-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Basic Biology
Техники микроинъекций рыбок данио
Video Quiz
Техники микроинъекций рыбок данио
JoVE Science Education
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
Zebrafish Microinjection Techniques

4.15: Техники микроинъекций рыбок данио

56,663 Views
08:12 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Одним из основных преимуществ работы с рыбками данио-рерио (Danio rerio) является то, что их генетикой можно легко манипулировать с помощью микроинъекций эмбрионов на ранних стадиях. С помощью этого метода растворы, содержащие генетический материал или нокдаун-конструкции, доставляются в бластомеры: эмбриональные клетки, расположенные на желтке только что оплодотворенной яйцеклетки. Доставка в цитоплазму достигается либо путем непосредственного введения в бластомер, либо путем естественных цитоплазматических движений, происходящих после введения раствора в желток. Успешные генетические манипуляции обычно сопровождаются количественной оценкой эмбриональных фенотипов с целью выяснения генетических механизмов развития.

В этом видео будет представлено введение в проведение микроинъекций в эмбрионы рыбок данио. Обсуждение начинается с обзора основных инструментов для этой техники, включая инжекционный аппарат и микроинъектор, который управляет движением жидкости с помощью импульсов сжатия воздуха. Далее демонстрируются важные подготовительные этапы, такие как заливка агаровых пластин для стабилизации эмбрионов во время инъекции и калибровка аппарата для микроинъекций. Затем представлена процедура инъекции вместе с советами о том, когда и где следует проводить инъекции. Наконец, обсуждаются приложения метода микроинъекций, включая сверхэкспрессию генов путем инъекции мРНК, сайленсинг генов путем доставки антисмысловых морфолигонуклеотидов и генерацию трансгенных рыбок данио с использованием специально сконструированной плазмидной ДНК.

Procedure

Микроинъекции эмбрионов рыбок данио позволяют исследователям доставлять растворы непосредственно в развивающееся животное для изучения функции генов и динамики развития. Эмбрионы от 1 до 4-клеточной стадии часто используются для инъекций. Поскольку на этой ранней стадии нет мембран, разделяющих клетки и желток, растворы, введенные либо в одну клетку, либо в желток, будут равномерно распространяться по всему организму. С помощью микроинъекции гены, производящие белок, могут быть экспрессированы или отключены, в зависимости от типа вводимого материала. В этом видео будет продемонстрирована подготовка пипетки, сбор эмбрионов, процедура микроинъекции, а также обсуждаются некоторые способы использования этой техники в лабораториях сегодня.

Во-первых, давайте рассмотрим основные компоненты системы микроинъекций: стереоскоп, микроинъектор, держатель пипетки и микроманипулятор.

Микроинъектор обеспечивает точный объем за счет импульсов давления воздуха, которые могут быть отрегулированы пользователем. Держатель пипетки фиксирует пипетку для использования во время процедуры и подключает ее к воздуховоду инжектора. Как правило, держатель пипетки помещают в микроманипулятор. Этот прибор позволяет исследователю вносить небольшие и точные корректировки в положение пипетки во время процедуры инъекции. Ножная педаль соединена с инжектором и позволяет исследователю сохранять использование своих рук, одновременно активируя импульс давления для подачи инъекционного материала. Наконец, стереоскоп позволяет исследователю видеть эмбрионы и сосредоточиться на расположении пипетки во время процедуры микроинъекции.

Прежде чем начать микроинъекцию, необходимо подготовить стеклянные иглы. Иглы для микроинъекций должны иметь одинаковый размер, чтобы обеспечить точную доставку инъекционных материалов. Съемник пипеток помогает обеспечить ежевременную подготовку тонких и острых пипеток. Съемник нагревает стеклянную капиллярную трубку, прилагая при этом усилие, которое тянет трубку, в результате чего образуются две иглы для пипетки.

Под микроскопом с помощью щипцов кончик отрезается таким образом, чтобы обеспечить постоянный объем жидкости, сохраняя при этом остроту иглы для прокалывания эмбриона данио-рерио.

Феноловый краситель, краситель, используемый для визуализации процедуры инъекции, можно смешивать с раствором для инъекции, чтобы отслеживать успешную инъекцию в эмбрион.

Иглы могут быть загружены раствором для инъекций со стороны наконечника с помощью капиллярного воздействия, или они могут быть заполнены с помощью шприца микрозагрузчика. После того, как игла загружена для инъекции, ее можно вставить в держатель пипетки на микроманипуляторе.

После того, как инъекционные иглы готовы, давление микроинъектора и настройки времени регулируются для калибровки каждой иглы, что обеспечит равномерную подачу объема каждому эмбриону. Под стереоскопом небольшое количество раствора вводится в каплю минерального масла на предметном стекле. Измеряется размер капли и можно рассчитать объем, который игла рассеивает. Впоследствии давление микроинжектора может быть дополнительно отрегулировано и процесс повторяется до тех пор, пока регулярно не будет получена капля желаемого размера.

После того, как иглы подготовлены и откалиброваны, эмбрионы получают и размещают их для инъекций.

Эмбрионы должны быть аккуратно размещены и неподвижно удерживаться во время инъекции с помощью камеры для микроинъекций. Для создания камеры микровпрыска формы помещают в чашку Петри, заливают в чашку расплавленную агарозу и дают ей застыть. Как только он застынет, форму снимают и заливают сверху среду для эмбрионов. Эмбрионы могут быть выстроены в корыта, которые были созданы пресс-формой с помощью трансферной пипетки. Одной из альтернатив расположению эмбрионов в агарозе является выстраивание их вдоль края предметного стекла микроскопа, чтобы они располагались в колонке для микроинъекций

Как только эмбрионы находятся в нужном положении, они готовы к инъекции.

Эмбрионы могут вводиться либо в желток, либо в цитоплазму клеток. Инъекция в желток более проста и требует менее сложной техники инъекции, в то время как инъекция в цитоплазму более сложна, но дает более устойчивые результаты. Чтобы ввести в желток, с помощью микроманипулятора переместите иглу так, чтобы она проколола хорион, а затем желток. Затем нажимают на ножную педаль, чтобы содержимое иглы превратилось в желток. Цитоплазматический поток и диффузия позволяют инъекционному раствору поступать в клетку.

Инъекция в цитоплазму требует тщательного позиционирования эмбриона, чтобы цитоплазму можно было эффективно воздействовать.

После инъекции эмбрионы перекладываются в новую чашку и инкубируются при температуре 28,5 °C. Их часто проверяют на предмет удаления мертвых эмбрионов.

Чтобы определить успешность инъекции, эмбрионы могут быть проанализированы на основе их общего внешнего вида, наличия флуоресцентного маркера, а также путем поиска изменений в их геноме с помощью генотипирования.

Теперь, когда вы понимаете, как вводить эмбрионы рыбок данио, давайте рассмотрим, как ученые могут использовать этот метод для понимания функции генов.

Во-первых, ученые могут вводить синтезированную мРНК для сверхэкспрессии определенных генов и определять их функцию, наблюдая за фенотипом. Этот же метод может быть использован для экспрессии белков, которые выделяют молекулярные события, такие как перестройки цитоскелета, происходящие во время развития.

Во-вторых, гены могут быть выключены путем инъекции морфолиноса. Морфолино являются стабильными синтетическими аналогами нуклеиновых кислот, которые могут быть сконструированы для связывания с определенными последовательностями мРНК путем стандартного спаривания оснований нуклеиновых кислот и блочной трансляции. В свою очередь, это приводит к потере белка, производимого этой мРНК. Этот эффект позволяет исследователям понять роль конкретного гена в развитии, наблюдая, как развитие изменяется в его отсутствие.

Инъекция может быть использована для включения чужеродной ДНК в данио-рерио. Вводя последовательности, содержащие сайты узнавания для ферментов, модифицирующих ДНК, ученые могут эффективно создавать «трансгенных» рыб с модифицированными геномами, а это означает, что чужеродные гены будут переданы будущим поколениям. В зависимости от дизайна последовательности, экспрессия генов может быть ограничена конкретными тканями или определенными временными точками развития.

Вы только что посмотрели представление JoVE о микроинъекциях ранних эмбрионов рыбок данио. В этом видео была представлена настройка микроинъекций, продемонстрировано, как подготовить иглы для микроинъекций, показано, как подготовить эмбрионы к микроинъекции, выполнить технику микроинъекции и некоторые области применения микроинъекций. Как всегда, спасибо за просмотр!

Transcript

Микроинъекции эмбрионов рыбок данио позволяют исследователям доставлять растворы непосредственно в развивающееся животное для изучения функции генов и динамики развития. Эмбрионы от 1 до 4-клеточной стадии часто используются для инъекций. Поскольку на этой ранней стадии нет мембран, разделяющих клетки и желток, растворы, введенные либо в одну клетку, либо в желток, будут равномерно распространяться по всему организму. С помощью микроинъекции гены, производящие белок, могут быть экспрессированы или отключены, в зависимости от типа вводимого материала. В этом видео будет продемонстрирована подготовка пипетки, сбор эмбрионов, процедура микроинъекции, а также обсуждаются некоторые способы использования этой техники в лабораториях сегодня.

Во-первых, давайте рассмотрим основные компоненты системы микроинъекций: стереоскоп, микроинъектор, держатель пипетки и микроманипулятор.

Микроинъектор обеспечивает точный объем за счет импульсов давления воздуха, которые могут быть отрегулированы пользователем. Держатель пипетки фиксирует пипетку для использования во время процедуры и подключает ее к воздуховоду инжектора. Как правило, держатель пипетки помещают в микроманипулятор. Этот прибор позволяет исследователю вносить небольшие и точные корректировки в положение пипетки во время процедуры инъекции. Ножная педаль соединена с инжектором и позволяет исследователю сохранять использование своих рук, одновременно активируя импульс давления для подачи инъекционного материала. Наконец, стереоскоп позволяет исследователю видеть эмбрионы и сосредоточиться на расположении пипетки во время процедуры микроинъекции.

Прежде чем начать микроинъекцию, необходимо подготовить стеклянные иглы. Иглы для микроинъекций должны иметь одинаковый размер, чтобы обеспечить точную доставку инъекционных материалов. Съемник пипеток помогает обеспечить ежевременную подготовку тонких и острых пипеток. Съемник нагревает стеклянную капиллярную трубку, прилагая при этом усилие, которое тянет трубку, в результате чего образуются две иглы для пипетки.

Под микроскопом с помощью щипцов кончик отрезается таким образом, чтобы обеспечить постоянный объем жидкости, сохраняя при этом остроту иглы для прокалывания эмбриона данио-рерио.

Феноловый краситель, краситель, используемый для визуализации процедуры инъекции, можно смешивать с раствором для инъекции, чтобы отслеживать успешную инъекцию в эмбрион.

Иглы могут быть загружены раствором для инъекций со стороны наконечника с помощью капиллярного воздействия, или они могут быть заполнены с помощью шприца микрозагрузчика. После того, как игла загружена для инъекции, ее можно вставить в держатель пипетки на микроманипуляторе.

После того, как инъекционные иглы готовы, давление микроинъектора и настройки времени регулируются для калибровки каждой иглы, что обеспечит равномерную подачу объема каждому эмбриону. Под стереоскопом небольшое количество раствора вводится в каплю минерального масла на предметном стекле. Измеряется размер капли и можно рассчитать объем, который игла рассеивает. Впоследствии давление микроинжектора может быть дополнительно отрегулировано и процесс повторяется до тех пор, пока регулярно не будет получена капля желаемого размера.

После того, как иглы подготовлены и откалиброваны, эмбрионы получают и размещают их для инъекций.

Эмбрионы должны быть аккуратно размещены и неподвижно удерживаться во время инъекции с помощью камеры для микроинъекций. Для создания камеры микровпрыска формы помещают в чашку Петри, заливают в чашку расплавленную агарозу и дают ей застыть. Как только он застынет, форму снимают и заливают сверху среду для эмбрионов. Эмбрионы могут быть выстроены в корыта, которые были созданы пресс-формой с помощью трансферной пипетки. Одной из альтернатив размещению эмбрионов в агарозе является выстраивание их вдоль края предметного стекла микроскопа, чтобы они располагались в колонке для микроинъекций

Как только они находятся на месте, эмбрионы готовы к инъекции.

Эмбрионы могут вводиться либо в желток, либо в цитоплазму клеток. Инъекция в желток более проста и требует менее сложной техники инъекции, в то время как инъекция в цитоплазму более сложна, но дает более устойчивые результаты. Чтобы ввести в желток, с помощью микроманипулятора переместите иглу так, чтобы она проколола хорион, а затем желток. Затем нажимают на ножную педаль, чтобы содержимое иглы превратилось в желток. Цитоплазматический поток и диффузия позволяют инъекционному раствору поступать в клетку.

Инъекция в цитоплазму требует тщательного позиционирования эмбриона, чтобы цитоплазму можно было эффективно воздействовать.

После инъекции эмбрионы переносят в новую чашку и инкубируют при температуре 28,5 °C. Их часто проверяют на предмет удаления мертвых эмбрионов.

Чтобы определить успешность инъекции, эмбрионы могут быть проанализированы на основе их общего внешнего вида, наличия флуоресцентного маркера, а также путем поиска изменений в их геноме с помощью генотипирования.

Теперь, когда вы понимаете, как вводить эмбрионы рыбок данио, давайте посмотрим, как ученые могут использовать этот метод для понимания функции генов.

Во-первых, ученые могут вводить синтезированную мРНК для сверхэкспрессии определенных генов и определять их функцию, наблюдая за фенотипом. Этот же метод может быть использован для экспрессии белков, которые выделяют молекулярные события, такие как перестройки цитоскелета, происходящие во время развития.

Во-вторых, гены могут быть выключены путем инъекции морфолиноса. Морфолино являются стабильными синтетическими аналогами нуклеиновых кислот, которые могут быть сконструированы для связывания с определенными последовательностями мРНК путем стандартного спаривания оснований нуклеиновых кислот и блочной трансляции. В свою очередь, это приводит к потере белка, производимого этой мРНК. Этот эффект позволяет исследователям понять роль конкретного гена в развитии, наблюдая, как развитие изменяется в его отсутствие.

Инъекция может быть использована для включения чужеродной ДНК в данио-рерио. Вводя последовательности, содержащие сайты узнавания для ферментов, модифицирующих ДНК, ученые могут эффективно создавать «трансгенных» рыб с модифицированными геномами, а это означает, что чужеродные гены будут переданы будущим поколениям. В зависимости от дизайна последовательности, экспрессия генов может быть ограничена конкретными тканями или определенными временными точками развития.

Вы только что посмотрели введение JoVE в микроинъекции ранних эмбрионов данио-рерио. В этом видео была представлена настройка микроинъекций, продемонстрировано, как подготовить иглы для микроинъекций, показано, как подготовить эмбрионы к микроинъекции, выполнить технику микроинъекции и некоторые области применения микроинъекций. Как всегда, спасибо за просмотр!

Explore More Videos

Рыбки данио Микроинъекция Функция генов Динамика развития Эмбрион Гены производства белка Подготовка пипетки Сбор эмбрионов Процедура микроинъекции Стереоскоп Микроинъектор Держатель пипетки Микроманипулятор Импульсы давления Ножная педаль Доставка инъекционного материала

Related Videos

Введение в лабораторную мышь: <i>Mus musculus</i>

Введение в лабораторную мышь: <i>Mus musculus</i>

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

102.1K Просмотры

Знакомство с цыпленком: <i>Gallus gallus domesticus</i>

Знакомство с цыпленком: <i>Gallus gallus domesticus</i>

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

70.4K Просмотры

Знакомство с рыбками данио-рерио: <i>Danio rerio</i>

Знакомство с рыбками данио-рерио: <i>Danio rerio</i>

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

84.5K Просмотры

Базовый уход за мышью и обслуживание

Базовый уход за мышью и обслуживание

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

48.0K Просмотры

Базовый уход за цыплятами и их содержание

Базовый уход за цыплятами и их содержание

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

14.9K Просмотры

Содержание и разведение рыбок данио рерио

Содержание и разведение рыбок данио рерио

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

26.3K Просмотры

Разработка и размножение лабораторной мыши

Разработка и размножение лабораторной мыши

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

63.1K Просмотры

Развитие цыпленка

Развитие цыпленка

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

93.9K Просмотры

Размножение и развитие рыбок данио

Размножение и развитие рыбок данио

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

107.6K Просмотры

Генотипирование мышей

Генотипирование мышей

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

91.7K Просмотры

<em>В ово</em> Электропорация куриных эмбрионов

<em>В ово</em> Электропорация куриных эмбрионов

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

26.0K Просмотры

Разведение рыбок данио и обращение с эмбрионами

Разведение рыбок данио и обращение с эмбрионами

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

60.3K Просмотры

Введение экспериментальных агентов в мышь

Введение экспериментальных агентов в мышь

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

43.8K Просмотры

Цыпленок <em>ex ovo</em> Культура

Цыпленок <em>ex ovo</em> Культура

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

19.5K Просмотры

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code