-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Chemistry
Тандемная масс-спектрометрия
Video Quiz
Тандемная масс-спектрометрия
JoVE Science Education
Biochemistry
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Biochemistry
Tandem Mass Spectrometry

4.4: Тандемная масс-спектрометрия

47,024 Views
07:09 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

В тандемной масс-спектрометрии представляющая интерес биомолекула выделяется из биологического образца, а затем фрагментируется на несколько субъединиц, чтобы помочь выяснить ее состав и последовательность. Это достигается за счет использования масс-спектрометров последовательно. Первый спектрометр ионизирует образец и фильтрует ионы с определенным отношением массы к заряду. Затем отфильтрованные ионы фрагментируются и передаются во второй масс-спектрометр, где фрагменты анализируются.

В этом видео представлены принципы тандемной масс-спектрометрии, включая методы выбора массы к отношению и диссоциации. Также показана общая методика анализа биохимического соединения с использованием тандемной масс-спектрометрии с диссоциацией, вызванной столкновением. Раздел «Приложения» охватывает мониторинг реакции отбора, определение модификаций белка после трансляции и обнаружение уровня такролимуса в крови.

Тандемная масс-спектрометрия связывает воедино несколько этапов масс-спектрометрии, чтобы сначала выделить биомолекулу, а затем определить аспекты ее химического состава. Биомолекулы имеют крупные, сложные структуры, что затрудняет определение их молекулярного состава. Тандемная масс-спектрометрия выбирает интересующую молекулу, которая впоследствии фрагментируется на несколько субъединиц, что может помочь выяснить ее идентификацию и последовательность. В этом видео будут показаны концепции тандемной масс-спектрометрии, общая процедура и некоторые из ее применений в биохимии.

Тандемная масс-спектрометрия начинается с типичного масс-спектрометрии: с источника ионов, который преобразует образец в ионы, и масс-анализатора, который разделяет ионы на основе их отношения массы к заряду. Обычный масс-анализатор, квадруполь, пропускает только ионы с определенным соотношением, в то время как остальные врезаются в стержни аппарата. Виды, которым может проникнуть внутрь, называемые ионом-предшественником, представляют интерес и представляют интерес для биомолекул. Ион перемещается в столкновительную ячейку, обычно в другую квадруполь, где энергия прикладывается для фрагментации иона по предсказуемой схеме.

Эти фрагменты перемещаются в другой масс-анализатор, такой как времяпролетный анализатор, который отделяет эти «ионы продукта». Затем ионы продукта направляются в детектор, как в обычном приборе МС. В случае неизвестного белка результирующий спектр содержит многочисленные перекрывающиеся фрагменты, что затрудняет создание окончательной полной последовательности биомолекулы. Тем не менее, спектральная картина уникальна для данного белка. Аналитическое программное обеспечение сравнивает спектр с базой данных известных пептидных последовательностей, выявляя неизвестный белок из перекрывающихся фрагментов.

В зависимости от образца и желаемой степени фрагментации возможны несколько методов фрагментации. Характер фрагментации зависит от того, как передается энергия, ее количество и как она распределяется по иону-предшественнику. Энергия может передаваться с помощью нейтральных частиц, излучения или электронов. Используя нейтральные атомы, процесс, называемый диссоциацией, вызванной столкновением или CID, в первую очередь расщепляет пептидную связь между аминокислотами, идеально подходящую для их идентификации.

Теперь, когда мы разобрались с основами метода, давайте посмотрим на тандемную масс-спектрометрию CID, используемую для изучения компонента оболочек бактериальных клеток.

Как и во всех масс-спектрометрических экспериментах, первым шагом является ионизация образца. Для биомолекул это обычно делается с помощью матричной лазерной десорбции или ионизации электроспреем. Затем ионный сигнал предшественника оптимизируется путем настройки ионной оптики. После этого цель изолируется и выбирается метод фрагментации, например CID.

Сила приложенного напряжения, которое ускоряет ион-предшественник в ячейке столкновения, влияет на степень фрагментации. Это напряжение увеличивается до тех пор, пока содержание прекурсора не составит примерно 10% по сравнению с ионом с наибольшим продуктом. Несколько спектров регистрируются и усредняются до тех пор, пока не будет достигнуто достаточное соотношение сигнал/шум. Количество необходимых сканирований зависит от интенсивности сигнала исходного иона-предшественника и может варьироваться от 3 до 300.

Аналит в этом примере, липид А из Escherichia coli K-12, имел 19 основных фрагментов после CID. Общая структура липида А хорошо известна, что позволяет программному обеспечению реконструировать конкретный состав по образцу.

Теперь, когда мы рассмотрели процедуру, давайте рассмотрим некоторые способы использования тандемной масс-спектрометрии в биохимии.

Распространенным режимом сканирования в тандемной масс-спектрометрии является выбранный мониторинг реакции, или SRM. В SRM оба масс-анализатора фиксируются на выбранном соотношении массы к заряду, фокусируясь на конкретных ионах-прекурсорах и продуктах. Благодаря высокой степени чувствительности SRM, спектры пептидных стандартов известных концентраций могут быть использованы и сравнены с спектрами неизвестных образцов, что позволяет количественно определить интересующие их белки.

Белки обычно модифицируются после трансляции, как правило, путем добавления функциональных групп, таких как метильные группы, фосфатные группы или сахара, известные как гликаны. Они играют важную роль в клеточных сигнальных процессах, выясняя, как клетки взаимодействуют друг с другом. Поскольку тандемная масс-спектрометрия фрагментирует белки на более мелкие компоненты, можно определить местоположение ПТМ по отношению к конкретному фрагменту или даже аминокислоте. Некоторые модификации, такие как ацетилирование и триметилирование, трудно дифференцировать только по массе, поэтому перед масс-спектрометрией проводится хроматографическое разделение.

Многие аналиты в крови пациента обнаруживаются в концентрациях ниже предела обнаружения для типичной масс-спектрометрии. Еще одним преимуществом SRM является то, что он отбрасывает все ионы продукта, кроме одного, увеличивая чувствительность и увеличивая нижний предел обнаружения до 100 раз. В этом примере иммунодепрессантный препарат, такролимус, может быть обнаружен на уровне 1 нг/мл.

Вы только что посмотрели видео JoVE о тандемной масс-спектрометрии. В этом видео описывалась теория инструмента, рассматривалась общая процедура и объяснялись некоторые способы использования этого метода в настоящее время. Спасибо за просмотр!

Procedure

В тандемной масс-спектрометрии представляющая интерес биомолекула выделяется из биологического образца, а затем фрагментируется на несколько субъединиц, чтобы помочь выяснить ее состав и последовательность. Это достигается за счет использования масс-спектрометров последовательно. Первый спектрометр ионизирует образец и фильтрует ионы с определенным отношением массы к заряду. Затем отфильтрованные ионы фрагментируются и передаются во второй масс-спектрометр, где фрагменты анализируются.

В этом видео представлены принципы тандемной масс-спектрометрии, включая методы выбора массы к отношению и диссоциации. Также показана общая методика анализа биохимического соединения с использованием тандемной масс-спектрометрии с диссоциацией, вызванной столкновением. Раздел «Приложения» охватывает мониторинг реакции отбора, определение модификаций белка после трансляции и обнаружение уровня такролимуса в крови.

Тандемная масс-спектрометрия связывает воедино несколько этапов масс-спектрометрии, чтобы сначала выделить биомолекулу, а затем определить аспекты ее химического состава. Биомолекулы имеют крупные, сложные структуры, что затрудняет определение их молекулярного состава. Тандемная масс-спектрометрия выбирает интересующую молекулу, которая впоследствии фрагментируется на несколько субъединиц, что может помочь выяснить ее идентификацию и последовательность. В этом видео будут показаны концепции тандемной масс-спектрометрии, общая процедура и некоторые из ее применений в биохимии.

Тандемная масс-спектрометрия начинается с типичного масс-спектрометрии: с источника ионов, который преобразует образец в ионы, и масс-анализатора, который разделяет ионы на основе их отношения массы к заряду. Обычный масс-анализатор, квадруполь, пропускает только ионы с определенным соотношением, в то время как остальные врезаются в стержни аппарата. Виды, которым может проникнуть внутрь, называемые ионом-предшественником, представляют интерес и представляют интерес для биомолекул. Ион перемещается в столкновительную ячейку, обычно в другую квадруполь, где энергия прикладывается для фрагментации иона по предсказуемой схеме.

Эти фрагменты перемещаются в другой масс-анализатор, такой как времяпролетный анализатор, который отделяет эти «ионы продукта». Затем ионы продукта направляются в детектор, как в обычном приборе МС. В случае неизвестного белка результирующий спектр содержит многочисленные перекрывающиеся фрагменты, что затрудняет создание окончательной полной последовательности биомолекулы. Тем не менее, спектральная картина уникальна для данного белка. Аналитическое программное обеспечение сравнивает спектр с базой данных известных пептидных последовательностей, выявляя неизвестный белок из перекрывающихся фрагментов.

В зависимости от образца и желаемой степени фрагментации возможны несколько методов фрагментации. Характер фрагментации зависит от того, как передается энергия, ее количество и как она распределяется по иону-предшественнику. Энергия может передаваться с помощью нейтральных частиц, излучения или электронов. Используя нейтральные атомы, процесс, называемый диссоциацией, вызванной столкновением или CID, в первую очередь расщепляет пептидную связь между аминокислотами, идеально подходящую для их идентификации.

Теперь, когда мы разобрались с основами метода, давайте посмотрим на тандемную масс-спектрометрию CID, используемую для изучения компонента оболочек бактериальных клеток.

Как и во всех масс-спектрометрических экспериментах, первым шагом является ионизация образца. Для биомолекул это обычно делается с помощью матричной лазерной десорбции или ионизации электроспреем. Затем ионный сигнал предшественника оптимизируется путем настройки ионной оптики. После этого цель изолируется и выбирается метод фрагментации, например CID.

Сила приложенного напряжения, которое ускоряет ион-предшественник в ячейке столкновения, влияет на степень фрагментации. Это напряжение увеличивается до тех пор, пока содержание прекурсора не составит примерно 10% по сравнению с ионом с наибольшим продуктом. Несколько спектров регистрируются и усредняются до тех пор, пока не будет достигнуто достаточное соотношение сигнал/шум. Количество необходимых сканирований зависит от интенсивности сигнала исходного иона-предшественника и может варьироваться от 3 до 300.

Аналит в этом примере, липид А из Escherichia coli K-12, имел 19 основных фрагментов после CID. Общая структура липида А хорошо известна, что позволяет программному обеспечению реконструировать конкретный состав по образцу.

Теперь, когда мы рассмотрели процедуру, давайте рассмотрим некоторые способы использования тандемной масс-спектрометрии в биохимии.

Распространенным режимом сканирования в тандемной масс-спектрометрии является выбранный мониторинг реакции, или SRM. В SRM оба масс-анализатора фиксируются на выбранном соотношении массы к заряду, фокусируясь на конкретных ионах-прекурсорах и продуктах. Благодаря высокой степени чувствительности SRM, спектры пептидных стандартов известных концентраций могут быть использованы и сравнены с спектрами неизвестных образцов, что позволяет количественно определить интересующие их белки.

Белки обычно модифицируются после трансляции, как правило, путем добавления функциональных групп, таких как метильные группы, фосфатные группы или сахара, известные как гликаны. Они играют важную роль в клеточных сигнальных процессах, выясняя, как клетки взаимодействуют друг с другом. Поскольку тандемная масс-спектрометрия фрагментирует белки на более мелкие компоненты, можно определить местоположение ПТМ по отношению к конкретному фрагменту или даже аминокислоте. Некоторые модификации, такие как ацетилирование и триметилирование, трудно дифференцировать только по массе, поэтому перед масс-спектрометрией проводится хроматографическое разделение.

Многие аналиты в крови пациента обнаруживаются в концентрациях ниже предела обнаружения для типичной масс-спектрометрии. Еще одним преимуществом SRM является то, что он отбрасывает все ионы продукта, кроме одного, увеличивая чувствительность и увеличивая нижний предел обнаружения до 100 раз. В этом примере иммунодепрессантный препарат, такролимус, может быть обнаружен на уровне 1 нг/мл.

Вы только что посмотрели видео JoVE о тандемной масс-спектрометрии. В этом видео описывалась теория инструмента, рассматривалась общая процедура и объяснялись некоторые способы использования этого метода в настоящее время. Спасибо за просмотр!

Transcript

Тандемная масс-спектрометрия связывает воедино несколько этапов масс-спектрометрии, чтобы сначала выделить биомолекулу, а затем определить аспекты ее химического состава. Биомолекулы имеют крупные, сложные структуры, что затрудняет определение их молекулярного состава. Тандемная масс-спектрометрия выбирает интересующую молекулу, которая впоследствии фрагментируется на несколько субъединиц, что может помочь выяснить ее идентификацию и последовательность. В этом видео будут показаны концепции тандемной масс-спектрометрии, общая процедура и некоторые из ее применений в биохимии.

Тандемная масс-спектрометрия начинается с типичного масс-спектрометрии: с источника ионов, который преобразует образец в ионы, и масс-анализатора, который разделяет ионы на основе их отношения массы к заряду. Обычный масс-анализатор, квадруполь, пропускает только ионы с определенным соотношением, в то время как остальные врезаются в стержни аппарата. Виды, которым может проникнуть внутрь, называемые ионом-предшественником, представляют интерес и представляют интерес для биомолекул. Ион перемещается в столкновительную ячейку, обычно в другую квадруполь, где энергия прикладывается для фрагментации иона по предсказуемой схеме.

Эти фрагменты перемещаются в другой масс-анализатор, такой как времяпролетный анализатор, который отделяет эти «ионы продукта». Затем ионы продукта направляются в детектор, как в обычном приборе МС. В случае неизвестного белка результирующий спектр содержит многочисленные перекрывающиеся фрагменты, что затрудняет создание окончательной полной последовательности биомолекулы. Тем не менее, спектральная картина уникальна для данного белка. Аналитическое программное обеспечение сравнивает спектр с базой данных известных пептидных последовательностей, выявляя неизвестный белок из перекрывающихся фрагментов.

В зависимости от образца и желаемой степени фрагментации возможны несколько методов фрагментации. Характер фрагментации зависит от того, как передается энергия, ее количество и как она распределяется по иону-предшественнику. Энергия может передаваться с помощью нейтральных частиц, излучения или электронов. Используя нейтральные атомы, процесс, называемый диссоциацией, вызванной столкновением или CID, в первую очередь расщепляет пептидную связь между аминокислотами, идеально подходящую для их идентификации.

Теперь, когда мы разобрались с основами метода, давайте посмотрим на тандемную масс-спектрометрию CID, используемую для изучения компонента оболочек бактериальных клеток.

Как и во всех масс-спектрометрических экспериментах, первым шагом является ионизация образца. Для биомолекул это обычно делается с помощью матричной лазерной десорбции или ионизации электроспреем. Затем ионный сигнал предшественника оптимизируется путем настройки ионной оптики. После этого цель изолируется и выбирается метод фрагментации, например CID.

Сила приложенного напряжения, которое ускоряет ион-предшественник в ячейке столкновения, влияет на степень фрагментации. Это напряжение увеличивается до тех пор, пока содержание прекурсора не составит примерно 10% по сравнению с ионом с наибольшим продуктом. Несколько спектров регистрируются и усредняются до тех пор, пока не будет достигнуто достаточное соотношение сигнал/шум. Количество необходимых сканирований зависит от интенсивности сигнала исходного иона-предшественника и может варьироваться от 3 до 300.

Аналит в этом примере, липид А из Escherichia coli K-12, имел 19 основных фрагментов после CID. Общая структура липида А хорошо известна, что позволяет программному обеспечению реконструировать конкретный состав по образцу.

Теперь, когда мы рассмотрели процедуру, давайте рассмотрим некоторые способы использования тандемной масс-спектрометрии в биохимии.

Распространенным режимом сканирования в тандемной масс-спектрометрии является выбранный мониторинг реакции, или SRM. В SRM оба масс-анализатора фиксируются на выбранном соотношении массы к заряду, фокусируясь на конкретных ионах-прекурсорах и продуктах. Благодаря высокой степени чувствительности SRM, спектры пептидных стандартов известных концентраций могут быть использованы и сравнены с спектрами неизвестных образцов, что позволяет количественно определить интересующие их белки.

Белки обычно модифицируются после трансляции, как правило, путем добавления функциональных групп, таких как метильные группы, фосфатные группы или сахара, известные как гликаны. Они играют важную роль в клеточных сигнальных процессах, выясняя, как клетки взаимодействуют друг с другом. Поскольку тандемная масс-спектрометрия фрагментирует белки на более мелкие компоненты, можно определить местоположение ПТМ по отношению к конкретному фрагменту или даже аминокислоте. Некоторые модификации, такие как ацетилирование и триметилирование, трудно дифференцировать только по массе, поэтому перед масс-спектрометрией проводится хроматографическое разделение.

Многие аналиты в крови пациента обнаруживаются в концентрациях ниже предела обнаружения для типичной масс-спектрометрии. Еще одним преимуществом SRM является то, что он отбрасывает все ионы продукта, кроме одного, увеличивая чувствительность и увеличивая нижний предел обнаружения до 100 раз. В этом примере иммунодепрессантный препарат, такролимус, может быть обнаружен на уровне 1 нг/мл.

Вы только что посмотрели видео JoVE о тандемной масс-спектрометрии. В этом видео описывалась теория инструмента, рассматривалась общая процедура и объяснялись некоторые способы использования этого метода в настоящее время. Спасибо за просмотр!

Explore More Videos

Тандемная масс-спектрометрия биомолекула химический состав молекулярный состав фрагментация идентификация последовательность источник ионов масс-анализатор квадруполь коллизионная ячейка ионы продукта времяпролет детектор неизвестный белок

Related Videos

Диализ: диффузионное разделение

Диализ: диффузионное разделение

Biochemistry

80.8K Просмотры

Ферментные анализы и кинетика

Ферментные анализы и кинетика

Biochemistry

135.1K Просмотры

MALDI-TOF Масс-спектрометрия

MALDI-TOF Масс-спектрометрия

Biochemistry

66.9K Просмотры

Кристаллизация белка

Кристаллизация белка

Biochemistry

44.3K Просмотры

Методы очистки биомолекул на основе хроматографии

Методы очистки биомолекул на основе хроматографии

Biochemistry

162.3K Просмотры

Двумерный гель-электрофорез

Двумерный гель-электрофорез

Biochemistry

53.4K Просмотры

Метаболическое мечение

Метаболическое мечение

Biochemistry

13.3K Просмотры

Электрофоретический анализ сдвига подвижности (EMSA)

Электрофоретический анализ сдвига подвижности (EMSA)

Biochemistry

45.9K Просмотры

Фотометрическое определение белка

Фотометрическое определение белка

Biochemistry

142.2K Просмотры

Ультрацентрифугирование с градиентом плотности

Ультрацентрифугирование с градиентом плотности

Biochemistry

84.5K Просмотры

Коиммунопреципитация и анализы на понижение

Коиммунопреципитация и анализы на понижение

Biochemistry

73.1K Просмотры

Восстановление мембранных белков

Восстановление мембранных белков

Biochemistry

27.0K Просмотры

Резонансный перенос энергии Фёрстера (FRET)

Резонансный перенос энергии Фёрстера (FRET)

Biochemistry

46.6K Просмотры

Поверхностный плазмонный резонанс (SPR)

Поверхностный плазмонный резонанс (SPR)

Biochemistry

25.7K Просмотры

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code