24 августа 2018 г.
Этот протокол описывает метод для крупномасштабного культивирования Caenorhabditis elegans на твердых носителях. Как альтернатива культур в жидкой среде этот протокол позволяет получать параметры различных масштабах культивирования на основе плиты. Это увеличивает сопоставимости результатов, опустив морфологических и метаболические различия между жидких и твердых носителей культуры.
В области C.elegans этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы, которые требуют получения больших популяций нематод и образцов с использованием планшетной культуры. Основными преимуществами этого протокола являются его простота в установлении, а также легкость описания, включая подводные камни и приложения. После получения синхронизированной популяции нематод добавьте примерно один миллилитр буфера M nine в пластины, и тщательно распределите буфер, раскачивая пластины.
После этого соберите нематод в 15 миллилитровую пробирку. Теперь переверните трубку и с помощью микроскопа оцените плотность нематод. При необходимости отрегулируйте плотность суспензии и продолжайте оценивать ее под микроскопом.
Нанесите 150 микролитров суспензии непосредственно на пластины с модифицированными наконечниками пипеток. Чтобы обеспечить равномерное распределение нематод между пластинами, переворачивайте трубку с суспензией через равные промежутки времени. Во-первых, промойте нематод с помощью модифицированного наконечника пипетки с примерно 500 микролитрами буфера M nine.
Используя тот же буфер, продолжайте отделять нематод до тех пор, пока большая часть животных не будет собрана во взвешенном состоянии. Далее возьмите нематод с модифицированным кончиком пипетки и переложите их в тарелку с OP50. Модифицированные наконечники пипеток уменьшают напряжение сдвига и повреждение нематод благодаря большему диаметру.
Затем дайте тарелке высохнуть. Перед сбором проб приготовьте жидкий азот для мгновенной заморозки собранных нематод. Затем поместите буфер M nine на лед.
Нанесите по одному миллилитру буфера M nine на каждую пластину и аккуратно взболтайте, чтобы вымыть каждую пластину. Затем возьмите объем М девяти буфера, и переложите его в новые 15 миллилитровые пробирки. Кратковременно центрифугируйте пробирку при 800 умноженных на g, прежде чем удалить большую часть буфера M nine.
Затем промойте образцы три раза 10 миллилитров буфера M nine, чтобы удалить любые бактерии. С помощью стеклянной пипетки переложите каждую гранулу в пустую пробирку объемом 1,5 миллилитра. Используйте стеклянную пипетку, чтобы взять один миллилитр буфера M nine из второй 1,5-миллилитровой пробирки, чтобы смыть нематоды со стенки пипетки.
Затем промойте оставшиеся нематоды из пробирок объемом 15 миллилитров, и перенесите их в пробирки с образцами. Затем центрифугируйте пробирки с образцами при давлении 19 000 раз g в течение одной минуты и удалите как можно больше надосадочной жидкости. Затем запечатайте каждую трубку парафиновой пленкой и сразу же заморозьте их в жидком азоте.
Храните пробирки при температуре минус 80 градусов Цельсия до получения лизата. Добавьте к каждому замороженному образцу те же объемы 0,5-миллиметровых гранул оксида циркония и в два раза больший объем буфера лизата с коктейлем ингибиторов протеиназы. Затем поместите пробирки в гомогенизатор на одну минуту на девятой скорости.
Центрифугируйте образцы в течение 30 минут при температуре 4 градуса Цельсия и 19 000 раз больше избытка. Наконец, перенесите надосадочную жидкость в новую пробирку на льду и храните ее при температуре минус 80 градусов Цельсия для будущих экспериментов. В этом протоколе большое количество C.elegans было культивировано для применения в исследованиях диабета.
Количество собранных нематод коррелировало с выходом белка лизата, что свидетельствует о том, что воспроизводимое количественное выделение белка может быть достигнуто с помощью этого протокола. Здесь представлен масс-спектрометрический анализ реакционноспособного метаболита метилглиоксаля и конечных продуктов гликирования, образованных воздействием метилглиоксаля. Сравнивали нематод, получавших глюкозу, и контрольную группу.
Перенос нематод через пипетку может создать напряжение сдвига, потенциально причиняя вред нематодам. Уровни окислительного стресса у пипетированных нематод и нематод, перенесенных с помощью металлической проволоки, не различались при использовании этого протокола. После этой процедуры могут быть выполнены другие методы, такие как вестерн-блоттинг, чтобы ответить на дополнительные вопросы по протеомике.
Этот протокол также облегчает проведение экспериментов, которые связывают несколько параметров с одной и той же популяцией.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном протоколе описывается метод крупномасштабного культивирования Caenorhabditis elegans на твердых средах. Этот подход позволяет получать большие популяции и образцы нематод, что повышает сопоставимость результатов.
Масштабное культивирование C. elegans позволяет проводить воспроизводимую количественную изоляцию белков для поиска биомаркеров, связанных с диабетом, что способствует валидации мишеней при нейродегенеративных осложнениях. Данный метод обеспечивает масштабируемый рабочий процесс с минимизацией напряжения сдвига для протеомного анализа AGEs и ROS, который может быть напрямую применен для снижения рисков при изучении механизмов на ранних этапах разработки лекарственных препаратов. Обеспечивая подготовку синхронизированной популяции в контролируемых условиях, этот подход повышает прогностическую достоверность доклинических моделей диабетической патологии.
Данный метод занимает место в континууме открытий — от проверки гипотез через поиск перспективных соединений-лидеров до доклинической валидации, — в частности, поддерживая исследования нейродегенерации, связанной с диабетом.