модели ишемии миокарда-реперфузии через перевязки левой передней нисходящей артерии

11:07

Мышиной модели ишемии миокарда-реперфузии через перевязки левой передней нисходящей артерии

Related Videos

41.4K Views

Фототромбоза-индуцированной ишемии как модель с повреждением спинного мозга у мышей

08:27

Фототромбоза-индуцированной ишемии как модель с повреждением спинного мозга у мышей

Related Videos

14.8K Views

Модель травматической травмы спинного мозга на мышах на мышах

07:59

Модель травматической травмы спинного мозга на мышах на мышах

Related Videos

11.8K Views

Индукция полной трансекции типа травмы спинного мозга у мышей

06:51

Индукция полной трансекции типа травмы спинного мозга у мышей

Related Videos

9.5K Views

Доклиническая контролируемая модель кортикального воздействия при травматическом кровоизлиянии, контузии и нейровоспалении

06:50

Доклиническая контролируемая модель кортикального воздействия при травматическом кровоизлиянии, контузии и нейровоспалении

Related Videos

2.4K Views

Murine Модель ишемической травмы сетчатки индуцированных переходных двусторонних общих сонной артерии окклюзии

05:20

Murine Модель ишемической травмы сетчатки индуцированных переходных двусторонних общих сонной артерии окклюзии

Related Videos

8.2K Views

Создание модели повреждения спинного мозга мышиным ушибом, основанной на минимально инвазивной технике

07:17

Создание модели повреждения спинного мозга мышиным ушибом, основанной на минимально инвазивной технике

Related Videos

6.4K Views

Создание модели синдрома центрального спинного мозга у мышей C57BL/6J

06:36

Создание модели синдрома центрального спинного мозга у мышей C57BL/6J

Related Videos

1.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code