25 марта 2016 г.
Материнская иммунная активация (MIA) является моделью фактора риска аутизма и шизофрении в окружающей среде. Целью данной статьи является предоставление пошаговой процедуры индуцирования MIA у беременных мышей с целью повышения воспроизводимости этой модели.
Общая цель данной процедуры заключается в индукции материнской иммунной активации (MIA) у мышей путем внутрибрюшинного введения вирусного миметика poly на средней стадии эмбрионального развития. Этот метод позволяет ответить на ключевые вопросы в области нейроиммунологии, например, о том, как иммунная дисфункция может приводить к нарушениям развития мозга и поведения. Основным преимуществом данной методики является то, что она специально разработана для исследователей, изучающих MIA как фактор риска окружающей среды при возникновении аутизма и шизофрении.
Как правило, специалисты, впервые использующие данный метод, могут столкнуться с трудностями, так как незначительные различия в методе индукции MIA могут существенно изменить последующую реакцию у потомства. Чтобы организовать спаривание с фиксированным временем, начните с размещения по пять самок мышей в стандартных клетках, расположенных рядом друг с другом, для синхронизации их эстральных циклов; каждое животное следует пометить с помощью прокола ушной раковины. За два-ноль часов до начала темного цикла распределите самок по две особи в клетку, взвесьте и запишите массу тела каждой мыши, после чего добавьте по одному самцу в каждую клетку с двумя самками.
В интервале от 0 до 4 часов после окончания темного цикла аккуратно приподнимите каждую самку мыши за основание хвоста, позволяя животному ухватиться передними лапами за решетку клетки, чтобы определить наличие беловатой массы в вагинальном отверстии. Если пробка не видна, осторожно введите наконечник пипетки объемом 200 µL в вагинальное отверстие. Сопротивление при введении, вызванное коагуляцией, подтверждает образование пробки.
Поместите мышей с вагинальными пробками в новую клетку, так как наличие пробки подтверждает только факт спаривания. На 10,5–11,5 эмбриональные дни возьмите каждую самку с пробкой за основание хвоста и проверьте наличие выпячивания в области живота, затем взвесьте мышей для подтверждения беременности и пересадите беременных животных в индивидуальные чистые клетки. Отвесьте порошок poly(I:C) в конической пробирке объемом 50 milliliter.
На 12,5 эмбриональный день добавьте соответствующий объем 0,9% раствора хлорида натрия к соответствующему объему poly(I:C) в коническую пробирку и закройте крышку. Осторожно перекатывайте каплю физраствора по порошку до полного растворения и получения прозрачного раствора. Затем центрифугируйте пробирку и перенесите раствор poly(I:C) в микроцентрифужную пробирку.
Используйте спектрофотометр для измерения соотношения поглощения при 260 и 280 нм раствора poly(I:C). Согласно описанию производителя, это соотношение должно составлять от 1.54 до 1.82. Затем взвесьте первую мышь и наберите в инсулиновый шприц объемом 0.3 мл соответствующий рассчитанный объем раствора poly(I:C).
Затем, взяв мышь за хвост, поместите ее на крышку клетки и зафиксируйте, захватив за загривок. Введите иглу срезом вверх в область между двумя верхними сосками под углом примерно 20 градусов по отношению к телу мыши и введите раствор poly(I:C). После этого верните мышь в клетку.
После проведения всех инъекций разместите клетки в тихом помещении с низкой проходимостью, чтобы избежать влияния сторонних факторов, и взвесьте мышей на следующее утро. Минимум за три дня до поведенческого тестирования замените подстилку в клетках взрослых потомков с иммунной активацией матери (MIA) в возрасте от 8 до 12 недель. За 30 минут до начала теста дайте мышам адаптироваться к условиям помещения для тестирования.
Для проведения теста на предожидательное торможение (PPI) зафиксируйте мышей в плексигласовых цилиндрах на пьезоэлектрическом датчике. Дайте мыши привыкнуть к камере для теста на предожидательное торможение в течение пяти минут, проведя шесть проб с белым шумом интенсивностью 120 децибел. Затем подвергните мышей воздействию рандомизированных комбинаций звуков, как указано в таблице, и сравните результаты с исходной старт-реакцией, чтобы определить степень предожидательного торможения у животных с MIA.
Для проведения теста в открытом поле поместите мышь в угол открытой квадратной арены с определенной центральной зоной размером 17 на 17 сантиметров и записывайте траекторию движения мыши в течение 10 минут с помощью камеры, закрепленной на потолке. Затем количественно определите количество заходов в центральную зону и время, проведенное в ней. Для проведения теста на закапывание шариков адаптируйте мышь к тестовой клетке с плотно уложенным чистым наполнителем из осины и сосны глубиной 5 сантиметров в течение 10 минут, затем верните мышь в домашнюю клетку и аккуратно разложите 20 темно-синих стеклянных шариков диаметром 1,5 сантиметра в виде сетки 4 на 5 в тестовой клетке.
Теперь верните мышь в тестовую клетку на 10 минут, затем поместите животное обратно в домашнюю клетку и подсчитайте количество стеклянных шариков, которые были зарыты в течение периода тестирования. Инъекция poly(I:C) на 12,5 эмбриональный день может вызвать острый воспалительный ответ в материнско-плацентарно-плодной оси и привести к хроническому воздействию на развитие мозга и поведенческие фенотипы. Действительно, poly(I:C) индуцирует более высокую экспрессию гена Il6 в селезенке матери, плаценте и мозге плода через три часа после инъекции.
В целом, по сравнению со взрослым потомством, получавшим физиологический раствор, वयस्कлые особи потомства после MIA реже заходят в центральную зону и проводят в ней меньше времени в тесте «открытое поле». Животные, которым вводили poly(I:C), также демонстрируют более частое зарывание объектов в тесте на зарывание стеклянных шариков и более низкий уровень предомиксового торможения. Другим характерным признаком потомства после MIA является утрата клеток Пуркинье в седьмой доле мозжечка: у этих животных в седьмой доле мозжечка наблюдается меньшее количество кальбиндин-положительных клеток Пуркинье по сравнению с контрольной группой, получавшей физиологический раствор.
При выполнении данной процедуры важно помнить, что беременных мышей нельзя беспокоить после индукции MIA. Впоследствии для изучения дополнительных взаимодействий с окружающей средой можно индуцировать такие факторы, как постнатальный стресс или инфекция.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье описывается процедура индуцирования материнской иммунной активации (MIA) у беременных мышей — модели, имеющей значение для исследований аутизма и шизофрении. Целью данного метода является повышение воспроизводимости исследований, изучающих влияние иммунной дисфункции на развитие мозга и поведение.
Модели материнской иммунной активации (MIA) обеспечивают механистическую связь между факторами риска окружающей среды и фенотипами нарушений нейроразвития, что способствует валидации мишеней в исследованиях аутизма и шизофрении. Протокол индукции poly(I:C) на стадии E12.5 позволяет воспроизводимо нарушать работу оси «мать — плацента — плод», облегчая снижение рисков при проверке терапевтических гипотез, связанных с иммуноопосредованным развитием мозга. Данный подход повышает прогностическую достоверность доклинического скрининга, связывая иммунную активацию с количественно определяемыми поведенческими и нейроанатомическими результатами.
Метод индукции MIA вписывается в континуум открытий — от проверки гипотез о мишенях до фенотипического скрининга и доклинической валидации, в частности, для иммуномодулирующих кандидатов при нарушениях нейроразвития.