-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Модель травматической травмы спинного мозга на мышах на мышах
Модель травматической травмы спинного мозга на мышах на мышах
JoVE Journal
Medicine
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
A Tissue Displacement-based Contusive Spinal Cord Injury Model in Mice

Модель травматической травмы спинного мозга на мышах на мышах

Full Text
11,789 Views
07:59 min
June 18, 2017

DOI: 10.3791/54988-v

Xiangbing Wu*1, Yi Ping Zhang*2, Wenrui Qu1, Lisa B. E. Shields2, Christopher B. Shields2,3, Xiao-Ming Xu1

1Spinal Cord and Brain Injury Research Group, Stark Neurosciences Research Institute, Department of Neurological Surgery and Goodman and Campbell Brain and Spine,Indiana University School of Medicine, 2Norton Neuroscience Institute,Norton Healthcare, 3Department of Anatomical Sciences and Neurobiology,University of Louisville

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article introduces a novel tissue displacement-based contusive spinal cord injury model designed for adult mice. The model aims to provide consistent and reproducible spinal cord injuries, facilitating research in spinal cord injury mechanisms and therapies.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Spinal Cord Injury
  • Experimental Models

Background

  • Spinal cord injuries present significant challenges in research.
  • Existing models may lack consistency in injury severity.
  • A reliable model is essential for studying therapeutic interventions.
  • This study addresses the need for a reproducible injury model.

Purpose of Study

  • To develop a contusive spinal cord injury model using tissue displacement.
  • To ensure consistent injury outcomes in adult mice.
  • To provide a platform for exploring injury mechanisms and therapies.

Methods Used

  • Use of a novel impactor for controlled injury displacement.
  • Detailed surgical procedures for injury induction.
  • Monitoring of anesthesia and post-operative care.
  • Visual confirmation of injury via microscopy.

Main Results

  • The model produced graded contusion injuries based on displacement.
  • Injury parameters were consistent and reproducible.
  • Visual assessments confirmed the severity of injuries.
  • The technique can be mastered within 30 minutes.

Conclusions

  • This model provides a reliable tool for spinal cord injury research.
  • It enables exploration of therapeutic strategies in various animal models.
  • Future studies can build on this technique to advance understanding of spinal cord injuries.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of this contusive spinal cord injury model?
The main advantage is its ability to produce consistent and reproducible spinal cord injuries, which is crucial for research.
How long does it take to perform the procedure?
Once mastered, the procedure can be completed in approximately 30 minutes.
What type of mice are used in this study?
10-week-old female C57BL6J mice are used for the spinal cord injury model.
What are the implications of this research?
The model can help explore mechanisms of spinal cord injury and evaluate potential therapies.
What steps are involved in the surgical procedure?
The procedure includes anesthesia, surgical incision, and injury induction using the impactor.
How is the injury confirmed post-surgery?
Injury is visually confirmed using a surgical microscope after the procedure.

Мы вводим модель травмы спинного мозга на основе тканевого смещения, которая может приводить к последовательному повреждению спинного мозга у взрослых мышей.

Общая цель этого видео состоит в том, чтобы представить новую модель контузиозной травмы спинного мозга на основе смещения тканей, которая может привести к последовательной контузионной травме спинного мозга у взрослых мышей. Эта модель ушиба может помочь ответить на ключевые вопросы в области экспериментальной травмы спинного мозга. Основным преимуществом этой методики является то, что она приводит к очень последовательному повреждению спинного мозга.

Применение этого метода распространяется и на терапию травм спинного мозга, поскольку эта модель предоставляет надежные и воспроизводимые инструменты для изучения механизмов травмы и эффектов экспериментальных методов лечения. Как правило, люди, плохо знакомые с этим методом, испытывают трудности, потому что они не знакомы с новым импактором. Визуальная демонстрация этого метода имеет решающее значение, поскольку некоторые шаги трудно освоить из-за ручных и программных операций.

Начните с того, что поднесите автоклавные хирургические инструменты и металлический стабилизатор позвоночника на чистый хирургический стол. Согрейте грелку до 37 градусов по Цельсию. Затем положите грелку на операционный стол и накройте стерильными хирургическими простынями.

Для этого исследования используются 10-недельные самки, C57BL6J мыши. После введения внутрибрюшинной инъекции кетамина и ксилазина проверьте адекватный уровень анестезии по отсутствию какой-либо реакции на стимуляцию ноцицепции, вызванную защемлением лапы. Подкожно вводите бупренорфин, обезболивающее средство, и карпрофен, нестероидный противовоспалительный препарат.

Используйте электрические машинки для стрижки волос над грудопоясничным отделом позвоночника. Протрите кожу раствором бетадина и 70% спиртовыми салфетками. Нанесите офтальмологическую мазь на роговицу, чтобы защитить глаза от пересыхания.

Сделав разрез кожи средней линии на 1,5 см на спине животного над девятой-11-й грудными пластинками позвонков, отодвигайте подкожную жировую ткань рострально. С помощью тонких ножниц, тонких щипцов и втягивающего устройства агрикола рассеките параспинальные мышцы в сторону от остистых отростков и пластинок по направлению к боковым фаскетам с каждой стороны. Поместите мышь на U-образный контейнер стабилизатора, зажмите рычаги из нержавеющей стали под открытыми гранями позвонка t10 с обеих сторон и затяните рычаги с помощью прикрепленных к ним винтов с накатанной головкой.

Используйте микроронжер, чтобы удалить остистый отросток t10 и пластинку, которая обнажает модель твердой мозговой оболочки, находящуюся над спинным мозгом. Поместите U-образный контейнер с мышкой на столик импактора и зафиксируйте столик на месте, затянув винты с накатанной головкой крепления. Чтобы настроить импактор, сначала поверните ручку регулятора давления на азотном баке, чтобы установить сжатый азот на 20 фунтов на квадратный дюйм или 138 килпаскаль для исследования.

Простерилизуйте ударный наконечник объемом 1,2 миллилитра 70%-ным спиртом. Затем откройте пакет программного обеспечения на компьютере. Нажмите кнопку на одном из блоков управления, чтобы активировать наконечник ударного элемента в полностью выдвинутое положение.

На экране компьютера в разделе «Установить нулевой уровень» нажмите «Начать чтение», чтобы измерить расстояние до полностью выдвинутого наконечника поршня. Расстояние будет показано в качестве параметра дальности в этой зоне. Затем нажмите на «Установить ноль», и в поле с нулевым параметром появится число в миллилитрах.

Затем нажмите одну кнопку на блоке управления, чтобы извлечь наконечник ударного элемента. Затем разблокируйте крепежный винт, потяните винт, чтобы отодвинуть наконечник от траектории лазерного луча, и поверните винт на 90 градусов по часовой стрелке, чтобы зафиксировать. Теперь переместите столик крепления, отрегулировав фронтальный и боковой микродрайверы, чтобы направить лазерный луч на центр обнаженного спинного мозга.

После того, как место повреждения будет выбрано, измерьте расстояние между тканями, нажав кнопку «Начать чтение» под установленным уровнем травмы. С помощью вертикального микродрайвера медленно регулируйте расстояние между датчиком и спинным мозгом, пока не будет достигнут желаемый параметр смещения. Этот уровень находится ниже установленного уровня травмы в поле параметров травмы.

Когда желаемое смещение травмы будет достигнуто, запишите расстояние до ткани, показанное в поле параметра диапазона, затем определите желаемое смещение или травму, вычитая расстояние или диапазон от расстояния до кончика равным нулю. Затем нажмите «Установить травму» в разделе «Установленный уровень травмы». Далее разблокируйте винт, повернув его на 90 градусов против часовой стрелки.

Отодвиньте ударный наконечник обратно на траекторию лазерного луча и заблокируйте винт, повернув его на 90 градусов по часовой стрелке, нажмите кнопку «Выполнить» в разделе «Запустить эксперимент», чтобы выполнить удар. В полях параметров будет указано время травмы в секундах, сила в микровольтах, скорость в метрах в секунду и смещение травмы в миллиметрах. После того, как все данные о травмах будут записаны и сохранены, уберите U-образное корыто с мышкой со сцены.

Затем визуально подтвердить травму спинного мозга под операционным микроскопом. После наложения швов на разрез послойно введите животному подкожно один миллиметр 0,9% физиологического раствора для гидратации и поместите его на подушечку с регулируемой температурой до тех пор, пока не придет в сознание. Затем поместите мышь в чистую клетку с легкодоступной водой и едой.

Эти данные показывают противоречивые параметры травмы, демонстрируют, что ударный элемент может нанести надежную и воспроизводимую травму. На этом репрезентативном поперечном срезе, окрашенном крезилом-фиолетовым-эозином, показана область t10 спинного мозга после фиктивной травмы со смещением 0 миллиметров. На этом изображении показан эпицентр легкой контузионной травмы спинного мозга в момент t10 с использованием устройства со смещением 0,2 мм.

Эта травма средней тяжести была достигнута с использованием смещения 0,5 миллиметра. Наконец, эта тяжелая травма является результатом смещения на 0,8 миллиметра. Эти изображения показывают, что этот новый импактор может привести к градуированной контузионной травме.

После освоения этой техники ее можно выполнить за 30 минут при правильном выполнении. Пытаясь выполнить эту процедуру, важно помнить о том, что необходимо установить ноль для кончика ударного элемента в целях для спинного мозга. После своего развития этот метод проложил путь исследователям в области травм спинного мозга к изучению механизмов и методов лечения мышей, крыс и приматов.

После просмотра этого видео у вас должно быть хорошее понимание того, как использовать этот ударный элемент для получения контузионной травмы спинного мозга.

Explore More Videos

Медицина выпуск 124 Контузия Смещение Мыши Ушибы спинного мозга Животная модель Хирургия

Related Videos

Contusive модели Односторонние шейки Травма спинного мозга с помощью бесконечного Ударный Horizon

07:28

Contusive модели Односторонние шейки Травма спинного мозга с помощью бесконечного Ударный Horizon

Related Videos

20.5K Views

Индукция ушиба спинного мозга у модели мыши с использованием коаксиальной платформы для травмы спинного мозга

02:13

Индукция ушиба спинного мозга у модели мыши с использованием коаксиальной платформы для травмы спинного мозга

Related Videos

867 Views

Создание модели мыши с травмой спинного мозга

03:23

Создание модели мыши с травмой спинного мозга

Related Videos

980 Views

Контролируемые травма шейного Laceration у мышей

07:28

Контролируемые травма шейного Laceration у мышей

Related Videos

17.2K Views

Neural трансплантации стволовых клеток в экспериментальной Contusive модели с повреждением спинного мозга

10:56

Neural трансплантации стволовых клеток в экспериментальной Contusive модели с повреждением спинного мозга

Related Videos

13.6K Views

Калиброванный щипцы Модель спинного мозга Компрессия травмы

09:41

Калиброванный щипцы Модель спинного мозга Компрессия травмы

Related Videos

19.4K Views

Неонатальной спинного мозга мыши Сжатие Травма Модель

13:31

Неонатальной спинного мозга мыши Сжатие Травма Модель

Related Videos

13.3K Views

Индукция полной трансекции типа травмы спинного мозга у мышей

06:51

Индукция полной трансекции типа травмы спинного мозга у мышей

Related Videos

9.5K Views

Создание модели повреждения спинного мозга мышиным ушибом, основанной на минимально инвазивной технике

07:17

Создание модели повреждения спинного мозга мышиным ушибом, основанной на минимально инвазивной технике

Related Videos

6.3K Views

Создание модели синдрома центрального спинного мозга у мышей C57BL/6J

06:36

Создание модели синдрома центрального спинного мозга у мышей C57BL/6J

Related Videos

1.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code