13 августа 2016 г.
Микроустройства, интегрированные с жидкостными компонентами, обеспечивают платформу in vitro для клеточных исследований, имитирующую микроокружение in vivo. Мы разработали микрофлюидные чипы на основе полиметилметакрилата для изучения клеточных реакций на одиночные или сосуществующие химические/электрические/сдвиговые стрессовые стимулы.
Общая цель данной процедуры заключается в проектировании и изготовлении микрофлюидных устройств для наблюдения за тем, как клетки реагируют на внешние раздражители. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области клеточной биологии и биомедицинской инженерии, например, как клетки реагируют на различные внешние стимулы, включая химические вещества, напряжения сдвига и электрическое поле. Основным преимуществом этой методики является простота изготовления и сборки каналов. Кроме того, данные микрофлюидные устройства позволяют с высокой точностью воссоздавать условия in-vivo. Процедуру продемонстрируют Цзу-Юань Чоу, студент бакалавриата моей лаборатории, и Сянь-Сан Хоу, сотрудник лаборатории доктора Джулиана Чунга. Для начала включите углекислотный лазерный гравер и проверьте его подключение к компьютеру. Затем загрузите в гравер заранее отрисованный шаблон в виде «елочки», например один из представленных здесь шаблонов. Далее поместите лист PMMA или кусок двухстороннего скотча на платформу гравера. Отрегулируйте фокус углекислотного лазера с помощью калибровочной линейки и видимого гелий-неонового лазера. Затем выгравируйте шаблон на подложке. По завершении возьмите подложку с шаблоном, удалите ненужные части и используйте струю азота, чтобы очистить поверхность от остатков мусора. Повторите этот процесс для каждого компонента чипа. Соберите микрофлюидный чип для изучения химического напряжения сдвига. Для этого соедините три листа PMMA с выгравированным шаблоном для химического напряжения сдвига, используя два кусочка выгравированного двухстороннего скотча. Используя суперклей, прикрепите акриловые адаптеры с резьбой в центре к верхнему слою PMMA чипа, совместив резьбу с отверстиями. Эти адаптеры будут служить входами и выходами для среды, а также коннекторами солевого мостика. Затем добавьте еще один слой двухстороннего скотча толщиной 0.7 mm к нижней части чипа и прикрепите чип к чашке Петри диаметром 10 cm. После сборки поместите чип в вакуумную камеру на ночь. Теперь соберите чип для изучения химического-электрического поля. Прикрепите выгравированный лист PMMA для чипа химического-электрического поля к чашке Петри диаметром 10 cm с помощью двухстороннего скотча. Перед использованием чипов подвергните их воздействию УФ-излучения в течение 30 минут для стерилизации. Затем соедините входы чипов с шприцами объемом 3 ml, заполненными PBS, с помощью пластиковых трубок и зажимных гаек. Аналогичным образом соедините выходы с трубкой для отходов. Медленно нажмите на поршень шприца, чтобы заполнить флюидные каналы PBS. Перемещайте поршень шприца вперед и назад, чтобы удалить пузырьки воздуха, затем поместите чипы в инкубатор на ночь. Для настройки чипов химического-электрического поля заполните трубчатые гайки 3% раствором агарозы для создания солевых мостиков. Затем поместите электроды из серебра/хлорида серебра в трубчатые гайки. Культивируйте клетки рака легкого CL1-5 в среде D-MEM с добавлением 10% FBS до достижения 90% конфлюэнтности. Затем аспирируйте среду. Один раз промойте клетки предварительно подогретым PBS. И добавьте 2 ml 0.05% раствора трипсинового буфера в чашку диаметром 10 cm. Поместите клетки обратно при 37
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной работе представлены микрофабрикованные устройства, интегрированные с флюидными компонентами, которые создают платформу in vitro для изучения клеток, максимально имитирующую микроокружение in vivo. Исследование сосредоточено на микрофлюидных чипах на основе полиметилметакрилата, предназначенных для изучения клеточных ответов на различные стимулы.
Микрофлюидные платформы, обеспечивающие точный контроль химических, электрических стимулов и напряжения сдвига, предоставляют биофармацевтическим исследованиям и разработкам масштабируемый подход к снижению рисков при валидации мишеней за счет имитации сложных микроокружений in vivo. Эти устройства на основе ПММА увеличивают пропускную способность экспериментов по скринингу клеточных ответов при сопутствующих стимулах, что способствует получению механистических данных на ранних этапах поиска. Данная технология помогает приоритизировать мишени с более высокой прогностической достоверностью до выделения ресурсов на идентификацию ведущих соединений.
Микрофлюидные чипы функционируют как аналитическая платформа стадии поиска, которая связывает валидацию мишени и ранний скрининг перспективных соединений, обеспечивая количественную оценку клеточных фенотипов, реагирующих на стимулы.