RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/54991-v
Bruce J. MacLachlan*1, Alexander Greenshields-Watson*1, Georgina H Mason*1, Andrea J Schauenburg1, Valentina Bianchi1,2,3, Pierre J Rizkallah1, Andrew K Sewell1, Anna Fuller1, David K Cole1
1Division of Infection and Immunity and Systems Immunity Research Institute,Cardiff University, 2Department of Oncology,University Hospital of Lausanne (CHUV), 3Ludwig Insitutue for Cancer Research, Lausanne Branch,University of Lausanne
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Здесь мы описываем методы, которые мы обычно используем в лаборатории, чтобы определить, как характер взаимодействия между рецептором Т-клеток и опухолевыми антигенами, представленными антигенами лейкоцитов человека, управляет функциональностью Т-клеток; эти методы включают производство белка, рентгеновскую кристаллографию, биофизику и эксперименты с функциональными Т-клетками.
Общая цель этой процедуры заключается в получении растворимых лежачих Т-клеток рецептора и пептидных белков HLA достаточного качества для использования в биофизическом и структурном анализе. Этот метод может помочь ответить на вопросы в области Т-клеточной иммунологии. Например, почему Т-клетки не реагируют устойчиво на рак?
Основное преимущество этого метода заключается в том, что мы получаем механистические данные с чрезвычайно высоким разрешением, объясняющие, как Т-клеточные рецепторы распознают свои мишени, что приводит к Т-клеточным иммунным реакциям. Применение этого метода распространяется на терапию или диагностику практически любого заболевания человека, потому что Т-клетки играют ключевую роль в большинстве иммунных реакций. Хотя этот метод может дать представление об иммунных реакциях Т-клеток, он также может быть применен к другим системам, которые контролируются взаимодействием рецепторных лигандов.
Как правило, люди, плохо знакомые с этим методом, испытывают трудности, потому что очень трудно получить растворимые, активные белки достаточного качества для биофизических и структурных экспериментов. Чтобы начать процедуру повторного сворачивания пептида HLA до шести миллилитров гуанидинового буфера с 10 миллиметром дитиотреитола, добавьте 30 миллиграммов тел включения HLA-A2, 30 миллиграммов бета-2-М телец включения и четыре миллиграмма желаемого пептида, представляющего интерес. Выдерживайте смесь в течение 30 минут при температуре 37 градусов Цельсия.
Затем разбавьте смесь одним литром буфера HLA, предварительно охлажденного до четырех градусов Цельсия, и перемешайте смесь в течение трех часов при этой температуре. Дважды диализируйте смесь против 20 литров 10 миллимолярного триса, pH 8,1, в течение 24 часов каждый. Чтобы начать процедуру повторного сворачивания TCR, к шести миллилитрам гуанидинового буфера с 10 миллимолярным дитиотреитолом добавьте по 30 мг TCR Альфа и бета-цепи IB.
Инкубируйте смесь в течение 30 минут при температуре 37 градусов Цельсия и разведите смесь в одном литре предварительно охлажденного буфера TCR. Разбавленную смесь TCR перемешать и диализовать так же, как и смесь пептидов HLA. Обе диализованные смеси рефолда отфильтруйте через мембранный фильтр 0,45 микрометра.
Затем загрузите один из отфильтрованных препаратов рефолда в колонку анионообменной смолы объемом 7,9 мл 50 микрометров, предварительно уравновешенную 20 миллилитрами 10 миллимолярного триса, pH 8,1. Разбавляйте белок с помощью буферной системы с градиентом соли со скоростью пять миллилитров в минуту. Соберите доли в одном миллилитре и проанализируйте дроби с помощью SDS-Page.
Соедините фракции, содержащие повторно свернутый белок. Поместите белковую смесь в центробежный концентратор с молекулярной массой 10 килодальтон. Центрифугируйте смесь в течение 20 минут или столько, сколько требуется, при 4000 умноженных на г, чтобы концентрировать смесь до 500 микролитров.
Откажитесь от сквозного потока. Сформируйте концентрированный белковый препарат в петлю для инъекций объемом два миллилитра и введите белок в колонку эксклюзионной хроматографии объемом 24 миллилитра, предварительно уравновешенную соответствующим буфером для неуловимости. Разбавьте белок одним столбиком объемом буфера со скоростью 0,5 миллилитра в минуту.
Соберите доли в одном миллилитре, проанализируйте дроби с помощью SDS-Page и объедините фракции, содержащие интересующий белок. Приготовьте 10 последовательных разведений раствора TCR в диапазоне концентраций от 10 до 10 раз ниже KD специфического взаимодействия HLA с пептидом TCR, если оно известно. В противном случае начните с концентрации TCR 200 микромоляров.
Затем активируйте чип датчика, покрытый карбоксиметилированным декстраном, путем подачи смеси 100 миллимоляров и N-гидроксисукцинимида и 400 миллимоляров EDC один к одному на чип со скоростью потока 10 микролитров в минуту в течение 10 минут при температуре 25 градусов Цельсия. Затем загрузите 110 микролитров стрептавидина с концентрацией 200 микрограммов на миллилитр и 10 миллимолярных ацетатов с pH 4,5 во все четыре проточные ячейки, чтобы функционализировать поверхность чипа. Деактивируйте любые оставшиеся реакционноспособные группы с помощью 100 микролитров одного молярного этаноламида гидрохлорида.
Затем подайте раствор примерно одного микромолярного пептида HLA в буфере, предоставленном производителем микросхемы, по поверхности чипа со скоростью 10 микролитров в минуту до тех пор, пока количество единиц отклика не увеличится на 500-600. Насытите поверхность чипа одним миллимолярным биотином и предоставленным производителем буфером в течение 60 секунд. Затем введите 10 последовательных разведений раствора TCR со скоростью 30 микролитров в минуту при температуре 25 градусов Цельсия.
Вычислите равновесную константу связи и запустите кинетический анализ. Проведите серию экспериментов SPR таким образом, изменяя только температуру, при которой вводятся разведения TCR. Определите равновесную константу связи для каждой температуры и рассчитайте энергии Гиббса и другие термодинамические параметры.
Подставляйте энергии Гиббса в зависимости от температуры с помощью нелинейной регрессионной аппроксимации. Концентрируйте пептидный раствор HLA до 0,2 миллимоляра и кристаллизационный буфер путем центрифугирования при 3000-кратном избытке в центробежном концентраторе с молекулярной массой 10 килодальтон. Приготовьте 0,1 миллимолярный раствор один к одному TCR и пептида HLA для кокомплексной кристаллизации.
Используя кристаллизационный робот и набор для скрининга, подготовьте испытания кристаллизации с использованием метода сидячей капли в 96-луночном планшете. С 60 микролитрами кристаллизационного буфера в каждом резервуаре, и каждая капля состоит из 200 нанолитров белкового раствора и буфера. Выращивайте кристаллы при температуре 18 градусов по Цельсию.
Оценка кристаллов под микроскопом через 24 часа, 48 часов, 72 часа, а затем еженедельно. После того, как монокристаллы достаточного качества вырастут, соберите монокристаллы с помощью криоген-совместимой петли и храните кристаллы в жидком азоте. Проведите синхротронную рентгеновскую дифракцию под потоком газообразного азота при давлении 100 кельвинов, проанализируйте полученные данные и разгадайте структуры с помощью соответствующего программного обеспечения.
Рассчитайте контакты, комплементарность поверхностей и угол пересечения от решенных конструкций. С помощью этих методов молекулы TCR и пептида HLA экспрессировались и сворачивались в растворимую форму. Пептидом в молекулах пептида HLA был антиген gp100.
SPR использовали для определения аффинности связывания PMEL17 TCR с антигеном при различных температурах. Затем были использованы SPR и изотермическое калориметрическое титрование для определения термодинамических параметров белок-белкового взаимодействия. Комплекс PMEL17 TCR A2-YLE-9V был кристаллизован и оценен с помощью синхротронной рентгеновской дифракции.
Были идентифицированы петли TCR CDR и остатки пептида HLA, контактирующие с белком TCR, и изучена природа контактов. Пептидные молекулы HLA с мутировавшими формами пептида также были очищены и кристаллизованы таким образом. Исследовать структурные различия, которые могут препятствовать связыванию взаимодействия с TCR.
Было обнаружено, что мутация третьего или пятого остатка значительно изменяет положение пролина 4, что может нарушить многие контакты с TCR CDR-3 Alpha Loop. При попытке выполнить эту процедуру важно выбрать только самые чистые белки для дальнейшего анализа. После этой процедуры могут быть выполнены другие методы, такие как пептидное окрашивание тетрамером HLA, с использованием растворимых белков для выделения антиген-специфических Т-клеток из крови пациента для диагностики и дальнейшего анализа.
После своего развития этот метод проложил путь исследователям в области Т-клеточной иммунологии к изучению связывания HLA пептида TCR в мельчайших деталях, что позволило разработать новые лекарства от рака и других заболеваний человека. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как получить белки TCR и пептидные HLA достаточного качества для проведения биофизического и структурного анализа.
Related Videos
11:31
Related Videos
25.6K Views
16:10
Related Videos
24.4K Views
09:28
Related Videos
15.7K Views
10:31
Related Videos
14.6K Views
19:05
Related Videos
12.9K Views
08:49
Related Videos
9.6K Views
08:46
Related Videos
54.1K Views
12:09
Related Videos
10.3K Views
09:24
Related Videos
8.6K Views
13:19
Related Videos
3.9K Views