February 28th, 2014
Маточно-трубное перенос эмбрионов использует маточно-трубное соединение в качестве барьера, чтобы предотвратить отток эмбриона, которые могут возникнуть при выполнении передачи матки. Вазэктомии мужчины обязаны получить псевдобеременных получателей переноса эмбрионов. Обсуждаются Оба метода.
Общей целью этой процедуры является перенос преимплантационных эмбрионов в матку псевдобеременного реципиента 2,5 DPC. Это достигается путем предварительного обнажения яичника, ОКТ и первого участка матки. Далее UCT прокалывается иглой.
Далее через отверстие, продвигающееся в просвет матки, вводится стеклянная капиллярная пипетка. Наконец, эмбрионы выпускаются в матку. В конечном счете, количество рожденных детенышей используется для показа выживаемости перенесенных эмбрионов до имплантации.
Основное преимущество этой методики перед таким методом, как перенос эмбрионов матки, заключается в том, что стенка матки не прокалывается, что позволяет избежать кровотечения и тока эмбриона. Все эксперименты на животных были одобрены комитетами по уходу за животными и их использованию в районе Белтсвилля в соответствии с рекомендациями Министерства сельского хозяйства США по уходу за животными и их использованию. После введения анестезии и анальгетиков самцу мыши с доказанной брачной эффективностью и подтверждения того, что животное правильно усыплено, поместите мышь на теплую сцену и с помощью электрических машинок для стрижки удалите шерсть из вентральной области между двумя воображаемыми поперечными линиями, расположенными на 0,5 сантиметра и 2,5 сантиметра выше пениса.
Используйте 10% повидон-йода и 70% этанол для дезинфекции выбритого участка. Затем, используя перевязочные зубчатые щипцы для удержания кожи в медиальной линии живота, выполните продольный разрез кожи диаметром от 10 до 15 миллиметров примерно на один сантиметр над половым членом. Затем используйте рассекающие зубчатые щипцы для удержания линейной альбы и ножницы для разрезания мышцы микро.
Рассекая зубчатые щипцы, захватывает подушечку для снятия яичка с одной стороны и тянет ее, чтобы обнажить обширные яички и придаток яичка. Обширная полоска расположена медиально по отношению к семенникам и на ней хорошо различима свободная трубка, при этом удерживая васты динов пламенными щипцами до тех пор, пока они не станут красными и используя их для разреза и прижигания васт динов в двух точках одновременно, при разрезе следует удалить примерно пятимиллиметровую часть и оставить два четко разделенных прижигаемых конца двигать яичко, эпи и обширное почтительное отношение обратно в брюшную полость и повторите процедуру на другом яичке. Затем с помощью пяти нулевых рассасывающихся швов сделайте один или два горизонтальных шва матраса в мышце и используйте один или два ножницы для ран для наложения швов на кожу.
После идентификации самца переместите его в клетку, помещенную на теплую сцену, и наблюдайте за ним, пока он не оправится от анестезии. Запишите возможные случаи, возникшие во время переноса вазэктомии, и добавьте антибиотик в питьевую воду. Чтобы подготовить манипуляцию с эмбрионом, стеклянной пипеткой, начните с полировки кончиков стеклянных капилляров.
Во избежание повреждения держателя пипетки. Размягчите среднюю часть стеклянного капилляра, нагревая его тонким пламенем, одновременно слегка вращая капилляр обеими руками. Как только капиллярный участок станет мягким и податливым, быстро выньте его из пламени и потяните за оба конца, чтобы сузить его внешний диаметр до 130-150 микрометров После того как стекло остынет, используйте карандаш с алмазным наконечником, абразивный камень или пилочку для ногтей, чтобы разрезать его, слегка надрезав узкий конец и потянув с обеих сторон.
Излом должен быть чистым и перпендикулярным. Наконечник полируется путем очень быстрого сжигания, оставляя апертуру от 100 до 130 микрометров, пипетки можно хранить для последующего использования. После подготовки хирургической области и оценки надлежащей анестезии, как описано ранее в этом видео, с животным на теплой сцене, используйте электрические машинки для стрижки шерсти из спинной области между коленями и дистальными ребрами.
Переместите реципиента в теплую сцену под стереомикроскопом и поместите его в положение лежа сбоку от хирурга. Накройте область стерильным полотенцем с отверстием, обнажающим выбритый участок, и осветите операционную зону. Далее, с помощью перевязочных щипцов удерживать кожу в месте, расположенном на черепе, на одной трети линии между последним ребром и бедрами и на тыльной стороне на одной трети линии между спиной и животом.
С помощью ножниц выполните поперечный разрез кожи в один сантиметр. Яичник или жировая подушечка, окружающая яичник, будет видна через стенку тела. Выполните поперечный разрез от 0,3 до 0,5 сантиметра в стенке тела над яичником или жировой подушечкой в месте, где разрез не разрезает крупные кровеносные сосуды.
Загрузите в манипулятивную пипетку для эмбрионов cz BH medium, взяв небольшой пузырь воздуха. Введение от пяти до 10 эмбрионов с минимальным количеством среды. И, наконец, занимаем еще один маленький пузырь воздуха и небольшое количество среднего.
Используйте микрорассекающие зубчатые щипцы, чтобы захватить жировую подушечку, окружающую яичник, и потяните ее к головке мыши, чтобы обнажить яичник, ОКТ и небольшую часть верхней части матки из брюшной полости. Удержание мундштука аспиратора во рту в готовности к использованию с помощью микрорассекающих зубчатых щипцов. Переместите UCT и обнажите маточное трубчатое соединение, сохраняя доступ к маточно-маточному трубчатому соединению недоминирующей рукой.
Возьмите слегка изогнутые щипцы для микродиссекции и поместите их чуть ниже соединения маточных труб, захватывая UCT примерно на два миллиметра выше этой части. Далее, удерживая маточное соединение труб с помощью слегка изогнутых микродиссекционных щипцов. С помощью иглы 27 калибра проколите участок UCT рядом с щипцами.
Затем введите манипулятивную пипетку для эмбриона в отверстие и продвигайтесь через маточное соединение труб к матке. Продвижение не более чем на три миллиметра вглубь органа для предотвращения повреждения эндометрия. Осторожно подуйте, чтобы выпустить эмбрионы в матку, следя за тем, чтобы оба пузырька воздуха проходили через матку и не вводя больше воздуха.
После извлечения пипетки возьмитесь за брюшную подушечку, чтобы переместить проток и яичник обратно в брюшную полость перед наложением швов. Мышцы и кожа, как показано ранее в этом видео, позволяют самке восстановиться, подобно мужским зажимам, которые могут быть удалены через 10 дней после переноса эмбрионов. Для получения более подробной информации обратитесь к текстовым протоколам.
Перенос эмбрионов из маточных труб Tails Utero обеспечивает возможность переноса эмбрионов в матку, что позволяет избежать некоторых осложнений, связанных с переносом эмбрионов матки. В этой таблице мы показываем результаты, полученные при передаче CD одного взрыва, подвергшегося различным манипуляциям, получателям CD One. В соответствии с описанным протоколом выживаемость до срока или выживаемость до Е 15 аналогична у всех эмбрионов.
Просто культивируется in vitro из эмбрионов на стадии зиготы, подвергнутых инъекции IPSC, для получения химерных детенышей и эмбрионов, у которых была удалена зона и которые подверглись воздействию лентивируса за семь часов до переноса эмбрионов. Таким образом, перенос эмбрионов через маточные трубы является надежным методом переноса особенно сложных эмбрионов, таких как эмбрионы без зиты и инкубированные с лентивирусом При попытке проведения этой процедуры важно быть как можно более нежным по отношению к реципиенту и эмбрионам.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
В этой статье рассматривается метод утеро-тубольного переноса эмбрионов, который использует утеро-тубольный соединение для предотвращения оттока эмбрионов во время переноса в матку. Процедура включает перенос предимплантированных эмбрионов в матку псевдобеременной реципиентки.
Utero-tubal embryo transfer addresses a key challenge in preclinical model generation by improving embryo survival rates through avoidance of uterine wall puncture and associated complications. This technique enhances the reliability of genetically modified mouse production, supporting target validation and phenotypic screening workflows. By reducing variability in implantation outcomes, it contributes to more consistent preclinical data for mechanistic de-risking and lead identification efforts.
This method integrates into the discovery continuum by supporting early-stage hypothesis testing through reliable generation of genetically modified models, which are essential for target validation and lead identification.