6 августа 2018 г.
Ферментативная активность лактазы имеет важное значение для катаболических обработки дисахарид лактоза. Здесь активность лактазы в биологически активных добавок является анализ с использованием колориметрического анализа. Это обеспечивает студентов экспериментальной площадкой для понимания активность лактазы и фермента кинетики.
Этот метод является полезным инструментом для ознакомления студентов с концепциями, управляющими ферментативными реакциями. Основное преимущество этого метода заключается в том, что он подходит для студентов с очень небольшим опытом работы в мокрых лабораториях, обеспечивая надежные результаты для наблюдения и интерпретации. Чтобы начать протокол, нанесите этикетку на 15-миллилитровую суспензию в тюбике.
Одну таблетку лактазы, содержащую 200 мг фермента, измельчить в ровный порошок с помощью ступки и пестика. Поместите полученный порошок в помеченную пробирку и повторно суспендируйте его в 10 миллилитрах 100 миллимолярного фосфатного буферного раствора, или PBS. Ввергните раствор в течение одной минуты, чтобы максимизировать экстракцию фермента.
Затем перелейте один миллилитр из суспензии в пробирку объемом 1,5 миллилитра и вращайте образец в течение одной минуты при температуре 10 000 G для осаждения твердых частиц. Перенесите 500 микролитров надосадочной жидкости в чистую 1,5-миллилитровую тубу с меченым экстрактом лактазы. Поместите 390 микролитров 100 миллимолярных PBS в 1,5-миллилитровую пробирку с маркировкой реакции А. Затем добавьте 100 микролитров пятимиллимолярного раствора ONPG и хорошо перемешайте путем вортексирования.
Добавьте 10 микролитров экстракта в реакционную пробирку и перебейте содержимое. Часто наблюдайте за реакционной смесью в течение пяти минут и отмечайте любые колориметрические изменения раствора. Установите две пробирки по 1,5 миллилитров, одну меченую реакцию В, одну меченую контрольную.
Добавьте 390 микролитров 100 миллимолярных PBS в реакционную В-трубку, 400 микролитров 100 миллимолярных PBS в контрольную трубку, а затем добавьте по 100 микролитров пяти миллимолярных ONPG в каждую трубку. Перемешайте содержимое путем вортексинга. Добавьте 10 микролитров экстракта лактазы в реакционную В-пробирку, перемешайте вортексированием и дайте реакции протекать в течение одной минуты при комнатной температуре.
По прошествии одной минуты добавьте 500 микролитров одного молярного карбоната натрия в обе трубки, чтобы ингибировать фермент лактазу за счет повышения pH, останавливая реакцию. Перелейте 500 микролитров из каждой пробирки в чистые кюветы спектрофотометра и измерьте поглощение на 420 нанометрах. Установите три контрольные трубки и три реакционные трубки и пометьте их как четыре градуса Цельсия, комнатная температура, и 37 градусов Цельсия.
После добавления ферментного экстракта инкубируйте одну пробирку на льду, одну при комнатной температуре и одну при 37 градусах Цельсия на предварительно разогретой водяной бане в течение одной минуты. Затем остановите реакцию, добавив в каждую пробирку по 500 микролитров одного моляра карбоната натрия. Измерьте поглощение на 420 нанометрах для каждой трубки.
Запишите значения, в каждом случае вычитая контрольное значение из значения реакции. При использовании протокола контроль остается прозрачным, в то время как реакционный раствор, содержащий экстракт из таблетки лактазы, становится желтым по мере гидролиза ONPG, высвобождая ортонитрофенол. После анализа образцов с помощью спектрофотометра выработка ортонитрофенола является наименьшей при инкубации реакции на льду и самой высокой при проведении реакции при 37 градусах Цельсия.
Пытаясь выполнить эту процедуру, важно помнить, что перед добавлением ферментного экстракта реакции должны протекать при соответствующей температуре.
В данной статье представлена колориметрическая методика для измерения ферментативной активности лактazy, которая имеет решающее значение для переработки лактозы. Метод разработан для студентов с минимальным опытом работы в мокрой лаборатории, что позволяет им наблюдать и интерпретировать кинетику ферментов эффективно.
This educational protocol demonstrates a foundational enzyme activity assay using lactase, a therapeutically relevant target in gastrointestinal disorders. The colorimetric method provides a scalable, reproducible approach for teaching enzyme kinetics principles applicable to early-stage target validation and assay development in biopharma R&D. By linking enzymatic function to a clinically significant substrate (ONPG), the assay supports mechanistic de-risking and predictive confidence in enzyme-targeted therapeutic strategies.
The lactase activity assay fits within the early discovery continuum, supporting target validation through functional enzyme measurement and enabling assay development for screening campaigns focused on gastrointestinal targets.