10 апреля 2018 г.
Эта статья описывает подробные протоколы для изготовления экосистемы устройств (EcoFABs), которые позволяют исследования растений и завод микробных взаимодействий в очень контролируемой лабораторных условиях.
Общая цель данного протокола заключается в определении стандартизированных подходов к построению упрощенных модельных экосистем растений, называемых EcoFABs, которые позволяют проводить контролируемые, воспроизводимые лабораторные эксперименты для изучения взаимодействий микробов растений, которые могут быть дополнительно протестированы в полевых условиях. Этот метод может быть использован для изучения взаимодействия микробов растений в контролируемой среде, что позволяет нам получить подробное механистическое представление о функциях микробиомов, чтобы мы могли использовать их для устойчивого сельского хозяйства. Мы помогли разработать этот первый Eco-FAB, в котором используются различные доступные технологии 3D-печати и стерилизуются камеры для выращивания растений, что позволяет получать изображения с высоким разрешением и проводить химический анализ.
Разработанное здесь устройство Eco-FAB хорошо подходит для анализа взаимодействий микробов растений, поскольку оно включает в себя анализ морфологии корней и масс-спектроскопическую визуализацию. После конструирования пресс-форм Eco-FAB, с помощью 3D-печати по текстовому протоколу, в одноразовой литровой емкости смешайте 40 миллилитров силоксановой эластомерной основы с различными объемами отвердителя, в зависимости от эксперимента. Поместите контейнер в вакуумную камеру не менее чем на 30 минут, чтобы удалить пузырьки воздуха из эластомерной смеси.
Затем удалите смесь и залейте ее в собранную пластиковую форму, напечатанную на 3D-принтере. Чтобы создать однородный слой PDMS, пузырьки воздуха должны быть тщательно удалены. Используйте сжатый воздух для сдувания остатков воздуха после переноса смеси в форму.
Держите форму на нагревательном блоке при температуре 85 градусов Цельсия в течение четырех часов. Дайте форме остыть в течение пяти минут. Затем аккуратно вытащите вставку из формы и с помощью канцелярского ножа медленно отделите PDMS от литейной рамы.
Выдавите основание формы с помощью PDMS вверх из литейной рамы. Затем с помощью ножа или других инструментов аккуратно отделите слой PDMS от основания формы по краям и медленно снимите его с поверхности формы. С помощью тупой иглы 15 калибра создайте входной канал на слоях PDMS, проделав отверстия диаметром 1,6 мм в этой части.
Затем с помощью ножниц обрежьте края слоев PDMS. Чтобы прочно приклеить слои PDMS к предметным стеклам микроскопа, используйте метанол для промывки склеивающей стороны слоя PDMS на предметном стекле микроскопа размером 7,6 на пять сантиметров, а затем выдуйте их насухо сжатым воздухом или пистолетом для сверхчистого азота. Поместите предметное стекло микроскопа и слой PDMS в очиститель плазмы соединительными сторонами вверх.
Закройте камеру и клапан выпуска газа. Затем включите вакуум и откачайте камеру вниз в течение одной минуты. Включите питание плазменного генератора и переключите радиочастоту, или уровень радиочастоты, на высокий уровень на одну минуту.
Затем выключите вакуумный насос и питание плазмы и выпустите камеру в атмосферу. Извлеките предметное стекло микроскопа и слой PDMS из плазменной камеры и быстро прижмите все четыре края слоя PDMS к предметному стеклу с равномерным давлением. Следите за тем, чтобы центральная овальная область, которая является корневой камерой, не касалась предметного стекла.
Используя сверхчистую воду, промойте приборы Eco-FAB. Поместите одно устройство Eco-FAB в контейнер Eco-FAB и добавляйте 70% этанола до тех пор, пока устройство не будет погружено в воду. Затем закройте крышку контейнера и осторожно встряхните ее, чтобы смочить все поверхности внутри этанолом, убедившись, что камера для роста корней устройства Eco-FAB заполнена этанолом, в котором очень мало пузырьков воздуха или их нет.
После инкубации устройств при комнатной температуре в течение 30 минут слейте 70% этанол и замените его на 100% этанол. Затем инкубируйте устройства в течение пяти минут. После инкубации слейте воду с этанола и оставьте стерилизованный Eco-FAB в ламинарном колпаке на 16 часов, чтобы он полностью высох.
Если возможно, простерилизуйте систему, включив ультрафиолетовое излучение в вытяжке на один час. Чтобы провести стерилизацию семян и проращивание, замочите семена в 70%-ном этаноле на две минуты. Затем с помощью пипетки удалите этанол, и с помощью стерильной воды трижды промойте семена.
Далее замочите семена в 10% растворе хлорной извести на пять минут. Затем удалите раствор отбеливателя, и с помощью стерильной воды тщательно промойте семена три раза. После промывки добавьте к семенам стерильную воду, и инкубируйте пробирку при температуре четыре градуса Цельсия в течение семи дней.
Равномерно разложите семена по 0,5 Мурашиге и Скуга, или МС среднюю, с 0,6%-ным витагелем. И с помощью микропористой ленты заклейте пластины. Затем вырастите растения до длины корня около пяти миллилитров.
Чтобы пересадить рассаду в аппараты Eco-FAB, с помощью стерильного шприца или микропипетки и стерильной воды трижды промыть корневую камеру устройства Eco-FAB, а затем заполнить корневую камеру интересующей средой для выращивания, например, средой 0,5 мс. Теперь аккуратно вставьте один саженец в резервуар для растений устройства Eco-FAB. Важно, чтобы рассада была аккуратно перенесена с плиты на Эко-ФАБ, чтобы корни не сломались.
Добавьте в емкость три миллилитра стерильной воды, избегая устройства Eco-FAB. Это повысит влажность и уменьшит испарение среды из корневой камеры. Затем закройте контейнер и с помощью микропористой ленты запечатайте крышку.
Поместите Eco-FAB в растительный инкубатор или используйте систему освещения Eco-FAB в среде с контролируемой температурой, подходящей для роста соответствующего растения. Затем установите камеру на 24 градуса Цельсия. Наконец, проведите профилирование метаболитов и масс-спектрометрию, согласно текстовому протоколу.
На этих рисунках показаны семидневные Aaabidopsis thaliana, brachypodium distachyon и panicum virgatum, растущие в Eco-FABs. Было обнаружено, что как двудольный, так и однодольный доживают до стадии размножения в Eco-FAB. Эти сеянцы представляют собой группу 14-дневных брахиподиумных дистахионов, растущих в гидропонной среде, а также в песке и грунте с добавлением гидропонной среды и воды соответственно.
Тонкий, твердый слой субстрата и камеры для роста корней пропускают свет для микроскопической визуализации корневых систем. Здесь саженец brachypodium distachyon был перенесен в устройство Eco-FAB, а его корневая структура была зафиксирована камерой внутри тепловизора biorad gel. Количественная оценка общей площади корней в течение трех недель показала постепенное увеличение на ранней стадии, за которым следовал линейный тренд роста до конца.
На этом рисунке Eco-FAB, содержащий ризобактерии, способствующие росту растений, pseudomonas simiae, WCS417, был добавлен в корневую систему растений в количестве от 10 до 6 клеток на растение. Микробы WCS147 колонизировали поверхность всей корневой системы, а микробы концентрировались вокруг областей кончиков корней. При обновлении среды для выращивания и сборе корневых выделений из Eco-FAB важно помнить о том, что вся работа должна выполняться в стерильном колпаке, чтобы избежать загрязнения.
Устройства Eco-FAB также могут быть изготовлены с использованием обратимого физического уплотнения либо с помощью напечатанного на 3D-принтере зажима, либо путем изменения вязкости PDMS. Это позволяет использовать твердые питательные среды и прямую масс-спектроскопическую визуализацию. После разработки Eco-FAB эта система позволит исследователям по всему миру использовать эти лабораторные модельные экосистемы для изучения взаимодействия микробов растений с использованием технологий системной биологии и визуализации.
После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как изготовить систему Eco-FAB, а также о ее широком применении в исследованиях экосистем. Мы надеемся, что этот проект Eco-FAB позволит другим ученым достичь своих конкретных научных целей. Что еще более важно, мы надеемся, что другие ученые будут опираться на этот проект Eco-FAB и улучшать его, а также делиться им с другими учеными, чтобы мы, как сообщество, могли построить эти лабораторные экосистемы, которые позволят нам лучше понять взаимодействие растительных микробов.
Не забывайте, что работа с микробами и острыми предметами может быть чрезвычайно опасной, и что при выполнении этой процедуры всегда следует соблюдать меры предосторожности.
В этой статье описываются подробные протоколы по созданию EcoFAB, которые облегчают исследования взаимодействий между растениями и растениями-микроорганизмами в контролируемых лабораторных условиях.
EcoFABs provide a standardized, reproducible platform for mechanistic studies of plant-microbe interactions under controlled laboratory conditions. This enables de-risking of target validation in agricultural biotechnology by clarifying functional roles of microbiomes in plant health and stress response. The system supports predictive confidence in lead identification for microbiome-based bioinputs through dynamic monitoring of root exudates, microbial localization, and plant growth phenotypes.
EcoFABs integrate into the discovery continuum from hypothesis testing in early discovery to lead identification and preclinical validation, supporting iterative design-test cycles for microbiome-based agricultural solutions.