22 сентября 2014 г.
Имплантация biograft для лечения инфаркта миокарда, вызванную ЛАД перевязки в грызунах уже традиционно требуется два открытых операций на сердце. В целях снижения смертности и обеспечить оптимальные условия для фиксации твердых желатиновых biomatrices и связанных с клетками, минимально инвазивные процедуры были разработаны.
Целью этой процедуры является проведение двойной торакотомии на крысах с целью проведения коронарного лигирования и эпикардиального наложения. Это достигается путем предварительного выполнения торакотомии в четвертом межреберье. Далее перевязывается левая передняя нисходящая коронарная артерия или ПМЖ
.Затем через две недели проводится вторая торакотомия в пятом межреберье. Наконец, клетки и матрикс наносятся на поверхность инфарктированного бьющегося сердца. В конечном счете, эхокардиография проводится для оценки функции сердца, а гистология проводится путем измерения размера инфаркта.
Основное преимущество этой методики перед существующими методами, такими как стернотомия, заключается в том, что это минимально инвазивный подход, демонстрирующий, что процедура будет и не была отправлена сотрудниками из нашей лаборатории. Все животные были обработаны в соответствии с рекомендациями F-E-L-A-S-A и Швейцарского закона о защите животных. После обескровливания крысы и изоляции и очистки бедренных костей в соответствии с текстовым протоколом, с помощью ножниц разрезайте оба кончика костей.
Затем для промывания костного мозга введите стерильный PBS в ядро кости, а костный мозг соберите в 15-миллилитровую пробирку. Центрифугируйте собранный костный мозг в течение семи минут при 300-кратной Г. Удалите супинат с помощью трех миллилитров буфера для лизиса эритроцитов. Суспензируйте гранулу, выдержите суспензию в течение одной минуты при комнатной температуре, а затем снова вращайте в течение семи минут при 300-кратном перегрузке после рессуса.
Суспензирование гранулы в стерильной питательной среде. Добавьте дополнительную среду для культивирования клеток в колбу для культур объемом 150 мл и высейте клетки на второй день инкубации. Меняйте среду для удаления неадгезивных клеток и продолжайте заменять среду через день в течение двух-трех недель до тех пор, пока не будет достигнута желаемая плотность клеток.
Чтобы провести первую Т-торакотомию, начните с взвешивания крысы и настройте соответствующие параметры аппарата ИВЛ. Вентиляционный отток определяется автоматически. Затем побрейте левую часть грудной клетки, включите грелку и установите ее на 37 градусов по Цельсию.
После обезболивания крысы согласно текстовому протоколу выполните ущипывание пальца ноги или хвоста перед размещением крысы на грелке в лежачем положении с помощью внутривенного катетера 14 калибра, интубируйте животное, затем подключите интубационный катетер к аппарату искусственной вентиляции легких грызунов. Запрограммирован на 2,5 литра кислорода в минуту, 2,5% фтора, дыхательный объем два миллилитра и частоту дыхания 90 вдохов в минуту. После приготовления шприца с бупренорфином 0,1 миллиграмма на килограмм подкожно вводят одну треть раствора, затем используют 1% раствор бетадина для дезинфекции участка.
Далее надрежьте кожу перпендикулярно грудине четвертого межреберья и отделите три слоя грудной мышцы. Затем откройте четвертое межреберье между четвертыми и пятью ребрами. Используйте небольшой ретрактор, чтобы раздвинуть ребра и обнажить сердце.
Затем осторожно откройте перикард и найдите левую переднюю нисходящую коронарную артерию или ПМЖ и с помощью шва 7,0 перевязать ее на четыре миллиметра ниже предсердия. Затем контролируйте изменение цвета ишемизированной области с помощью трех нулевых швов, расположенных приблизительно и дистально от грудины. Сделайте два стежка, которые будут использоваться для закрытия межреберья.
Затяните дистальный шов. Зажмите вытяжную трубку аппарата ИВЛ на две секунды, чтобы надуть грудную клетку и избежать пневмоторакса. Затем затяните второй шов.
Верните мышечные слои на место. Затем с помощью пяти нулевых швов закрыть кожу 1%-ным раствором бетадина. Продезинфицируйте шов и введите оставшийся раствор бупренорфина.
Выключите систему анестезии и снимите интубационный катетер. Подержите крысу в клетке под теплой лампой в течение одного-двух часов, прежде чем вернуть ее в отделение НПВ. Через две недели после первой торакотомии заживление завершено, и шрам едва заметен.
Следуя процедуре, описанной ранее в этом видео для подготовки крысы к операции, сделайте надрез кожи перпендикулярно грудине в пятом межреберье. Отделите три слоя мышц и откройте пятое межреберье между пятью и шестью ребрами. Используйте небольшой ретрактор, чтобы раздвинуть ребра и обнажить сердце.
Если есть некоторое прилипание, используйте тонкие щипцы, чтобы осторожно его снять. Затем найдите область инфаркта, которая выглядит как бледная область ниже лигатуры. При необходимости вставьте 10-сантиметровый кусочек семинулевого шва на вершине и аккуратно потяните за него, чтобы лучше визуализировать левый желудочек.
Затем нанести клетки и матрикс на поверхность ишемизированного участка сердца. После гранулирования, четыре раза по 10 к шести клеткам, как указано в текстовом протоколе, нанесите палитру на сердце, прежде чем использовать фибриновый герметик для его покрытия. Слой клея фиксирует клетки на поверхности сердца.
После снятия куска шва с верхушечного положения, мышечные слои обратно на место накладывают шов и дезинфицируют животное. Как показано ранее в видео, как показано здесь. Как показано на этом графике Каплана, выживаемость высока после первой Т-торакотомии, животные, получавшие фибрин и/или клетки, продемонстрировали более низкие показатели выживаемости, чем другие группы, как показано на этом графике.
Тем не менее, общая выживаемость оставалась высокой уже через секунду. Торакотомию и лечение функции сердца оценивали с помощью эхокардиографии. Эти репрезентативные изображения в режиме М для здоровых и инфарктированных животных иллюстрируют, что сократительная способность стенки ЛЖ исчезает через две недели после лигирования ПМЖ фракционное укорочение через две недели после лигирования ПМЖ было зарегистрировано в общей сложности у 104 животных.
Распределение частот показывает достаточно воспроизводимые методы с коэффициентом вариации 17%На этом рисунке изображено графическое представление функции сердца по измеренной фракции выброса через две и шесть недель после ПМЖ Функция сердца продолжает снижаться в течение этого периода времени. Ремоделирование сердца также происходит в этот период и представлено здесь увеличением объемов ЛЖ, зарегистрированных как в сестринском, так и в диастолном диапазоне. Наконец, золотое окрашивание на срезах сердца показало, что фиброзная ткань и, в конечном итоге, трансмуральный рубец развились через шесть недель после лигирования ПМЖ После освоения этой техники ее можно выполнить за 30-40 минут, если она выполнена правильно.
После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как проводить малоинвазивную двойную торакотомию.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном исследовании представлена малоинвазивная процедура лечения инфаркта миокарда на модели грызунов, которая традиционно требовала проведения двух операций на открытом сердце. Данный подход направлен на улучшение условий фиксации биоматриц при одновременном снижении показателей смертности.
Данный метод малоинвазивной двойной торакотомии позволяет надежно моделировать инфаркт миокарда и последующее введение клеточной терапии на крысах в условиях доклинических исследований. Снижая послеоперационную смертность и повышая воспроизводимость, этот подход обеспечивает стабильное формирование инфаркта и возможность корректной оценки терапевтического эффекта. Описанный метод повышает трансляционную значимость разработок в области регенеративной сердечно-сосудистой медицины, предоставляя воспроизводимую платформу для оценки стратегий приживления клеток и биоматриксов.
Данный метод интегрируется в рабочий процесс исследований путем создания воспроизводимой модели инфаркта перед терапевтическим вмешательством, что позволяет в дальнейшем проводить оценку клеточной терапии и биоматриц.