-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Advanced Biology
Визуализация митоза в живых клетках
Визуализация митоза в живых клетках
JoVE Science Education
Cell Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Cell Biology
Live Cell Imaging of Mitosis

4.3: Визуализация митоза в живых клетках

78,310 Views
09:57 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Митоз — это форма деления клеток, при которой генетический материал клетки делится поровну между двумя дочерними клетками. Митоз можно разбить на шесть фаз, во время каждой из которых компоненты клетки, такие как ее хромосомы, демонстрируют визуально различимые характеристики. Достижения в области визуализации флуоресцентных живых клеток позволили ученым изучить этот процесс очень подробно, предоставив важную информацию о биологическом контроле этого процесса и о том, как он может пойти не так при таких заболеваниях, как рак.

Мы начнем это видео с разбивки фаз митоза и представим некоторые важные соображения для оптимальной визуализации процесса с помощью визуализации живых клеток. Затем мы пройдемся по этапам проведения эксперимента по визуализации митоза живых клеток и обсудим различные методы анализа, включая создание монтажей, фильмов и 3D-воссозданий. Наконец, мы рассмотрим, как визуализация митотического процесса может быть применена к ответу на вопросы клеточной биологии.

Procedure

Митоз – это высокоорганизованное и контролируемое деление ядерного содержимого, происходящее в течение клеточного цикла. Митоз принципиально важен для правильного развития организма, а также для роста, поддержания и восстановления тканей. Нарушение этого процесса было показано при некоторых заболеваниях, таких как рак. Визуализация живых клеток с помощью покадровой флуоресцентной микроскопии является одним из наиболее распространенных методов изучения митоза в лабораториях на сегодняшний день.

В этом видео мы кратко познакомим вас с фазами митоза, а затем обсудим экспериментальные соображения для визуализации этого клеточного процесса в живых клетках. Будет показан подробный протокол сбора и анализа данных, и мы закончим несколькими случаями применения этого метода.

Чтобы лучше понять, что ученые ищут в этих экспериментах по визуализации, давайте сначала пройдемся по стадиям митоза.

Клеточный цикл описывает общий процесс роста и деления клеток. Митотическая фаза представляет собой одну короткую часть этого цикла, который может быть разбит на шесть фаз: профаза, прометафаза, метафаза, анафаза, телофаза и цитокинез.

Во время профазы ДНК конденсируется в сестринские хроматиды, соединенные в центромере. В цитоплазме две ключевые органеллы, называемые центросомами, начинают собирать структуры микротрубочек, широко известные как веретенообразные волокна, в виде колеса.

Следующая фаза, прометафаза, включает в себя разрушение ядерной мембраны и сборку комплекса белков, известного как кинетохор, в центромерах. На этом этапе также происходит связывание волокон веретена с кинетохором.

В метафазе хромосомы выстраиваются в линию на метафазной пластине, в воображаемой плоскости, равноудаленной от двух центромер. Во время анафазы хромосомы «распадаются» в центромере, при этом отдельные сестринские хроматиды мигрируют на противоположные концы клетки. В телофазе митотическое веретено разбирается, и хроматин начинает деконденсируться. Наконец, во время цитокинеза — через сокращение актин/миозинового кольца, которое образует «борозду расщепления» — родительская клетка делится на две дочерние клетки.

Имея такое понимание митотической прогрессии, давайте рассмотрим практические соображения по наблюдению за этим процессом с помощью визуализации живых клеток.

Первый вопрос, который следует задать: как помечать клетки, чтобы визуализировать митоз? Наиболее часто используемыми «метками» для этого эксперимента являются флуоресцентные молекулы, которые поглощают свет на одной длине волны и излучают свет на другой длине волны.

Чтобы пометить нуклеиновые кислоты, можно использовать проницаемый для клеток ДНК-связывающий краситель, такой как Hoechst. Для мечения белков, таких как микротрубочки, можно использовать флуоресцентно меченные антитела. Они, как правило, непроницаемы для мембран, поэтому для их введения в образцы используются методы микроинъекции.

Другой стратегией является генетическая маркировка, при которой клетками можно манипулировать для экспрессии флуоресцентно меченых белков, которые маркируют компоненты, активно участвующие в митозе, такие как хромосомы. При работе с флуоресцентными молекулами необходимо избегать чрезмерного воздействия света, чтобы избежать фотообесцвечивания.

Выбор правильного микроскопа является не менее важным решением. Двумя наиболее часто используемыми микроскопами являются эпифлуоресцентные и конфокальные. Эпифлуоресцентная или широкопольная микроскопия пропускает свет по всему полю зрения, в то время как конфокальная микроскопия использует лазеры для фокусировки света на отдельных точках.

В то время как эпифлуоресцентные микроскопы, как правило, дешевле, предпочтение отдается конфокальным микроскопам, поскольку точечное освещение обеспечивает повышенное оптическое разрешение, что позволяет получать более четкие изображения. Единая точка освещения также снижает фототоксичность или повышенную гибель клеток, вызванную чрезмерным воздействием света.

Теперь, когда мы рассмотрели некоторые экспериментальные соображения, давайте посмотрим, как провести эксперимент по визуализации живых клеток для визуализации митоза.

Клетки следует культивировать на стеклянных донных посудах или на покровных листах, что позволяет наилучшим образом визуализировать митоз. Затем они должны содержаться в контролируемой среде до тех пор, пока не будет выполнена маркировка. Как уже говорилось ранее, выбор техники маркировки зависит от проводимого эксперимента. После маркировки поместите чашку для клеточной культуры в специализированную камеру на микроскопе. Это позволяет поддерживать условия культивирования клеток во время визуализации.

Далее, в зависимости от молекулы мечения, установите длины волн возбуждения и излучения на микроскопе. Для сбора данных, настройки временных точек и положения для захвата изображений. В этом контексте временные точки — это моменты, в которых будут получены изображения, чтобы обеспечить полное визуальное покрытие всех митотических стадий. Позиции относятся к координатам X-Y на тарелке для культуры. Кроме того, для каждого положения можно получать изображения с разной глубиной резкости. Каждое изображение представляет собой оптический срез по оси Z. Поэтому в совокупности они известны как Z-стеки. После ввода всех параметров протестируйте настройки, а затем откиньтесь на спинку кресла и наслаждайтесь!

Получив данные покадровой съемки, есть несколько способов их представления. Давайте обсудим несколько из этих способов.

Монтаж — это один из наиболее распространенных способов представления данных покадровой съемки, при котором несколько изображений выстраиваются в сетку, основанную на времени. Они могут ясно показать митотическую прогрессию и позволяют исследователям определить такую информацию, как время, проведенное в отдельных митотических фазах. Последовательное объединение этих изображений для создания «фильма» может быть более динамичным представлением.

Наконец, Z-стеки, полученные с помощью конфокального микроскопа, могут быть объединены для представления 3D-воссоздания образца. Это позволяет точно выявить пространственные отношения между частями митотического механизма. Это важно, поскольку компоненты, которые выглядят рядом друг с другом в 2D, на самом деле могут находиться далеко друг от друга в трех измерениях.

Теперь, когда вы знаете, как провести эксперимент по визуализации живых клеток, давайте рассмотрим некоторые применения этого метода.

Митоз является неотъемлемой частью развития. Здесь исследователи изолировали эмбриональный мозг мыши, чтобы наблюдать за митозом в нейронных клетках-предшественниках. Контролируемое деление этих клеток имеет решающее значение для правильного роста и функционирования мозга. После выделения мозг был разделен с помощью вибратомии, окрашен проницаемым для мембраны красителем, связывающим нуклеиновые кислоты, и визуализирован с помощью конфокальной микроскопии для четкой визуализации митоза нейронных клеток-предшественников.

Репарация ДНК является важнейшим клеточным процессом, который участвует в росте и делении клеток. В этом эксперименте исследователи изучили белок репарации ДНК, который образует очаги, которые представляют собой точечные пятна, созданные в ответ на повреждение ДНК. Результаты визуализации живых клеток и 3D-анализа выявили локализацию белка репарации ДНК на протяжении всего процесса деления клетки.

Наконец, исследователи изучают митотические контрольные точки, которые представляют собой точки «паузы», где оцениваются клеточные условия перед продолжением деления. При митозе контрольная точка сборки веретена, или SAC, обеспечивает правильную связь между митотическим веретеном и хромосомами. Чтобы изучить это, ученые вводили микроинъекционные реагенты в трансгенные эмбрионы мух и анализировали митоз с помощью визуализации живых клеток. Результаты показывают остановленные кинетохоры, демонстрирующие клетки, которые не могут прогрессировать через митоз.

Вы только что посмотрели видео JoVE о визуализации митоза в живых клетках. В этом видео, посвященном введению в стадии митоза, представлены важные соображения и методы анализа данных для визуализации живых клеток. Наконец, были представлены приложения этой техники. Визуализация живых клеток существенно помогла ученым в понимании митотических механизмов, связанных с развитием, поддержанием тканей и болезнями. Как всегда, спасибо за просмотр!

Transcript

Митоз – это высокоорганизованное и контролируемое деление ядерного содержимого, происходящее в течение клеточного цикла. Митоз принципиально важен для правильного развития организма, а также для роста, поддержания и восстановления тканей. Нарушение этого процесса было показано при некоторых заболеваниях, таких как рак. Визуализация живых клеток с помощью покадровой флуоресцентной микроскопии является одним из наиболее распространенных методов изучения митоза в лабораториях на сегодняшний день.

В этом видео мы кратко познакомим вас с фазами митоза, а затем обсудим экспериментальные соображения по визуализации этого клеточного процесса в живых клетках. Будет показан подробный протокол сбора и анализа данных, и мы закончим несколькими случаями применения этого метода.

Чтобы лучше понять, что ученые ищут в этих экспериментах по визуализации, давайте сначала пройдемся по стадиям митоза.

Клеточный цикл описывает общий процесс роста и деления клеток. Митотическая фаза представляет собой одну короткую часть этого цикла, который может быть разбит на шесть фаз: профаза, прометафаза, метафаза, анафаза, телофаза и цитокинез.

Во время профазы ДНК конденсируется в сестринские хроматиды, соединенные в центромере. В цитоплазме две ключевые органеллы, называемые центросомами, начинают собирать структуры микротрубочек, широко известные как веретенообразные волокна, в виде колеса.

Следующая фаза, прометафаза, включает в себя разрушение ядерной мембраны и сборку комплекса белков, известного как кинетохор, в центромерах. На этом этапе также происходит связывание волокон веретена с кинетохором.

В метафазе хромосомы выстраиваются в линию на метафазной пластине, в воображаемой плоскости, равноудаленной от двух центромер. Во время анафазы хромосомы «распадаются». в центромере, с отдельными сестринскими хроматидами, мигрирующими на противоположные концы клетки. В телофазе митотическое веретено разбирается, и хроматин начинает деконденсируться. Наконец, во время цитокинеза через сокращение кольца актин/миозин, которое образует «борозду расщепления»? Родительская клетка делится на две дочерние клетки.

Имея такое понимание митотической прогрессии, давайте рассмотрим практические соображения по наблюдению за этим процессом с помощью визуализации живых клеток.

Первый вопрос, который следует задать: как помечать клетки, чтобы визуализировать митоз? Наиболее часто используемые ?теги? Для этого эксперимента используются флуоресцентные молекулы, которые поглощают свет на одной длине волны и излучают свет на другой длине волны.

Чтобы пометить нуклеиновые кислоты, можно использовать проницаемый для клеток ДНК-связывающий краситель, такой как Hoechst. Для мечения белков, таких как микротрубочки, можно использовать флуоресцентно меченные антитела. Они, как правило, непроницаемы для мембран, поэтому для их введения в образцы используются методы микроинъекции.

Другой стратегией является генетическая маркировка, при которой клетками можно манипулировать для экспрессии флуоресцентно меченых белков, которые маркируют компоненты, активно участвующие в митозе, такие как хромосомы. При работе с флуоресцентными молекулами необходимо избегать чрезмерного воздействия света, чтобы избежать фотообесцвечивания.

Выбор правильного микроскопа является не менее важным решением. Двумя наиболее часто используемыми микроскопами являются эпифлуоресцентные и конфокальные. Эпифлуоресцентная или широкопольная микроскопия пропускает свет по всему полю зрения, в то время как конфокальная микроскопия использует лазеры для фокусировки света на отдельных точках.

В то время как эпифлуоресцентные микроскопы, как правило, дешевле, предпочтение отдается конфокальным микроскопам, поскольку точечное освещение обеспечивает повышенное оптическое разрешение, что позволяет получать более четкие изображения. Единая точка освещения также снижает фототоксичность или повышенную гибель клеток, вызванную чрезмерным воздействием света.

Теперь, когда мы рассмотрели некоторые экспериментальные соображения, давайте посмотрим, как провести эксперимент по визуализации митоза живых клеток.

Клетки следует культивировать на стеклянных донных посудах или на покровных листах, что позволяет наилучшим образом визуализировать митоз. Затем они должны содержаться в контролируемой среде до тех пор, пока не будет выполнена маркировка. Как уже говорилось ранее, выбор техники маркировки зависит от проводимого эксперимента. После маркировки поместите чашку для клеточной культуры в специализированную камеру на микроскопе. Это позволяет поддерживать условия культивирования клеток во время визуализации.

Далее, в зависимости от молекулы мечения, установите длины волн возбуждения и излучения на микроскопе. Для сбора данных, настройки временных точек и положения для захвата изображений. В этом контексте временные точки — это моменты, в которых будут получены изображения, чтобы обеспечить полное визуальное покрытие всех митотических стадий. Позиции относятся к координатам X-Y на тарелке для культуры. Кроме того, для каждого положения можно получать изображения с разной глубиной резкости. Каждое изображение представляет собой оптический срез по оси Z. Поэтому в совокупности они известны как Z-стеки. После ввода всех параметров протестируйте настройки, а затем откиньтесь на спинку кресла и наслаждайтесь!

Получив данные покадровой съемки, есть несколько способов их представления. Давайте обсудим некоторые из этих способов.

Монтаж — это один из наиболее распространенных способов представления данных покадровой съемки, при котором несколько изображений выстраиваются в сетку, основанную на времени. Они могут ясно показать митотическую прогрессию и позволяют исследователям определить такую информацию, как время, проведенное в отдельных митотических фазах. Комбинируя эти изображения последовательно, чтобы сделать ?фильм? может быть более динамичной подачей.

Наконец, Z-стеки, полученные с помощью конфокального микроскопа, могут быть объединены для представления 3D-воссоздания образца. Это позволяет точно выявить пространственные отношения между частями митотического механизма. Это важно, поскольку компоненты, которые выглядят рядом друг с другом в 2D, на самом деле могут находиться далеко друг от друга в трех измерениях.

Теперь, когда вы знаете, как провести эксперимент по визуализации живых клеток, давайте рассмотрим некоторые применения этого метода.

Митоз является неотъемлемой частью развития. Здесь исследователи изолировали эмбриональный мозг мыши, чтобы наблюдать за митозом в нейронных клетках-предшественниках. Контролируемое деление этих клеток имеет решающее значение для правильного роста и функционирования мозга. После выделения мозг был разделен с помощью вибратомии, окрашен проницаемым для мембраны красителем, связывающим нуклеиновые кислоты, и визуализирован с помощью конфокальной микроскопии для четкой визуализации митоза нейронных клеток-предшественников.

Репарация ДНК является важнейшим клеточным процессом, который участвует в росте и делении клеток. В этом эксперименте исследователи изучили белок репарации ДНК, который образует очаги, которые представляют собой точечные пятна, созданные в ответ на повреждение ДНК. Результаты визуализации живых клеток и 3D-анализа выявили локализацию белка репарации ДНК на протяжении всего процесса деления клетки.

Наконец, исследователи изучают митотические контрольные точки, которые являются «паузой». Точки, где оцениваются условия в клетках, прежде чем продолжить деление. При митозе контрольная точка сборки веретена, или SAC, обеспечивает правильную связь между митотическим веретеном и хромосомами. Чтобы изучить это, ученые вводили микроинъекционные реагенты в трансгенные эмбрионы мух и анализировали митоз с помощью визуализации живых клеток. Результаты показывают остановленные кинетохоры, демонстрирующие клетки, которые не могут прогрессировать через митоз.

Вы только что посмотрели видео JoVE о визуализации митоза в живых клетках. В этом видео, посвященном введению в стадии митоза, представлены важные соображения и методы анализа данных для визуализации живых клеток. Наконец, были представлены приложения этой техники. Визуализация живых клеток существенно помогла ученым в понимании митотических механизмов, связанных с развитием, поддержанием тканей и болезнями. Как всегда, спасибо за просмотр!

Explore More Videos

Визуализация живых клеток митоз клеточный цикл флуоресцентная микроскопия покадровая съемка экспериментальные соображения сбор данных протокол анализа применение профаза прометафаза метафаза анафаза телофаза цитокинез конденсация ДНК сестринские хроматиды центромеры центросомы веретенообразные волокна разрушение ядерной мембраны

Related Videos

Введение в деление клеток

10:03

Введение в деление клеток

Cell Biology

79.6K Просмотры

Анализ клеточного цикла

09:32

Анализ клеточного цикла

Cell Biology

61.3K Просмотры

Введение в подвижность и миграцию клеток

08:52

Введение в подвижность и миграцию клеток

Cell Biology

35.1K Просмотры

Трансвелловый миграционный анализ

08:24

Трансвелловый миграционный анализ

Cell Biology

128.1K Просмотры

Инвазионный анализ с использованием 3D матриц

07:58

Инвазионный анализ с использованием 3D матриц

Cell Biology

13.5K Просмотры

Введение в эндоцитоз и экзоцитоз

09:27

Введение в эндоцитоз и экзоцитоз

Cell Biology

79.2K Просмотры

Биотинилирование клеточной поверхности

09:13

Биотинилирование клеточной поверхности

Cell Biology

79.8K Просмотры

FM-красители при переработке везикул

08:36

FM-красители при переработке везикул

Cell Biology

13.1K Просмотры

Введение в клеточный метаболизм

10:19

Введение в клеточный метаболизм

Cell Biology

44.3K Просмотры

Биолюминесцентный анализ АТФ

08:32

Биолюминесцентный анализ АТФ

Cell Biology

48.1K Просмотры

Обнаружение активных форм кислорода

09:08

Обнаружение активных форм кислорода

Cell Biology

33.0K Просмотры

Введение в клеточную смерть

10:06

Введение в клеточную смерть

Cell Biology

56.4K Просмотры

Анализ TUNEL

08:12

Анализ TUNEL

Cell Biology

92.9K Просмотры

Мечение Аннексином V и йодидом пропидиума

09:09

Мечение Аннексином V и йодидом пропидиума

Cell Biology

76.4K Просмотры

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code