14 мая 2016 г.
Здесь мы описываем метод долгосрочной покадровой микроскопии для продольного отслеживания отдельных клеток в ответ на противораковую терапию.
Общая цель этой процедуры заключается в наблюдении за противораковым терапевтическим ответом в отдельных клетках в культуре. Этот метод может ответить на ключевые вопросы в области исследований рака, включая гетерогенный терапевтический ответ и судьбу клеток. Для начала в сертифицированном стерильном ламинарном колпаке подготовьте клетки HT1080 в сертифицированных для культивирования чашках в соответствии с текстовым протоколом и инкубируйте клетки в инкубаторе для увлажненных клеточных культур.
За два дня до визуализации нанесите 50 000 клеток HT1080 FuGENE на лунку в желаемое количество лунок 12-луночной чашки со стеклянным дном No 1,5. Отрегулируйте количество пластинчатых клеток в зависимости от скорости их роста и используемой чашки, чтобы достичь примерно 60% слияния к началу эксперимента.
Установите в камере влажности около 80% и температуру в месте расположения образца на уровне 37 градусов Цельсия. Убедитесь, что резервуар для воды наполнен стерильной дистиллированной водой в соответствии с инструкциями производителя. Затем включите климатическую камеру на нужную температуру, установите ее в предметный столик микроскопа и установите.
Если между верхней камерой сцены и вставкой сцены есть свободное пространство, положите куски парафиновой пленки по краям отверстия для вставки на сцену, прежде чем вставлять в него камеру, чтобы соединить камеру со сценой. Убедитесь, что в камере не натягиваются соединения, которые могут привести к возникновению артефактов движения. Вставьте в камеру фиктивную чашку с водой и дайте камере уравновеситься до 37 градусов по Цельсию, а затем поддерживайте стабильную температуру.
Чтобы настроить визуализацию, включите микроскоп, компьютер и все необходимые периферийные устройства. В зависимости от источника света подождите, пока он не понадобится. Когда револьверная головка объектива находится в низком положении, выберите объектив с числовой апертурой 20x 0,7.
Затем поместите образец над объективом, что облегчит поиск клеток, когда образец находится в камере. После переноса визуализируемых ячеек в климатическую камеру, согласно текстовому протоколу, запечатайте камеру для поддержания стабильной среды и включите атмосферный газ. Затем выберите условия изображения, которые предотвратят фототоксичность за счет ограничения времени экспозиции и использования света более низкой интенсивности.
Найти плоскости X, Y и Z и требуемые длины волн для каждой позиции, которую необходимо изобразить. Для долгосрочного промежутка времени большинства клеточных процессов получайте одно изображение каждые десять-двадцать минут. Более высокое временное разрешение обеспечивает большее количество точек данных и более надежное отслеживание клеток, но приводит к более интегрированному воздействию света и большим наборам данных.
Поскольку HT1080 FuGENE имеет динамические зеленые и красные флороресцентные белки, используйте следующее время воздействия и используйте контейнер два на два. В разделе «Расширенные настройки» включите программно-управляемую автофокусировку с использованием настроек по умолчанию. Определите диапазон автофокусировки 10 микрометров с рекомендуемым размером шага.
В экспериментальной чашке для уменьшения теплового дрейфа замените половину среды на среду, содержащую нужный препарат, которая была нагрета до 37 градусов Цельсия. Наконец, запустите таймлапс и получите изображения в соответствии с текстовым протоколом. В этих фильмах показаны примеры пары совместимых клеточных линий MCF7, полученных из рака молочной железы, которые отличаются только своим статусом p53, которые были обработаны противораковым препаратом, ингибирующим кинезин-5, что приводит к остановке митоза.
Как видно на этом рисунке, когда р53 удаляется путем стабильного нокдауна р53, вместо того, чтобы останавливаться после того, как они покидают митоз, клетки проходят через повторяющиеся циклы, в которых они вступают во второй раунд митоза, а не останавливаются, и покидают митоз без деления. Здесь показаны клетки Hela, полученные из карциномы шейки матки, стабильно экспрессирующие маркер хроматина Histone 2b, слитый с mCherry, и бета-тубулин, слитый с EGFP. При лечении препаратом, стабилизирующим микротрубочки, паклитаксолом, выравнивание хромосом и сегрегация нарушаются во время митоза, что приводит к образованию ядерных выпуклостей и микроядер, склонных к повреждению ДНК.
Эта клеточная линия стабильно коэкспрессирует два индикатора флороресцентного убиквитина клеточного цикла для CDT1, оранжевого цвета и геминина зеленого цвета, и нормально прогрессирует по клеточному циклу. Когда те же клетки обрабатываются ингибитором CDK46, клетки проходят через фазу G2 и делятся нормально, а затем сильно останавливаются в фазе G1, что указывает на потенциал аффективных цитостатических эффектов при растущих опухолях. Основное преимущество этого метода заключается в том, что вы можете отслеживать реакцию одной клетки непосредственно в режиме реального времени в течение многих дней, а не делать выводы об этих реакциях.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В этой статье описан метод долгосрочной микроскопии с временной разверткой для отслеживания реакций отдельных клеток на противораковые терапевтические средства. Метод позволяет исследователям наблюдать неоднородные терапевтические реакции и судьбу клеток в реальном времени.
Longitudinal single-cell tracking addresses a critical gap in oncology drug development by revealing heterogeneous therapeutic responses masked in population-based assays. This capability enhances predictive confidence in target validation and lead identification by enabling direct observation of cell fate decisions, pathway dynamics, and resistance mechanisms over extended periods. The method supports mechanistic de-risking and translational continuity from discovery through preclinical stages, informing portfolio triage and risk-adjusted advancement decisions.
The method fits within the discovery continuum from target validation to lead optimization, where dynamic phenotypic readouts inform structure-activity relationships and selectivity profiling.