-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Immunology and Infection
Методы для обнаружения цитотоксических Амилоиды следующие инфекции из легочного эндотелиальных кл...
Методы для обнаружения цитотоксических Амилоиды следующие инфекции из легочного эндотелиальных кл...
JoVE Journal
Immunology and Infection
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Immunology and Infection
Methods for Detecting Cytotoxic Amyloids Following Infection of Pulmonary Endothelial Cells by Pseudomonas aeruginosa

Методы для обнаружения цитотоксических Амилоиды следующие инфекции из легочного эндотелиальных клеток, синегнойной палочки

Full Text
5,902 Views
07:27 min
July 12, 2018

DOI: 10.3791/57447-v

Ron Balczon1,4, Michael Francis2,4, Silas Leavesley3,4, Troy Stevens2,4

1Department of Biochemistry and Molecular Biology,University of South Alabama, 2Department of Physiology and Cell Biology,University of South Alabama, 3Department of Chemical and Biomolecular Engineering,University of South Alabama, 4Center for Lung Biology,University of South Alabama

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Простые методы описаны для демонстрации производство цитотоксических Амилоиды после инфицирования легочного эндотелия синегнойной палочки.

Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области пульмонологии, например, почему пациенты, выжившие после внутрибольничной пневмонии, имеют такие плохие долгосрочные результаты? Преимущество этого метода в том, что он прост и надежен, а это значит, что любой, кто приходит в лабораторию, может быть обучен этому, и на следующий день он генерирует полезные и воспроизводимые данные. Хотя эти аналитические методы могут быть применены для получения информации об инфекции культивируемых клеток in vitro, они также могут быть применены к животным моделям и пациентам

.

Чтобы получить цитотоксический надосадочную жидкость, промойте 150-сантиметровую чашку с эндотелиальными клетками HBSS и разбавьте колонию P.aeruginosa до поглощения 0,25 на 540 нанометрах. Далее разбавьте бактериальные клетки, чтобы обеспечить кратность инфекции от 20 до одного на 20 миллилитров HBSS, и засейте бактерии на пластине эндотелиальных клеток. Затем поместите зараженные клетки в инкубатор с температурой 37 градусов Цельсия и 5% CO2 на четыре-пять часов.

Важно, чтобы инкубация бактерий и эндотелиальных клеток происходила в течение соответствующего периода времени. Если инкубация будет слишком короткой, амилоиды не будут выделяться в надосадочную жидкость. Если инкубация длится слишком долго, клетки фактически лизируются и высвобождают все свое содержимое в надосадочную жидкость.

Показателем, который мы используем для соответствующей продолжительности инкубации, является образование щелей в эндотелиальном монослое. Когда в монослое клетки можно наблюдать пробелы с помощью световой микроскопии, соберите надосадочную жидкость для центрифугирования, чтобы удалить любой клеточный мусор. Сцедите надосадочную жидкость в шприц, оснащенный фильтром 0,2 микрона, и пропустите надосадочную жидкость через фильтр, чтобы удалить любые загрязняющие бактерии.

Затем отложите 1,5 миллилитра стерильного надосадочной жидкости для проверки на цитотоксичность и заморозьте оставшуюся часть образца при температуре минус 80 градусов Цельсия. Чтобы оценить цитотоксичность собранной надосадочной жидкости, добавьте 1,5 миллилитровую аликвоту стерилизованной фильтрованной надосадочной жидкости в одну лунку шестилуночного планшета, содержащую сливающуюся культуру легочных микрососудистых эндотелиальных клеток. Поместите планшет в CO2-инкубатор на 21–24 часа.

Затем получают изображения областей обрабатываемой и контрольной культур. Импортируйте изображения в пользовательский макрос imagej и настройте контрастность до 15% насыщенных пикселей. Дублируйте изображения с поправкой на контраст и используйте вычитание фона для получения высококонтрастных изображений как неповрежденных клеток, так и области зазора в поле зрения.

Вычтите это высококонтрастное изображение из исходного изображения и используйте калькулятор изображений и функцию для объединения полученного изображения с исходным изображением. Используйте функцию порога для преобразования объединенного изображения в маску с пропусками черного цвета и неповрежденными ячейками белым. И используйте функцию двоичной эрозии, чтобы удалить любой шум с изображения.

Затем используйте долю площади для измерения соотношения черных и белых пикселей в результирующем изображении. А также постройте график и выразите дробные площади для каждой временной точки лечения в процентах от максимальной площади зазора. Чтобы количественно определить содержание амилоидов в надосадочной жидкости, добавьте 20 микролитров свежеприготовленного и отфильтрованного стокового раствора тиофлавина Т 50X к одному миллилитру PBS в кювете спектрофотометра объемом 1 миллилитр и загрузите разведенный образец на спектрофлуориметр.

Измерьте базовое флуоресцентное излучение с помощью возбуждения 425 нанометров. Сканирование флуоресцентного излучения от 450 до 575 нанометров с шагом в два нанометра. Затем настройте прибор на выполнение покадрового сканирования с использованием возбуждения 425 нм и излучения 482 нм со сбором данных каждые 0,2 секунды в течение 60 секунд.

Поставьте сканирование на паузу через 20 секунд и процедите 10 микролитров простиранной надосадочной жидкости в кювету. После перемешивания методом инверсии снова загрузите кювету на спектрофлуориметр и возобновите сканирование по времени в течение последних 40 секунд. По завершении таймлапса выполните окончательное сканирование спектра флуоресцентного излучения с использованием исходных настроек сканирования.

Добавление P.aeruginosa к сливающимся слоям эндотелиальных клеток легочных микрососудов индуцирует образование щели между клетками. Используя imagej для оценки цитотоксичности надосадочной жидкости, как это было продемонстрировано в течение первых 12 часов лечения, все еще здоровые монослои сливающихся клеток могут быть визуализированы как все белые области в микроскопическом поле. Тем не менее, через 18 часов после добавления надосадочной жидкости, собранной из инфицированных культур PA 103, могут быть обнаружены пробелы в монослое, при этом площадь чашки для культиваторов, лишенная клеток, увеличивается линейно до 36 часов обработки, после чего практически не может наблюдаться интактных клеток.

Аналогичные результаты могут быть получены при использовании высвобождения лактатдегидрогеназы в качестве маркера цитотоксичности. При этом лактатдегидрогеназа впервые обнаруживается через 18 часов после добавления цитотоксического надосадочной жидкости и линейно увеличивается до тех пор, пока максимальное уничтожение клеток не будет измерено через 36 часов. Надосадочная жидкость также может быть оценена с помощью иммуноблоттингового анализа или путем измерения изменения интенсивности флуоресценции тиофлавина Т из-за подтверждающих изменений, вызванных связыванием амилоида, для определения присутствия цитотоксических амилоидов в надосадочной жидкости.

После просмотра этого видео у вас должно быть хорошее понимание того, как генерировать цитотоксические надосадочные жидкости после инфицирования эндотелиальных клеток цитомонсом энегнойной. Кроме того, вы должны хорошо разбираться в типах анализов, необходимых для определения и анализа цитотоксинов, присутствующих в этих надосадочной жидкости.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Иммунология и инфекции выпуск 137 значения амилоида эндотелий пневмонии прионы синегнойной палочки Тау Тиофлавин Т

Related Videos

Количественная оценка амилоидов, индуцированных бактериальной инфекцией, с помощью флуоресценции тиофлавина Т

02:48

Количественная оценка амилоидов, индуцированных бактериальной инфекцией, с помощью флуоресценции тиофлавина Т

Related Videos

229 Views

Получение цитотоксических амилоидов после бактериальной инфекции эндотелиальных клеток легочной артерии крыс

03:14

Получение цитотоксических амилоидов после бактериальной инфекции эндотелиальных клеток легочной артерии крыс

Related Videos

148 Views

Обнаружение прилипания бактерий к клеткам-хозяевам с помощью флуоресцентной визуализации

03:05

Обнаружение прилипания бактерий к клеткам-хозяевам с помощью флуоресцентной визуализации

Related Videos

609 Views

Единичных измерений Сотовые вакуолярных разрыв под действием внутриклеточных патогенов

10:39

Единичных измерений Сотовые вакуолярных разрыв под действием внутриклеточных патогенов

Related Videos

14K Views

Синегнойная палочка Индуцированные легких травм Модель

07:24

Синегнойная палочка Индуцированные легких травм Модель

Related Videos

18.9K Views

Изучение микробных сообществ В Vivo: Модель узла опосредованного взаимодействия между Candida Albicans И Синегнойной палочки В Airways

06:43

Изучение микробных сообществ В Vivo: Модель узла опосредованного взаимодействия между Candida Albicans И Синегнойной палочки В Airways

Related Videos

9.3K Views

Культура Малой колонии Вариант Pseudomonas aeruginosa и Квантитация его Alginate

09:06

Культура Малой колонии Вариант Pseudomonas aeruginosa и Квантитация его Alginate

Related Videos

9.1K Views

П. аэругиноза Зараженная 3D сокультура бронхиальных эпителиальных клеток и макрофагов при воздушно-жидком интерфейсе для доклинической оценки антиинфекционных элементов

10:26

П. аэругиноза Зараженная 3D сокультура бронхиальных эпителиальных клеток и макрофагов при воздушно-жидком интерфейсе для доклинической оценки антиинфекционных элементов

Related Videos

11.6K Views

Изучение влияния сигаретного дыма на инфекцию Псевдомонас в эпителиальных клетках легких

09:15

Изучение влияния сигаретного дыма на инфекцию Псевдомонас в эпителиальных клетках легких

Related Videos

6.4K Views

Визуализация синегнойной палочки в мокроте больных муковисцидозом

07:25

Визуализация синегнойной палочки в мокроте больных муковисцидозом

Related Videos

3.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code