May 4th, 2014
Здесь мы описываем процесс полного иммуноокрашивания антенн дрозофилы, что позволяет нам лучше понять молекулярные механизмы, участвующие в диверсификации нейронов обонятельных рецепторов (ORN).
Общая цель данного эксперимента заключается в визуализации нейронов обонятельных рецепторов с помощью окрашивания антенн всего монтирования. Сначала обезболите муху, чтобы разрезать ее голову вертикально. Далее положите рассеченную голову мухи на яблочную тарелку.
Затем отрежьте третий сегмент антенны и поместите его на стеклянное дно чашки для культивирования с целью проведения иммуногистохимии. После установки антенн в предметное стекло мы можем визуализировать различные типы нейронов обонятельных рецепторов с помощью конфокального микроскопического hi. Мы работаем по обонятельной системе.
Обонятельная система используется для различения множества других молекул. Широкий спектр различных обонятельных нейронов, которые существуют в этой системе, обеспечивает точную и скоординированную передачу информации от рецепторов-мишеней к нейронам в мозге. Сегодня мы опишем окрашивание всей антенны, чтобы обнаружить диверсификацию этих нейронов обонятельных рецепторов.
Для того, чтобы обеспечить успешное окрашивание всего крепления и антенны, крайне важно подготовить новую партию фиксатора непосредственно перед началом протокола. Обезболите муху, а затем разрежьте голову мухи вертикально, удерживая ее тело щипцами. Теперь аккуратно поместите рассеченную антенну на яблочную тарелку.
Вырежьте третий сегмент антенны с помощью ножниц для тонкого препарирования. Поместите 90 микролитров фиксирующего раствора в центр посуды. С помощью острой иглы аккуратно перенесите рассеченную антенну непосредственно на Фиксирующий раствор.
Теперь дайте фиксации беспрепятственно продолжаться в течение 40 минут при комнатной температуре, чтобы завершить фиксацию. Промойте усики трижды PBST в течение 10 минут за промывку во время удаления моющего раствора. Сначала поднесите все усики к центру посуды с помощью иглы.
Затем уберите раствор с бортика посуды. Перемешивание во время инкубации не требуется. Чтобы подготовиться к окрашиванию, удалите последний смыв PBST и заблокируйте неподвижные усики, заполнив камеру 90 микролитрами 5%-ной лошадиной сыворотки в 0,1%-ном PBST. Замените блокирующий раствор первичными антителами, разведенными в смеси 5%-ной лошадиной сыворотки.
В PBST основными антителами являются мышиный анти-GFP один к 400 и крысиный анти-eof, разбавленные до концентрации 1 к 200 для предотвращения высыхания образцов антенн. Поместите влажную салфетку в крышку чашки для культуры и оберните ее параформой. Затем поместите чашку для культуры в пластиковый контейнер, содержащий влажные салфетки.
Инкубируйте усики в первичных антителах в течение 48 часов при четырех градусах Цельсия через 48 часов. Очистите несвязанные первичные антитела шестью промывками в PBST в течение 10 минут за промывку. Аналогична ранее описанной процедуре фиксативного удаления.
После часа промываний PBST добавьте вторичный раствор антител, разведенный в смеси 5% лошадиной сыворотки В этом примере антителами являются SI two anti rabbit IgG и SI three anti rat IgG. Накройте емкость алюминиевой фольгой от этого места вперед, чтобы предотвратить фторочетверку. Затем проводится фотообесцвечивание: инкубация антенны во вторичном антителе в течение 48 часов при четырех градусах Цельсия.
На этом этапе антенна готова к монтажу для установки антенны. Удалите как можно больше PBST из чашки для культивирования и постепенно начинайте вводить глицерин в усики. Затем добавьте в блюдо 40% глицерина на одну-две минуты, затем выньте его, добавьте 80% глицерина и оставьте на пять минут.
Флуоресцентное окрашивание выявило Elof-положительные нейроны и целевые обонятельные нейроны. Комбинируя эту процедуру с другими подобными методами, включая генерацию генетической мозаики обонятельных нейронов, мы надеемся инициировать механическую дедиверсификацию обонятельных нейронов и ответить на другие важные научные вопросы.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Эта статья описывает процесс иммуногистохимического окрашивания целых антенн Drosophila для визуализации нейронов обонятельных рецепторов (ORNs). Эта техника помогает понять молекулярные механизмы, участвующие в диверсификации ORNs.
Whole mount immunolabeling of olfactory receptor neurons in Drosophila antennae enables precise visualization of neuronal subtypes and their spatial organization. This capability supports early-stage target validation and mechanistic de-risking in sensory neuroscience and neuropharmacology pipelines. The method provides a robust platform for interrogating neuronal diversity and pathway specificity relevant to translational research and portfolio triage.
This immunolabeling method integrates into the discovery-to-preclinical continuum, supporting target validation, assay development, and translational research in neurobiology.