-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Долгосрочный мониторинг Непрерывный ЭЭГ в малых грызунов Модели заболеваний человека с использова...
Долгосрочный мониторинг Непрерывный ЭЭГ в малых грызунов Модели заболеваний человека с использова...
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Long-term Continuous EEG Monitoring in Small Rodent Models of Human Disease Using the Epoch Wireless Transmitter System

Долгосрочный мониторинг Непрерывный ЭЭГ в малых грызунов Модели заболеваний человека с использованием системы Эпоха беспроводной передатчик

Full Text
26,207 Views
08:43 min
July 21, 2015

DOI: 10.3791/52554-v

Andrew Zayachkivsky1, Mark J. Lehmkuhle2, F. Edward Dudek2

1Department of Neurosurgery,Yale University School of Medicine, 2Department of Neurosurgery,University of Utah

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Здесь мы демонстрируем использование беспроводной технологии для электроэнцефалограммы (ЭЭГ) в моделях заболеваний новорожденных грызунов. При использовании телеметрии отсутствуют обременительные соединения, что позволяет вести себя естественно.

Общая цель этой процедуры заключается в том, чтобы эффективно имплантировать эпический передатчик для записи высококачественной ЭЭГ у грызунов, таких как крысы и мыши. Это достигается путем предварительного обнажения и сушки поверхности черепа. Вторым шагом является сверление отверстий в черепе для вставки передатчика, электродов и любых необходимых костяных винтов.

Далее вставляются костные винты и выравниваются электроды передатчика. Заключительным этапом является вставка электродов и крепление преобразователя к черепу с помощью акрилового клея. В конечном счете, программное обеспечение для сбора видеоданных и обзора используется для мониторинга активности ЭЭГ 24 7 для регистрации всех событий ЭЭГ, таких как судороги и межприступные всплески.

Визуальная демонстрация этого метода имеет решающее значение, поскольку этапы имплантации сложны для изучения. Размер черепа грызуна приводит к сложной, но поддающейся обучению хирургической процедуре. Основная цель данной презентации – упростить эту процедуру имплантации и сделать ее легко воспроизводимой.

Впервые идея этого метода пришла нам в голову, когда мы испытывали трудности с долгосрочными электрографическими записями с животных моделей эпилепсии. Во время судорожных припадков проводные записи подвержены электрическим артефактам и нежелательной нагрузке на границу раздела электрода черепа. Проводные системы записи могут выйти из строя из-за того, что животное грызет трос и царапает имплантат.

Эта беспроводная система решает все эти проблемы, обеспечивая непрерывную запись ЭЭГ в течение шести месяцев. При подготовке к операции обязательно полностью простерилизуйте трансмиттер, замочите его в 70% этаноле, промойте в стерильном физрастворе и погрузите в стерильный физиологический раствор. Оставьте его там до тех пор, пока он не понадобится.

Последняя подготовка заключается в том, чтобы убедиться, что все на месте операции стерилизовано. Распылите и протрите окружающую территорию и оборудование 70% этанолом. После обезболивания животного обязательно убедитесь в отсутствии реакции на ущипывание пальца ноги, прежде чем начинать операцию, пока животное находится под наркозом.

Делайте это каждые 15 минут. Животное, находящееся под наркозом, должно быть сначала зафиксировано в положении в стереотаксической раме. Используйте ушные планки, но не затягивайте их слишком сильно, так как кожа молодых щенков очень мягкая.

После закрепления наложите носовой конус, чтобы подать 3% изофтора. Чтобы согреть животное, держите под ним грелку при температуре 37 градусов по Цельсию. Для взрослых животных также смажьте глаза.

Теперь простерилизуйте место разреза Сначала очистите кожу головы 70% этанолом, а затем Бетадином, потрите кожу круговыми движениями. Затем драпируйте животное. Начните с того, что очень осторожно сделайте разрез на волосистой части головы, немного за ушами, по средней линии.

Удлините разрез примерно на два сантиметра. У молодых щенков очень мягкий череп. Кроме того, сделайте этот разрез всего в один разрез, чтобы он зажил быстрее.

Таким образом обнажают череп. Далее, используя зажимы для аневризмы, возьмитесь за череп и обнажите и высушите область, где будет прикреплен передатчик. Имейте в виду, что у молодых щенков кости черепа не срастаются.

Затем высушите череп в том месте, где будет прикреплен передатчик Для прочного адгезивного соединения используйте электрокаутерную ручку, чтобы остановить кровотечение на черепе. Теперь, используя анатомические ориентиры и атлас мозга, определите местоположение черепа, чтобы разместить отверстие для записи. Затем с помощью биты Dremel и бора создайте два отверстия в месте записи диаметром не более 300 микрон.

Далее, над мозжечком и за лямбдой, поместите отверстие для бора. Для электрода сравнения убедитесь, что провода преобразователя выровнены по отверстиям бора. Если нет, проверьте посадку передатчика и аккуратно согните электроды, чтобы выровнять отверстия с помощью щипцов с тонкими наконечниками.

Теперь обрежьте их с помощью хирургических ножниц до нужной длины. Они должны простираться выше твердой мозговой оболочки для записи ЭЭГ или проникать вниз к определенным структурам мозга. Теперь без покрытия электроды наносят на передатчик достаточное количество цианоакрилата, чтобы полностью покрыть его.

Только не попадайте клей на электроды. Если передатчик собирается делать поверхностные записи, опустите передатчик в отверстия и просто удерживайте его на месте около минуты, слегка надавливая. Если запись будет вестись из глубоких структур мозга, установите передатчик на держатель канюли и поместите его на стереотаксическую руку.

Очень важно разместить электроды трансмиттера в отверстиях для бора без загрязнения клеем. Загрязнение приведет к ухудшению сигнала. Далее добавьте еще цианоакрилатного геля, чтобы прочно закрепить крепление передатчика.

Нанесите клей кругами, покрывающими стенки передатчика. Следите за тем, чтобы не закрывать антенну. Затем нанесите 100 микролитров химического ускорителя вокруг основания передатчика из шприца.

Не допускайте его контакта с окружающими тканями. Для удаления ускорителя тщательно промойте участок половиной миллилитра стерильного физиологического раствора. Теперь зашите кожу вокруг передатчика, не покрывая ее.

Верхняя часть передатчика должна быть вынесена наружу. Для хорошей передачи сигнала используйте викрил или шелковый шовный материал. При работе с нежными щенками кожа должна быть достаточно плотно прилегать к передатчику и окружающему клею.

Теперь переложите животное из каркаса в теплое одеяло Для восстановления детали послеоперационного ухода предусмотрены в текстовом протоколе. Перенесите одно имплантированное животное в записывающую камеру. Одновременно можно наблюдать только за одним имплантированным животным, но с ним могут находиться и другие неимплантированные животные.

Чтобы настроить регистратор, подключите блок питания к базе ресивера. Далее подключите базу к системе сбора данных через БНК. Теперь поместите клетку на основание приемника сигналов.

Сигнальная лампочка должна загореться. Теперь данные можно записывать. Сначала подключите базу ресивера к рекламному конвертеру и подключите конвертер к компьютеру.

Используя настройки программного обеспечения, установите частоту дискретизации записи на 500 в секунду. Передатчик посылает сигналы ЭЭГ в диапазоне от 0,1 до 100 Гц с восьмью децибелами на каждый спад VE на обоих концах. Мы рекомендуем 500 проб в секунду во время регистрации животных с вахты на наличие признаков стресса и обезвоживания.

Щенки не должны находиться в камере более двух часов. Передатчик был разработан в форм-факторе с минимальным повреждением и длительным временем автономной работы, запись могла выполняться непрерывно в течение шести месяцев в зависимости от емкости батареи. Мыши с возрастом P 12 и старше очень хорошо переносили передатчик, как и крысы в возрасте P 6 лет.

Прикрепление цианоакрилата к черепу не препятствовало развитию, что позволяло непрерывно собирать данные на протяжении всего развития животного во взрослом возрасте. Помните, что важно держать электроды подальше от загрязнения клеем после этой процедуры. Другие методы, такие как количественный анализ обнаружения припадков, могут быть выполнены, чтобы ответить на дополнительные вопросы, такие как время, течение и тяжесть эпилептического статуса.

Этот метод проложит путь исследователям эпилепсии к изучению неонатальных припадков и моделей перинатального инсульта у грызунов.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Неврология выпуск 101 Эпилепсия судороги беспроводной доклинических Крысы Мышь гипоксия ишемия Новорожденный

Related Videos

Одновременное электроэнцефалография, в режиме реального времени измерения концентрации лактата и Optogenetic Манипуляция активности нейронов в коры головного мозга грызунов

10:45

Одновременное электроэнцефалография, в режиме реального времени измерения концентрации лактата и Optogenetic Манипуляция активности нейронов в коры головного мозга грызунов

Related Videos

20.7K Views

Долгосрочный непрерывный электроэнцефалографический мониторинг у щенка грызуна

02:34

Долгосрочный непрерывный электроэнцефалографический мониторинг у щенка грызуна

Related Videos

475 Views

Non-запретительный EEG радиотелеметрии: Эпидуральная и Deep Внутримозговое стереотаксическая EEG Электрод Размещение

06:58

Non-запретительный EEG радиотелеметрии: Эпидуральная и Deep Внутримозговое стереотаксическая EEG Электрод Размещение

Related Videos

19.9K Views

Высокая плотность Электроэнцефалографические Приобретение в грызунах с использованием недорогих и с открытым исходным кодом ресурсов

12:39

Высокая плотность Электроэнцефалографические Приобретение в грызунах с использованием недорогих и с открытым исходным кодом ресурсов

Related Videos

16.6K Views

Пилокарпин модель височной эпилепсии и ЭЭГ мониторинга с использованием системы манулами мышей

10:08

Пилокарпин модель височной эпилепсии и ЭЭГ мониторинга с использованием системы манулами мышей

Related Videos

20.7K Views

Одновременная видео ЭЭГ-мониторинг ЭКГ для выявления Neurocardiac дисфункции в моделях мыши эпилепсии

11:54

Одновременная видео ЭЭГ-мониторинг ЭКГ для выявления Neurocardiac дисфункции в моделях мыши эпилепсии

Related Videos

26.8K Views

Использование беспроводной системы видеоэЭГ для мониторинга эпилептиформных разрядов после боковой жидкости-перкуссии индуцированной травматического повреждения головного мозга

09:16

Использование беспроводной системы видеоэЭГ для мониторинга эпилептиформных разрядов после боковой жидкости-перкуссии индуцированной травматического повреждения головного мозга

Related Videos

26.3K Views

Анализ записей долгосрочной электрокардиографии для выявления аритмий у мышей

06:07

Анализ записей долгосрочной электрокардиографии для выявления аритмий у мышей

Related Videos

4.3K Views

Носимая электромиографическая измерительная система для мелких животных в режиме реального времени

05:00

Носимая электромиографическая измерительная система для мелких животных в режиме реального времени

Related Videos

1.3K Views

Хирургическая процедура имплантации и конфигурация проводки для непрерывного долгосрочного мониторинга ЭЭГ/ЭКГ у кроликов

08:36

Хирургическая процедура имплантации и конфигурация проводки для непрерывного долгосрочного мониторинга ЭЭГ/ЭКГ у кроликов

Related Videos

950 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code