11 сентября 2013 г.
Создание экспериментальных сетчатки отряды с воспроизводимым и устойчивой высоте отряда, и без субретинальной кровоизлияния, имеет важное значение для изучения патофизиологии потери фоторецепторов клеток в заболевания сетчатки и оценки потенциальных терапевтических вмешательств. Здесь мы сообщаем такой метод в деталях.
Общая цель данной процедуры заключается в создании экспериментальной отслойки сетчатки с воспроизводимой и стабильной высотой отслойки без возникновения субретинального кровоизлияния. Для этого сначала делают разрез временной конъюнктивы у заднего края лимба, чтобы отделить конъюнктиву от склеры. На втором этапе с помощью кончика иглы 30G выполняется самогерметизирующаяся склеральная инъекция и прокол роговицы.
Затем в субретинальное пространство вводится уринат натрия, чтобы отслоить нейросенсорную сетчатку от подлежащего ретинального пигментного эпителия. На заключительном этапе на рану склеры наносится цианоакрилатный клей, и конъюнктива возвращается в исходное положение, что снижает риск утечки урината натрия. В завершение проводится исследование глазного дна с использованием покровного стекла для подтверждения создания локальной отслойки сетчатки без субретинального кровоизлияния.
Существующие методы отслойки сетчатки у грызунов могут приводить к вариабельности высоты и устойчивости отслойки, что вызывает нестабильные показатели уровня гибели клеток. Благодаря данной методике можно создать воспроизводимую буллезную и стойкую отслойку сетчатки с пониженным риском возникновения субретинальных геморрагий, что позволяет получить надежную модель отслойки сетчатки у грызунов. Экспериментальная отслойка сетчатки у грызунов относительно проста в исполнении, имеет приемлемую временную динамику и весьма схожа с течением данного заболевания у людей.
Таким образом, это отличная модель для изучения механизмов гибели фоторецепторных клеток и методов терапии по предотвращению потери зрения. При регенеративных заболеваниях сетчатки, характеризующихся гибелью фоторецепторов при отслойке сетчатки, целесообразно создавать воспроизводимую отслойку без субретинального кровоизлияния. Это обусловлено тем, что увеличение продолжительности отслойки сетчатки или возникновение субретинального кровоизлияния могут повлиять на процесс гибели фоторецепторных клеток.
После наркотизации восьминедельной мыши подрежьте вибриссы животного, затем под хирургическим микроскопом расширьте зрачок раствором, содержащим 5% фенилефрина и 0,5% тропикамида. Удалите ресницы животного, примените местную анестезию, используя 0,5% офтальмологический раствор прокаина гидрохлорида. Поместите мышь в латеральное положение носом к хирургу, после чего сделайте разрез височной конъюнктивы у заднего края лимба, отделяя конъюнктиву от склеры с помощью пинцета.
Захватите конъюнктиву в области лимба, чтобы зафиксировать глаз. Затем, удерживая иглу 30 gauge срезом вверх, с помощью кончика иглы сформируйте туннель через склеру, проколов ее до достижения хориоидеи, не повреждая сетчатку.
Затем, удерживая иглу 30 G параллельно радужке, проколите роговицу, чтобы снизить внутриглазное давление. Теперь, направив срез иглы вниз, введите иглу 33 G, соединенную со шприцем Гамильтона объемом 10 µL, в субретинальное пространство и введите 3,5 µL урината натрия.
Это приведет к отслойке примерно 50% нейросенсорной сетчатки от подлежащего ретинального пигментного эпителия. С помощью пинцета надавите на роговицу вокруг места прокола, чтобы передняя камера глаза опорожнилась через прокол роговицы, затем с помощью хирургического целлюлозного зонда убедитесь в отсутствии утечки из склеральной раны, чтобы снизить риск вытекания раствора урината натрия. Нанесите цианоакрилатный клей на склеральную рану, после чего прикрепите конъюнктиву обратно на ее исходное место.
Используйте покровное стекло для осмотра глазного дна и подтверждения создания локального отслоения сетчатки без субретинального кровоизлияния. В завершение нанесите в глаз антибактериальную мазь для снижения риска инфицирования. Держите мышь на грелке для предотвращения переохлаждения организма.
После нормализации артериального давления верните животное в клетку, когда оно выйдет из состояния наркоза. Чтобы оценить устойчивость отслойки сетчатки, вызванной данным протоколом, на третий, седьмой и 14-й дни после индукции отслойки были изготовлены криосрезы.
Для каждой временной точки использовали шесть глаз; для визуализации срезов применяли окрашивание гематилином и эозином, при этом на каждом срезе наблюдалась отслойка сетчатки, достигающая хрусталика.
Ни в одном глазу не было обнаружено признаков инфекции или повреждения хрусталика. После освоения этой операции она может быть выполнена примерно за пять минут. При проведении данной процедуры важно аккуратно выполнять каждый шаг, чтобы избежать утечки натрия, выраженного субретинального кровоизлияния или повреждения хрусталика, так как все эти факторы могут привести к гибели рецепторных клеток в отслоившейся сетчатке. После просмотра этого видео вы должны получить четкое представление о том, как создавать экспериментальную отслойку сетчатки у грызунов с воспроизводимой и стабильной высотой отслойки без субретинального кровоизлияния.
В данной статье представлен метод создания экспериментальной отслойки сетчатки у грызунов, позволяющий добиться воспроизводимой и стабильной высоты отслойки без возникновения субретинального кровоизлияния. Эта методика имеет решающее значение для изучения потери фоторецепторных клеток при заболеваниях сетчатки и оценки эффективности потенциальных методов лечения.
Создание воспроизводимых моделей отслойки сетчатки без сопутствующего кровоизлияния имеет решающее значение для снижения рисков при валидации мишеней при регенеративных заболеваниях сетчатки. Данный метод позволяет проводить механистические исследования гибели фоторецепторных клеток и обеспечивает согласованную оценку терапевтических воздействий в рамках доклинических исследований.
Данная модель вписывается в континуум от этапа поиска до доклинических исследований, обеспечивая проверку гипотез на ранних стадиях поиска и предоставляя количественные показатели гистологического анализа для оптимизации соединений-лидеров и доклинической валидации.