-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Пространственные измерения перфузии, интерстициальный давления жидкости и Липосомы Накопление в с...
Пространственные измерения перфузии, интерстициальный давления жидкости и Липосомы Накопление в с...
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
Spatial Measurements of Perfusion, Interstitial Fluid Pressure and Liposomes Accumulation in Solid Tumors

Пространственные измерения перфузии, интерстициальный давления жидкости и Липосомы Накопление в солидных опухолях

Full Text
7,973 Views
09:00 min
August 18, 2016

DOI: 10.3791/54226-v

Shawn Stapleton1,2,3, Daniel Mirmilshteyn2, Jinzi Zheng3,4, Christine Allen2,4,5, David A. Jaffray1,2,3,4,5,6

1Department of Medical Biophysics,University of Toronto, 2Leslie Dan Faculty of Pharmacy,University of Toronto, 3STTARR Innovation Centre,Princess Margaret Cancer Centre, 4Institute of Biomaterials and Biomedical Engineering,University of Toronto, 5Techna Institute,University Health Network, 6Radiation Medicine Program,Princess Margaret Cancer Centre

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Гетерогенное внутриопухолевое накопление липосом было связано с аномальным микроокружением опухоли. В данной работе представлены методы измерения микроциркуляции опухоли с помощью перфузионной визуализации и повышенного давления интерстициальной жидкости (ИНТЕРН) с использованием роботизированной системы под визуальным контролем. Измерения сравнивают с внутриопухолевым накоплением липосом, определенным с помощью объемной микрокомпьютерной томографии.

Общая цель этого эксперимента состоит в том, чтобы связать внутриопухолевое накопление нотерапевтики со свойствами опухолевого микроокружения, включая микроциркуляцию опухоли и повышенное давление интерстициальной жидкости, или ВЛТ. Этот метод позволяет ответить на важные вопросы о наномедицине. Например, что движет гетерогенным поглощением наночастиц внутри опухоли?

Основное преимущество этой методики заключается в том, что она позволяет проводить колокализованное пространственное картирование свойств опухолевого микроокружения и внутриопухолевого распределения наночастиц. После подтверждения соответствующего уровня анестезии топенге нанесите мазь на глаза мыши и обмотайте конечности животного в положении лежа на тонкой пластиковой доске. Затем вставьте специальный катетер 27-го калибра, соединенный с 20-сантиметровым куском трубки PE10, в боковую хвостовую вену и закрепите трубку несколькими кусками ленты.

Теперь наполните один миллилитровый шприц не менее чем 200 микролитрами липосом, полученных методом компьютерной томографии или КТ, и один одномиллионный шприц не менее чем 150 микролитрами свободного йогексола в соотношении 9:1 по объему, смешанного с физиологическим раствором. Поместите липосомальный шприц КТ в шприцевой насос и присоедините катетер к шприцу, установив скорость помпы 600 микролитров в минуту, что эквивалентно 10 микролитрам в секунду. Затем поместите мышь на ложе микрокомпьютерного томографа и с помощью лазерной системы позиционирования отрегулируйте опухоль так, чтобы она была примерно в одной и той же ориентации при каждом сканировании.

Используя программное обеспечение консоли компьютерного томографа для каждого интересующего вас протокола визуализации, выберите яркий темный из выпадающего меню и нажмите кнопку сканирования, чтобы начать калибровку и инициализировать систему. Чтобы получить объемную анатомическую микрокомпьютерную томографию опухоли перед введением контрастного вещества, сначала проверьте индикатор программного обеспечения консоли компьютерного томографа, чтобы убедиться, что защитные блокировки компьютерного томографа были сняты. Затем выберите скан, который использует энергию рентгеновского излучения 80 киловольт, ток трубки 70 миллиампер и захватывает 1000 проекций изображения.

Затем запустите сканирование. Когда сканирование будет завершено, настройте насос на впрыск примерно 150 микролитров раствора липосомы и нажмите кнопку запуска, чтобы ввести болюс липосом КТ в концентрации 55 миллиграммов йода на миллилитр раствора. Вручную промойте катетер 50 микролитрами физиологического раствора, чтобы убедиться, что было введено все количество липосомального агента и что катетер очищен.

Через 10 минут проведите повторное анатомическое сканирование опухоли, как показано только что на рисунке. Чтобы выполнить DCE-CT, поместите шприц со свободным раствором йогексола в шприцевой насос и настройте насос на впрыскивание 100 микролитров йогексола с той же скоростью впрыска. Эти объемы инъекций превышают норму в 200 микролитров, но животные находятся под наблюдением во время выздоровления и никаких побочных эффектов не наблюдалось.

Затем на консоли компьютерного томографа выберите пятиминутное динамическое сканирование с использованием рентгеновской энергии 80 киловольт и тока трубки 90 миллиампер, как только что продемонстрировано, которое захватывает 416 проекций изображения каждую секунду в течение первых 30 секунд, а затем 416 проекций изображения каждые 10 секунд. Захватите данные DCE-CT за пять секунд, а затем запустите насос впрыска. В конце сканирования проведите третью объемную анатомическую микрокомпьютерную томографию.

Через 48-70 часов сделайте анатомические КТ-изображения липосом, используя те же объемные настройки, которые только что были продемонстрированы. Чтобы измерить ИЧ, прикрепите животное к роботизированной платформе КТ ИНТЕРН таким образом, чтобы опухоль была иммобилизована и доступна для роботизированной системы КТ ИНТЕРН. Получите анатомическую микрокомпьютерную томографию, как показано только что на рисунке.

Затем загрузите данные перед введением иглы в программное обеспечение для выравнивания робота CT IFP и отрегулируйте окно и уровень для визуализации опухоли. Нажмите на край опухоли на любом изображении, после чего выберите второе расположение края на соседней стороне опухоли. Программное обеспечение рассчитает ряд позиций вдоль линейной линии между двумя точками.

Затем выберите координаты X, Y и Z для серии из пяти-восьми равномерно расположенных позиций из списка. Далее промойте иглу системы ИНТЕРН физиологическим раствором гепарина и введите первые заданные положения игл в координатные окна X, Y, Z программного обеспечения для управления роботом ИНД КТ. Нажмите кнопку «Вперед», чтобы переместить робота в нужное место.

Затем для каждого положения иглы по очереди нажмите кнопку вставки иглы, чтобы ввести иглу в ткань. Сожмите и отпустите трубку PE20, чтобы убедиться в хорошем взаимодействии жидкости между иглой IFP и тканью, и наблюдайте, как измерение IFP увеличивается и возвращается к значению до защемления в программном обеспечении для сбора IFP. Наконец, проведите анатомическую компьютерную томографию со вставленной иглой, нажав кнопку втягивания иглы в конце сканирования, чтобы извлечь иглу из ткани.

Выбор области интереса в опухоли дает кривую времени/интенсивности, которая может быть использована для получения количественных оценок выбранных гемодинамических параметров в опухоли. Сегментация объема опухоли на несколько областей интереса одинакового размера позволяет количественно оценить пространственное распределение этих параметров в объеме опухоли. Также можно наблюдать биораспределение липосом КТ через 48 часов после инъекции.

Как указано, агент все еще циркулирует в сосудистой системе, при этом значительное поглощение наблюдается в селезенке и печени. Внутриопухолевое накопление этих липосом, полученных методом КТ, неоднородно с преобладанием периферического накопления по сравнению с центром опухолевой ткани. Игла может быть четко идентифицирована с помощью микрокомпьютерной томографии с высоким разрешением, что позволяет пространственно локализовать измерения IFP в объеме опухоли.

Пространственно колокализованное измерение обильности и объемной доли плазмы демонстрирует значимую корреляцию с внутриопухолевым накоплением липосом КТ в подкожных опухолях. Кроме того, радиальное распределение IFP коррелирует с другими гемодинамическими измерениями, что свидетельствует о сложной пространственно-временной связи между микроциркуляцией опухоли, IFP и внутриопухолевым накоплением липосом. Во время этой процедуры важно закрепить животное на ложе сканера, обеспечив минимальное движение опухоли между измерениями ИНТЕРН

.

Последствия этой работы распространяются на разработку новых методов лечения. Транспортировка наночастиц является ключевым первым шагом в создании эффективных терапевтических средств на основе наномедицины. После просмотра этого видео у вас должно быть хорошее представление о том, как пространственно картировать давление внутритканевой жидкости опухоли, микроциркуляцию опухоли и распределение наночастиц.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Медицина выпуск 114 Intra-опухолевое Неоднородность кровоток тканевую жидкость под давлением Наночастицы Наномедицина Транспорт доставка лекарств

Related Videos

Трехмерные модели культуры клеток для измерения действию тканевой жидкости потока на опухолевой инвазии сотовых

07:41

Трехмерные модели культуры клеток для измерения действию тканевой жидкости потока на опухолевой инвазии сотовых

Related Videos

17K Views

Улучшена визуализация метастазов в легких на одной резолюции сотовый у мышей, комбинированные В месте Перфузии легочной ткани и X-Gal Окрашивание LacZ-Меткой опухолевых клеток

08:47

Улучшена визуализация метастазов в легких на одной резолюции сотовый у мышей, комбинированные В месте Перфузии легочной ткани и X-Gal Окрашивание LacZ-Меткой опухолевых клеток

Related Videos

17.6K Views

Пространственное измерение давления интерстициальной жидкости в опухолях: метод измерения давления интерстициальной жидкости

03:34

Пространственное измерение давления интерстициальной жидкости в опухолях: метод измерения давления интерстициальной жидкости

Related Videos

3.4K Views

В естественных изображений опухолевого ангиогенеза с помощью флуоресцентной конфокальной видеомикроскопии

05:08

В естественных изображений опухолевого ангиогенеза с помощью флуоресцентной конфокальной видеомикроскопии

Related Videos

11.1K Views

Автоматическое измерение микроциркуляции крови скорость потока в легочных метастазов у ​​крыс

10:56

Автоматическое измерение микроциркуляции крови скорость потока в легочных метастазов у ​​крыс

Related Videos

8.7K Views

Флуоресценции тушение липосомальной инкапсулированный в ближней инфракрасной области флуорофорные как инструмент для В Vivo Оптических изображений

10:55

Флуоресценции тушение липосомальной инкапсулированный в ближней инфракрасной области флуорофорные как инструмент для В Vivo Оптических изображений

Related Videos

16.6K Views

Прижизненной микроскопии опухольассоциированных сосудистую использования передовых спинной складки окно камеры на трансгенные флуоресцентных мышей

08:52

Прижизненной микроскопии опухольассоциированных сосудистую использования передовых спинной складки окно камеры на трансгенные флуоресцентных мышей

Related Videos

14.3K Views

Оценка опухолевой микросреды метастазов Doorway-Mediated Сосудистая проницаемость, связанная с распространением раковых клеток с помощью интравитального изображения и фиксированного анализа тканей

09:42

Оценка опухолевой микросреды метастазов Doorway-Mediated Сосудистая проницаемость, связанная с распространением раковых клеток с помощью интравитального изображения и фиксированного анализа тканей

Related Videos

9.1K Views

Подготовка, введение и оценка тканеспецифического клеточного поглощения in vivo липосом, меченных флуоресцентным красителем

08:44

Подготовка, введение и оценка тканеспецифического клеточного поглощения in vivo липосом, меченных флуоресцентным красителем

Related Videos

5.2K Views

Создание физиологической васкуляризированной модели микроопухоли человека для исследования рака

07:26

Создание физиологической васкуляризированной модели микроопухоли человека для исследования рака

Related Videos

2.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code