17 ноября 2016 г.
В следующей статье дается легко воспроизводимый метод для эффективного создания устойчивой модели мыши дефицита лимбальных стволовых клеток (LSCD). Эта модель животных полезна при тестировании и сравнения эффективности лечения заболеваний лимбальных стволовых клеток.
Общая цель этой процедуры заключается в создании воспроизводимой, устойчивой и стойкой мышиной модели дефицита лимбальных стволовых клеток. Этот простой метод обеспечивает последовательную животную модель дефицита лимбальных стволовых клеток, не вызывая нежелательного повреждения глаза, чего трудно достичь с помощью стандартных моделей химических повреждений. Эта модель полезна для изучения патологического процесса в долгосрочной перспективе на клеточном и молекулярном уровне.
А также для тестирования или сравнения эффективности новых методов лечения. После обезболивания мыши защемите палец ноги, чтобы обеспечить достаточную глубину анестезии. Осмотрите глаз под щелевым фонарем, чтобы убедиться в отсутствии каких-либо предыдущих повреждений роговицы.
Закапайте в глаз каплю 1% тетракаина гидрохлорида и подождите 60 секунд. Далее аккуратно нанесите 5% повидон-йод на глаз и волосы вокруг него. Через минуту сотрите каплю или распределите ее по волосам вокруг глаза, чтобы волосы не мешали кончику инструмента.
Подготовьте стерильный вращающийся бор и пару стерильных изогнутых пинцетов, и держите их на стерильном листе во время процедуры. Теперь стабилизируйте глаз, взявшись за веки со стороны носа с помощью согнутого пинцета и осторожно проктозив глаз. Будьте осторожны и не оказывайте слишком большого давления.
Под операционным микроскопом дважды побрейте область лимбалы с помощью стерильного вращающегося заусенца. Удалите весь эпителий роговицы от лимба к лимбу с помощью вращающегося заусенца по кругу и работайте с боковой стороной его кончика. Во избежание травмирования стромы не проводите повторную чистку частей роговицы, из которых был удален эпителий.
Не давите на глаз. При необходимости очистите кончик щетки. Нанесите каплю стерильного PBS на роговицу и сотрите все отслоившиеся эпителиальные листы мягкой чистящей салфеткой.
Затем сбрейте оставшийся эпителий, если он есть. Обратите внимание на хвост мыши, чтобы обеспечить достаточную глубину анестезии во время операции. Нанесите каплю Флуоресцеина натрия на роговицу.
Очистите роговицу через 30 секунд и осмотрите ее под микроскопом с кобальтовым синим фильтром, чтобы убедиться в полном удалении эпителия. После процедуры поместите животное в клетку на одеяло с подогревом и наблюдайте за ним в течение 30-45 минут до полного восстановления от наркоза. Тем временем нанесите на глаз 1%-ную офтальмологическую мазь Erythromycin и продолжайте применение антибиотика ежедневно в течение недели.
Кроме того, введите 0,1 мг/кг бупренорфина подкожно сразу и через 12 часов после процедуры, и продолжайте инъекцию два раза в день в течение двух дней. Это фенотип роговицы через месяц после процедуры. Вы можете увидеть обширную неоваскуляризацию, которая является признаком дефицита лимбальных стволовых клеток.
Нормальная роговица экспрессирует цитокератин 12, но лишена цитокератина 8 или бокаловидных клеток. При дефиците лимбальных стволовых клеток на роговице появляются Цитокератин 8 и бокаловидные клетки, в то время как Цитокератин 12 теряется. После освоения этой техники неоваскуляризация роговицы приведет к неоваскуляризации роговицы, которая покроет почти всю поверхность роговицы мыши в течение одного месяца и будет стабильной до трех месяцев.
Важно избегать повторной чистки зубов на тех участках роговицы, которые уже были удалены. Это может вызвать нежелательное воспаление стромы и помутнение. После развития дефицита лимбальных стволовых клеток можно протестировать и сравнить экспериментальные методы лечения.
В качестве альтернативы лечение может быть начато вскоре после травмы. В этом видео показано, как эффективно удалить лимбальный и роговичный эпителий для индуцирования дефицита лимбальных стволовых клеток у мышей. С некоторыми модификациями его можно выполнять и на других животных.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлен воспроизводимый метод создания устойчивой модели дефицита лимбальных стволовых клеток (LSCD) у мышей. Эта модель необходима для изучения патогенеза заболевания и тестирования новых методов лечения.
Создание воспроизводимой мышиной модели дефицита лимбальных стволовых клеток (ДЛСК) отвечает критической потребности в биологических системах, релевантных заболеванию, для разработки офтальмологических препаратов. Данная модель позволяет снизить риски за счет изучения механизмов патогенеза и повысить прогностическую достоверность при доклинической оценке регенеративных и противовоспалительных методов терапии нарушений роговицы. Стабильность фенотипа и трансляционная сопоставимость этой модели обеспечивают эффективное продвижение разработок по технологическому циклу и сравнимость результатов между различными программами исследований.
Данная модель LSCD интегрируется в континуум от поиска до доклинических исследований, позволяя тестировать гипотезы, идентифицировать перспективные соединения и проводить трансляционную валидацию методов терапии поверхности глаза.