-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Advanced Biology
Первичные культуры нейронов
Video Quiz
Первичные культуры нейронов
JoVE Science Education
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Neuroscience
Primary Neuronal Cultures

1.11: Первичные культуры нейронов

68,580 Views
08:43 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Сложность мозга часто требует от нейробиологов использования более простой системы для экспериментальных манипуляций и наблюдений. Один из эффективных подходов заключается в создании первичной культуры путем препарирования ткани нервной системы, ее диссоциации на отдельные клетки и выращивания этих клеток in vitro. Первичные культуры делают нейроны и глии легко доступными для экспериментальных инструментов, необходимых для таких методов, как генетические манипуляции и покадровая визуализация. Кроме того, эти культуры представляют собой высококонтролируемую среду для изучения сложных явлений, таких как межклеточные взаимодействия.

Это видео представляет обзор основных этапов производства первичных нейронных культур, которые включают в себя отбор и препарирование интересующей ткани, механическое и химическое разрушение ткани для получения одиночной клеточной суспензии, покрытие клеток и поддержание культур в соответствующей среде. Также представлено несколько примеров экспериментов, показывающих, как культивируемые клетки могут быть использованы для исследования переноса белка, морфологических изменений и электрофизиологии в живых нейронах.

Procedure

Мозг является одним из самых сложных органов в организме, поэтому нейробиологам часто требуется более простая система для проведения экспериментальных манипуляций и наблюдений. Культивирование клеток является одной из таких систем, которая обеспечивает легкий доступ к живым нейронам. В целом, культивирование клеток включает в себя выращивание их в специальных растворах, называемых культуральными средами, в стерильной, контролируемой среде – обычно в теплом инкубаторе. Первичная культура – это культура, которая производится из ткани, препарированной организмом. Различные типы первичных нейронных культур могут быть получены из различных животных, стадий развития и тканей нервной системы.

Это видео познакомит вас с методом получения первичных нейронных культур и некоторыми экспериментами, в которых обычно используются эти клетки.

Многие животные модели, важные для исследований в области нейробиологии, могут быть использованы для получения первичных культур нейронов. У мышей и крыс – двух наиболее часто используемых млекопитающих в биомедицинских исследованиях – нейронная ткань эмбрионов, новорожденных щенков и взрослых особей может быть препарирована для культивирования. Эмбрионы и перинатальные щенки обычно предпочтительны, поскольку клетки мозга незрелые и менее восприимчивы к повреждениям.

Различные ткани нервной системы могут быть выделены и использованы для производства различных типов первичных нейронных культур. Например, можно препарировать определенные части мозга, такие как мозжечок, кора и гиппокамп. Спинной мозг или компоненты периферической нервной системы, такие как ганглии заднего корешка, также могут быть рассечены и культивированы для выращивания определенных типов нейронов.

Независимо от источника ткани, общий метод получения первичных культур нейронов можно свести к нескольким основным этапам: диссекция, диссоциация, покрытие и поддержание.

Давайте начнем углубленный обзор этих шагов с первого: Вскрытие. При подготовке к вскрытию и культивированию стерильность имеет решающее значение для предотвращения загрязнения культур. Инструменты должны быть стерилизованы спиртом, а для удаления переносимых по воздуху загрязнений часто используется ламинарный вытяжной колпак.

Для культивирования нейронов грызунов ткань только что усыпленных животных должна быть удалена в холодный буферный раствор соли. С помощью препарирующего микроскопа можно аккуратно изолировать более мелкие участки ткани, такие как гиппокамп, для дальнейшей обработки.

Затем необходимо разбить образец на клеточные компоненты в процессе, известном как диссоциация. Рассеченная ткань сначала измельчается с помощью скальпеля или ножниц. Полученные кусочки ткани затем перекладываются в новую емкость. Затем добавляется протеолитический фермент, такой как трипсин или папаин, для переваривания белков внеклеточного матрикса, которые связывают клетки вместе. После короткой инкубации в теплом инкубаторе или на водяной бане кусочки ткани аккуратно промывают буфером для удаления ферментов.

Размягченные кусочки ткани теперь могут быть диссоциированы с помощью растирания, которое включает в себя многократное пропускание ткани через пипетку, чтобы клетки высвобождались в одноклеточную суспензию. На этом этапе клетки могут быть подсчитаны на концентрацию и проверены на жизнеспособность с помощью красителей, таких как Трипановый синий, который помогает определить, насколько суспензию следует разбавить для успешного роста.

Наконец-то нейроны готовы к культуре! Давайте рассмотрим некоторые важные меры, которые необходимо предпринять, чтобы сохранить их живыми и здоровыми. Очень важен состав питательных сред, которые используются для выращивания нейронов. В среду обычно добавляют специальные добавки, которые поддерживают выживание и рост нейронов. Другие добавки могут включать препараты, которые подавляют деление ненейрональных клеток, таких как глиальные клетки.

После того, как суспензия нейронных клеток смешивается со средой, клетки готовы к размещению в желаемых контейнерах. Это могут быть тарелки и тарелки для культур или стеклянные покровные листы, помещенные внутрь этих контейнеров. Поскольку нейроны не могут расти непосредственно на стекле, покровные стекла обрабатываются заранее, чтобы создать лучшие поверхности для прикрепления и роста клеток. Эти методы лечения могут включать покрытие синтетическими белками внеклеточного матрикса; например, полилизин и ламинин; или травление кислотой для придания шероховатости поверхности.

После нанесения пластин нейроны выращиваются в теплом, увлажненном инкубаторе. Рост нейронных процессов может наблюдаться в течение от нескольких часов до нескольких дней. Для поддержания культур часть питательных сред заменяется свежей средой примерно раз в неделю. Как правило, первичные культуры нейронов используются для экспериментов в период от нескольких дней до нескольких недель после осаждения.

Теперь, когда у вас есть нейроны, растущие в культурах, что вы можете сделать с этими клетками?

Одним из основных методов, обычно применяемых к культурам нейронов, является генетическая манипуляция путем трансфекции или вирусной трансдукции. Кодирующий генетический материал, например, мутантный белок, может быть введен в культивируемые нейроны для изменения функции нейронов. В качестве альтернативы, трансфекция с помощью двухцепочечной РНК является эффективным методом блокирования экспрессии белка. Доступность нескольких методов и реагентов для генетических манипуляций делает эту работу особенно ценным приложением для решения широкого круга исследовательских вопросов.

В качестве примера можно привести вопрос, который можно решить с помощью трансфекции в культурах нейронов: как и где определенные белки или белковые комплексы доставляются в различные морфологические структуры нейрона? Чтобы получить ответ, нейроны трансфицируются ДНК, кодирующей интересующий белок, который может быть слит с флуоресцентным белком, таким как зеленый флуоресцентный белок или GFP. Затем можно контролировать характер движения и локализацию флуоресцентно меченного белка с помощью визуализации в реальном времени. Этот метод может быть использован для изучения, например, транспортировки рецепторов нейротрансмиттеров на поверхность клетки.

Первичные культуры нейронов также очень полезны для электрофизиологических исследований, в которых электрическая активность отдельных клеток может быть измерена с помощью микроэлектродов. Один слой нейронов в культуре означает, что отдельные клетки легко поддаются воздействию, а такие манипуляции, как фармакологическое лечение, применяются быстро и равномерно. Например, влияние тестового соединения на активность одного нейрона может быть измерено с помощью техники патч-зажима в культивируемых нейронах.

Вы только что посмотрели введение JoVE в первичные нейронные культуры. В этом видео мы продемонстрировали, как готовятся эти культуры и для каких экспериментов они обычно используются. Первичные нейрональные культуры могут быть получены из широкого спектра тканевых источников, как правило, с использованием метода, включающего диссекцию, диссоциацию в клеточную суспензию и выращивание в питательных средах в инкубаторах.

Спасибо за просмотр!

Transcript

Мозг является одним из самых сложных органов в организме, поэтому нейробиологам часто требуется более простая система для проведения экспериментальных манипуляций и наблюдений. Культивирование клеток является одной из таких систем, которая обеспечивает легкий доступ к живым нейронам. В целом, культивирование клеток включает в себя выращивание их в специальных растворах, называемых культуральными средами, в стерильной, контролируемой среде. Обычно это теплый инкубатор. Первичная культура – это культура, которая производится из ткани, препарированной организмом. Различные типы первичных нейронных культур могут быть получены из различных животных, стадий развития и тканей нервной системы.

Это видео познакомит вас с методом получения первичных нейронных культур и некоторыми экспериментами, в которых обычно используются эти клетки.

Многие животные модели, важные для исследований в области нейробиологии, могут быть использованы для получения первичных культур нейронов. С мышами и крысами? Два наиболее часто используемых млекопитающих в биомедицинских исследованиях ? Нейронная ткань эмбрионов, новорожденных щенков и взрослых особей может быть препарирована для культивирования. Эмбрионы и перинатальные щенки обычно предпочтительны, поскольку клетки мозга незрелые и менее восприимчивы к повреждениям.

Различные ткани нервной системы могут быть выделены и использованы для производства различных типов первичных нейронных культур. Например, можно препарировать определенные части мозга, такие как мозжечок, кора и гиппокамп. Спинной мозг или компоненты периферической нервной системы, такие как ганглии заднего корешка, также могут быть рассечены и культивированы для выращивания определенных типов нейронов.

Независимо от источника ткани, общий метод получения первичных культур нейронов можно свести к нескольким основным этапам: диссекция, диссоциация, покрытие и поддержание.

Давайте начнем углубленный обзор этих шагов с первого: Вскрытие. При подготовке к вскрытию и культивированию стерильность имеет решающее значение для предотвращения загрязнения культур. Инструменты должны быть стерилизованы спиртом, а для удаления переносимых по воздуху загрязнений часто используется ламинарный вытяжной колпак.

Для культивирования нейронов грызунов ткань только что усыпленных животных должна быть удалена в холодный буферный раствор соли. С помощью препарирующего микроскопа более мелкие участки ткани ? Например, гиппокамп? может быть тщательно изолирован для дальнейшей обработки.

Далее необходимо разбить образец на клеточные компоненты в процессе, известном как диссоциация. Рассеченная ткань сначала измельчается с помощью скальпеля или ножниц. Полученные кусочки ткани затем перекладываются в новую емкость. Затем добавляется протеолитический фермент, такой как трипсин или папаин, для переваривания белков внеклеточного матрикса, которые связывают клетки вместе. После короткой инкубации в теплом инкубаторе или на водяной бане кусочки ткани аккуратно промывают буфером для удаления ферментов.

Размягченные кусочки ткани теперь могут быть диссоциированы с помощью растирания, которое включает в себя многократное пропускание ткани через пипетку, чтобы клетки высвобождались в одноклеточную суспензию. На этом этапе клетки могут быть подсчитаны на концентрацию и проверены на жизнеспособность с помощью красителей, таких как Трипановый синий, который помогает определить, насколько суспензию следует разбавить для успешного роста.

Наконец-то нейроны готовы к культуре! Давайте рассмотрим некоторые важные меры, которые необходимо предпринять, чтобы сохранить их живыми и здоровыми. Очень важен состав питательных сред, которые используются для выращивания нейронов. В среду обычно добавляют специальные добавки, которые поддерживают выживание и рост нейронов. Другие добавки могут включать препараты, которые подавляют деление ненейрональных клеток, таких как глиальные клетки.

После того, как суспензия нейронных клеток смешивается со средой, клетки готовы к размещению в желаемых контейнерах. Это могут быть тарелки и тарелки для культур или стеклянные покровные листы, помещенные внутрь этих контейнеров. Поскольку нейроны не могут расти непосредственно на стекле, покровные стекла обрабатываются заранее, чтобы создать лучшие поверхности для прикрепления и роста клеток. Эти методы лечения могут включать покрытие синтетическими белками внеклеточного матрикса; например, полилизин и ламинин; или травление кислотой для придания шероховатости поверхности.

После нанесения пластин нейроны выращиваются в теплом, увлажненном инкубаторе. Рост нейронных процессов может наблюдаться в течение от нескольких часов до нескольких дней. Для поддержания культур часть питательных сред заменяется свежей средой примерно раз в неделю. Как правило, первичные культуры нейронов используются для экспериментов в период от нескольких дней до нескольких недель после осаждения.

Теперь, когда у вас есть нейроны, растущие в культурах, что вы можете сделать с этими клетками?

Одним из основных методов, обычно применяемых к культурам нейронов, является генетическая манипуляция путем трансфекции или вирусной трансдукции. Кодирующий генетический материал, например, мутантный белок, может быть введен в культивируемые нейроны для изменения функции нейронов. В качестве альтернативы, трансфекция с помощью двухцепочечной РНК является эффективным методом блокирования экспрессии белка. Доступность нескольких методов и реагентов для генетических манипуляций делает эту работу особенно ценным приложением для решения широкого круга исследовательских вопросов.

В качестве примера можно привести вопрос, который можно решить с помощью трансфекции в культурах нейронов: как и где определенные белки или белковые комплексы доставляются в различные морфологические структуры нейрона? Чтобы получить ответ, нейроны трансфицируются ДНК, кодирующей интересующий белок, который может быть слит с флуоресцентным белком, таким как зеленый флуоресцентный белок или GFP. Затем можно контролировать характер движения и локализацию флуоресцентно меченного белка с помощью визуализации в реальном времени. Этот метод может быть использован для изучения, например, транспортировки рецепторов нейротрансмиттеров на поверхность клетки.

Первичные культуры нейронов также очень полезны для электрофизиологических исследований, в которых электрическая активность отдельных клеток может быть измерена с помощью микроэлектродов. Один слой нейронов в культуре означает, что отдельные клетки легко поддаются воздействию, а такие манипуляции, как фармакологическое лечение, применяются быстро и равномерно. Например, влияние тестового соединения на активность одного нейрона может быть измерено с помощью техники патч-зажима в культивируемых нейронах.

Вы только что посмотрели введение JoVE в первичные нейронные культуры. В этом видео мы продемонстрировали, как подготавливаются эти культуры и для каких типов экспериментов они обычно используются. Первичные нейрональные культуры могут быть получены из широкого спектра тканевых источников, как правило, с использованием метода, включающего диссекцию, диссоциацию в клеточную суспензию и выращивание в питательных средах в инкубаторах.

Спасибо за просмотр!

Explore More Videos

Первичные культуры нейронов Нейробиологи Экспериментальные манипуляции Культивирование клеток Питательные среды Стерильная среда Теплый инкубатор Вскрытые ткани Животные модели Мыши Крысы Эмбрионы Новорожденные щенки Взрослые Ткани нервной системы Мозжечок Кора головного мозга Гиппокамп Спинной мозг Периферическая нервная система

Related Videos

Введение в нейрофизиологию

Введение в нейрофизиологию

Neuroscience

98.2K Просмотры

Электрофизиология патч-зажима

Электрофизиология патч-зажима

Neuroscience

98.4K Просмотры

Визуализация кальция в нейронах

Визуализация кальция в нейронах

Neuroscience

97.4K Просмотры

Введение в нейроанатомию

Введение в нейроанатомию

Neuroscience

64.7K Просмотры

Стереотаксическая хирургия на грызунах

Стереотаксическая хирургия на грызунах

Neuroscience

154.6K Просмотры

Гистологическое окрашивание нервной ткани

Гистологическое окрашивание нервной ткани

Neuroscience

160.1K Просмотры

Введение в поведенческую нейробиологию

Введение в поведенческую нейробиологию

Neuroscience

48.3K Просмотры

Водный лабиринт Морриса

Водный лабиринт Морриса

Neuroscience

53.7K Просмотры

фМРТ: функциональная магнитно-резонансная томография

фМРТ: функциональная магнитно-резонансная томография

Neuroscience

60.4K Просмотры

Введение в клеточную и молекулярную нейробиологию

Введение в клеточную и молекулярную нейробиологию

Neuroscience

76.1K Просмотры

Методы нейрональной трансфекции

Методы нейрональной трансфекции

Neuroscience

16.6K Просмотры

Эксплантная культура нервной ткани

Эксплантная культура нервной ткани

Neuroscience

23.7K Просмотры

Мышиная электропорация <i>в утробе</i> матери

Мышиная электропорация <i>в утробе</i> матери

Neuroscience

21.6K Просмотры

Введение в нейробиологию развития

Введение в нейробиологию развития

Neuroscience

41.3K Просмотры

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code