2 февраля 2015 г.
Мы представляем метод индуцирования повышенного внутриглазного давления (ВГД) путем введения магнитных микросфер в глаз крысы для моделирования глаукомы. Это приводит к сильному повышению давления и обширной гибели нейронов. Этот протокол прост в выполнении, не требует повторных инъекций и дает стабильные длительные подъемы ВГД.
Целью этой процедуры является индуцирование повышенного внутриглазного давления у крысы с помощью инъекции парамагнитных микросфер в переднюю камеру глаза. Сначала поместите магнитное кольцо вокруг глаза животного, находящегося под наркозом, промойте магнитные микросферы, снова суспендируйте их в растворе, а затем загрузите их в шприц. Затем введите магнитные микросферы в переднюю камеру глаза.
Снимите магнитное кольцо во время восстановления. Данные процесса, полученные в результате гистологических анализов, таких как туннельное окрашивание или окрашивание зрительного нерва, могут измерить гибель ганглиозных клеток сетчатки в результате повышенного внутриглазного давления. Стерилизованные магнитные микросферные шарики размером восемь микрон промыть три раза в одном миллилитре буферизованного солевого раствора Хенка методом reus, суспендируя и центрифугируя при 10 000-кратном G в течение пяти минут.
Затем суспензируйте в 0,5 миллилитрах HBSS по 30 миллиграмм на миллилитр раствора. Теперь, используя сонометр с отскоком, откалиброванный для использования на глазу крысы, проведите пять исходных измерений ВГД у бодрствующих животных. После обезболивания крысы наносят глазную мазь на неоцененный контралатеральный глаз, чтобы сохранить его влажным.
Во время анестезии на операционный глаз вводят 0,5% пропана гидрохлорид, местный анестетик. Далее промойте этот глаз 5%-ным повидон-йодом в воде. Через пять минут отключите повидон-йод и промойте глаз 0,9%-ным стерильным физиологическим раствором.
Поддерживайте влажный глаз во время анестезии с регулярным применением стерильного физиологического раствора. Теперь поместите стероидный магнит вокруг глаза, чтобы свести к минимуму риск травмы радужной оболочки и свести к минимуму потерю бусин. Ориентируйте иглу по касательной к поверхности роговицы как можно более параллельно радужной оболочке.
Приступайте к введению 25 микролитров по 30 миллиграмм на миллилитр, гамма-облученные магнитные микросферы в переднюю камеру. Оставьте иглу на месте на одну минуту после инъекции, чтобы убедиться, что шарики оседают в углу роговицы IOC, препятствуя оттоку воды из трабекулярной сетки. Слегка наклоните иглу через несколько секунд после того, как шарики первоначально осядут, чтобы обеспечить некоторую утечку воды и свести к минимуму временное повышение внутриглазного давления.
Чтобы обеспечить непрерывное использование иглы в отдельных процедурах, промойте иглу PBS. Затем 70% этанола, за которым следует дистиллированная вода на этом этапе. При необходимости снимите магнит и с его помощью втяните бусины в участки неполного покрытия.
Оставьте магнит на месте вокруг глаза еще на 10 минут после инъекции. Чтобы бусины хорошо прилегали к углу роговицы радужной оболочки. Обратная анестезия с использованием 0,25 мг на килограмм гидрохлорида ESOL.
Вводите 0,5 пропана гидрохлорида для обезболивания и мазь левомицетикола местно для профилактики инфекции. Оставьте животных восстанавливаться на тепловом коврике, пока они не восстановятся в движении. Затем переложите в теплую коробку.
Используйте контралатеральный глаз в качестве нерейтингового контроля. Повторяйте измерения ВГД каждые два-три дня после введения шариков и каждые два-три дня после этого, определите критерии для включения глаз в исследования, в том числе ВГД повышено над контралатеральным контрольным давлением на пять миллиметров ртутного столба, и ВГД не превышает 60 миллиметров ртутного столба. Тем не менее, при желании можно повторно ввести бусины в глаза, в которых не развивается высокое ВГД.
Зафиксируйте рассеченные глаза и зрительный нерв в 4%-ном паральдегиде, оценив повреждение нейронов сетчатки путем туннельного окрашивания и повреждение зрительного нерва с помощью туинового синего. Окрашивание. В этом эксперименте введение магнитных шариков в угол роговицы постоянно вызывало длительное и устойчивое повышение давления. Кроме того, увеличение давления сохранялось на протяжении всего эксперимента.
Среднее значение ВГД, усредненное по всей длине эксперимента для контрольных глаз без инъекции бусины, составило 19,7 плюс минус 0,3 мм ртутного столба и 40,5 плюс минус 2,8 мм ртутного столба для глаз с инъекцией бусин. Кроме того, пиковое значение ВГД увеличилось с 22,8 плюс минус 0,3 мм ртутного столба до 49,9 плюс минус 2,3 мм ртутного столба, чтобы определить, приводит ли повышение ВГД к гибели ганглиозных клеток сетчатки. Туннельное окрашивание проводили на сетчатке и гистологию на поперечных участках зрительного нерва в сетчатке.
Мы наблюдали увеличение туннельного окрашивания в глазах, введенных бусинами, с повышенным ВГД. Количество ядер апоптоза увеличилось примерно в 15 раз по сравнению с контралатеральной контрольной гипертензивной сетчаткой, как и ожидалось в глазах, в которые магнитные шарики вводились без давления, количество туннельных положительных клеток существенно не отличалось от таковых у контрольной группы, введенных без инъекций. Дальнейшее исследование патологии зрительного нерва на модели глаукомы показало накопление одинового синего цвета во многих аксонах, что указывает на дегенерацию этих клеточных процессов.
В данной работе представлен метод индуцирования повышенного внутриглазного давления (ВГД) у крыс путем введения магнитных микросфер в переднюю камеру глаза для моделирования глаукомы. Эта процедура приводит к значительному повышению давления и гибели нейронов, обеспечивая стабильный и длительный рост ВГД без необходимости повторных инъекций.
Данный метод обеспечивает создание надежной и воспроизводимой модели для индукции стойкого повышения внутриглазного давления у крыс, что позволяет проводить механистические исследования патофизиологии глаукомы. Модель способствует валидации мишеней, связывая повышение давления с гибелью ганглионарных клеток сетчатки и дегенерацией зрительного нерва, что обладает прогностической ценностью для скрининга нейропротекторных терапевтических средств. Простота модели и длительный эффект снижают вариабельность экспериментов, облегчая кросс-функциональное взаимодействие в процессах поиска и разработки лекарств.
Данная модель вписывается в континуум разработки препаратов для лечения глаукомы — от валидации мишени и поиска перспективных соединений до тестирования доклинической эффективности, что подтверждается ее способностью вызывать измеримое повышение IOP и последующую нейродегенерацию.