-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Комбинированные нуклеотидов и экстракции белка в Caenorhabditis elegans
Комбинированные нуклеотидов и экстракции белка в Caenorhabditis elegans
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Combined Nucleotide and Protein Extractions in Caenorhabditis elegans

Комбинированные нуклеотидов и экстракции белка в Caenorhabditis elegans

Full Text
10,867 Views
10:37 min
March 17, 2019

DOI: 10.3791/59178-v

Joslyn Mills1, Erin McConnell1, Joshua A. Leitão1, Louis R. Lapierre1

1Department of Molecular Biology, Cell Biology and Biochemistry,Brown University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for the simultaneous isolation of RNA, DNA, and protein from the same sample, aiming to minimize variability and enhance reproducibility. This approach allows for more meaningful insights into the regulation of macromolecules.

Key Study Components

Research Area

  • Molecular Biology
  • Genetic Regulation
  • Sample Preparation Techniques

Background

  • Importance of reducing inter-sample variability.
  • Insights into the relationship between mRNA and protein levels.
  • Addressing challenges in cross-sectional analyses of limited samples.

Methods Used

  • Isolation protocol for RNA, DNA, and protein.
  • Use of C. elegans as the model organism.
  • Application of spectrophotometry for quantification.

Main Results

  • Successful isolation of high-quality macromolecules.
  • Reduction in variability leading to improved data correlations.
  • Practical benefits in time and resource management during sample collection.

Conclusions

  • The study demonstrates the efficacy of the protocol in reducing biological variability.
  • The findings are relevant for advancing methodologies in molecular biology research.

Frequently Asked Questions

What are the main advantages of this protocol?
It reduces inter-sample variation and enhances data reproducibility while saving time and resources.
Which model organism is used in this study?
The protocol is demonstrated using C. elegans.
How are RNA, DNA, and protein quantified?
Quantification is performed using a spectrophotometer.
What challenges does this protocol address?
It addresses inter-sample variability and enables the analysis of limited samples effectively.
Can this protocol be adapted for other organisms?
While designed for C. elegans, the protocol could potentially be adapted for other organisms with similar sample requirements.
What temperature is recommended for incubation?
Incubation is recommended at 20 degrees Celsius for optimal growth conditions.
Is this protocol useful for gene expression studies?
Yes, it helps in understanding the differential regulation of genes by isolating mRNA and proteins together.

Здесь мы представляем собой протокол для изоляции РНК, ДНК и белка из того же образца, в попытке уменьшить вариации, улучшить воспроизводимость и облегчения толкования.

Использование этого протокола для удаления межпрофаймных вариаций может дать представление о дифференциальном регулировании макромолекул, основанных на внутрипрофаймных расхождениях между уровнями мРНК и белка. Использование одного и того же образца для изоляции ДНК, РНК и белка является попыткой уменьшить изменчивость, улучшить воспроизводимость и облегчить интерпретацию. Преимущества включают в себя сэкономленное время и ресурсы во время сбора выборки и поперечного анализа ценных и ограниченных образцов.

Для начала семя 1000 яиц червя в одной 10-сантиметровой пластине с соответствующими условиями роста. Инкубировать при 20 градусах по Цельсию в течение 72 часов. Затем вымойте тарелку с 5 миллилитров буфера M9 и передать 1000 взрослых червей в трубку.

Центрифуга червей на 1000 г в течение одной минуты, отбросить супернатант, и передать гранулированных червей, с одним миллилитром буфера M9, в 1,5 миллилитров микроцентрифуг трубки. Центрифуга снова на 845 г в течение одной минуты и отказаться от большинства супернатантов. Храните гранулы червей при температуре минус 80 градусов по Цельсию в течение более четырех часов.

Затем удалите любой супернатант из разморожевания гранул. Добавьте один миллилитр холодного реагента GTCP, хорошо перемешайте, трубя вверх и вниз, и поместите образец на лед в течение 10 минут. Затем добавьте 200 микролитров холодного хлороформа.

Встряхните трубку энергично в течение 15 секунд и оставить его при комнатной температуре в течение трех минут. Затем центрифуга трубки при 13 500 г при четырех градусах Цельсия в течение 15 минут. С помощью микро-пипетки перенесите ясный верхний слой в новую трубчатую трубку с микро центрифугой без RNase.

Перенесите мутный белый межфазный слой в новую трубку с пометкой B2 и перенесите розовый слой из оставшейся гранулы в новую трубку с пометкой B и поместите ее на лед. Простое разделение трех слоев может быть затруднено. Я рекомендую передать облачный межфазный слой в его собственную трубку, а не осаждать ДНК из этого слоя из органического, или розового слоя.

Чтобы изолировать РНК, сначала добавьте 500 микролитров 100%изопропанола в трубку А, чтобы вызвать РНК. Затем инкубировать трубку при комнатной температуре в течение 10 минут. После инкубации центрифуга трубки при 13 500 г при четырех градусах Цельсия в течение 10 минут.

Затем отбросьте супернатант и добавьте один миллилитр 75%этанола в трубку А для мытья гранул. Центрифуга трубки при 5 300 г при четырех градусах Цельсия в течение пяти минут. Откажитесь от супернатанта и дайте грануле высохнуть в течение пяти-десяти минут.

Добавьте 50 микролитров воды без RNase, чтобы восстановить гранулы РНК и инкубировать гранулы при 55 до 60 градусов по Цельсию в течение 10 минут, чтобы растворить его. Наконец, используйте спектрофотометр для измерения концентрации изолированной РНК на 260 нанометров и выявления любых примесей на 230 и 280 нанометров. Чтобы изолировать ДНК, сначала добавьте 300 микролитров 100% этанола в органическую фазу в трубке В и в мутный белый слой в трубке В2, чтобы вызвать ДНК, смешать инверсией и оставить трубки при комнатной температуре на две-три минуты.

Затем, центрифуга трубки B и B2 при 376 г при четырех градусах цельсия в течение пяти минут, чтобы гранулировать ДНК. Объедините супернатант из труб B и B2 в новую двухми миллилитровую трубку с маркировкой C и оставьте на льду для последующей белковой изоляции. Затем вымойте гранулы ДНК в трубке B2 с одним миллилитром 0,1 молярного цитрата натрия в 10% этанола в течение 30 минут.

Центрифугная трубка B2 при 376 г при четырех градусах Цельсия в течение пяти минут. Повторите шаг мытья, а затем повторно приостановить гранулы в 1,5 миллилитров 75%этанола и оставить его при комнатной температуре в течение 20 минут. Далее, центрифуга трубки B2 при 376 г при четырех градусах по Цельсию в течение пяти минут, а затем отказаться от супернатанта и дать гранулы высохнуть в течение пяти до 10 минут.

Растворите гранулы в 150 микролитерах восьмими миллилитров гидроксида натрия. Затем центрифуга образца на 376 г при четырех градусах Цельсия в течение пяти минут. Наконец, с помощью микропипетта перенесите супернатант, содержащий ДНК, в новую трубку.

Используйте спектрофотометр для измерения концентрации изолированной ДНК на 260 нанометров и выявления любых примесей на 230 и 280 нанометров. Чтобы вызвать белок, сначала добавьте до 1,5 миллилитров 100%изопропанола в розовый супернатант в трубке С, перемешайте несколько раз и инкубировать при комнатной температуре в течение 10 минут. Затем центрифуга трубки С при 13 500 г при четырех градусах Цельсия в течение 10 минут.

Откажитесь от супернатанта и промойте гранулы двумя миллилитров 0,3 молярного гидрохлорида гуанидина в 95% этанола в течение 20 минут при комнатной температуре. Центрифуга трубки снова на 5, 300 г при четырех градусах по Цельсию в течение пяти минут и повторить шаг мытья, как раньше. Перенесите белковую гранулу в новую 1,5 миллилитровую трубку с маркировкой C2 и добавьте до 1,5 миллилитров этанола, вихря, и дайте ему сидеть при комнатной температуре в течение 20 минут.

Центрифуга трубки при 5 300 г при четырех градусах Цельсия в течение пяти минут. Откажитесь от супернатанта и дайте грануле высохнуть при комнатной температуре в течение 10 минут. Затем растворите гранулы в 300 микролитров 5%SDS при 50 градусах по Цельсию в течение 60 минут.

Наконец, центрифуга трубки при 13 500 г при 17 градусах Цельсия в течение 10 минут. И перенесите супернатант, содержащий белок, в новую трубку. Для выполнения количественной обратной транскрипции ПЦР.

Во-первых, используйте одну нанограмму изолированной РНК для подготовки к РДНА путем обратной транскрипции. Чтобы сделать склад пластины cDNA, добавить 100 микролитров от одного до 100 разбавления каждого образца cDNA для отдельных скважин 96 пластины скважины, включают соответствующие элементы управления, такие как вода только скважины и последовательно разбавленных образцов, чтобы установить эффективность грунтовки для каждого гена. Чтобы сделать мастер смесь для каждого набора грунтовки, добавить до семи микролитров воды, ДНК-интеркалирования цианида красителя, и пять микро-моляров каждый из вперед и обратно грунтовки.

Добавьте семь микролитров мастер-микса к соответствующим скважинам пластины RT-qPCR. Затем добавьте три микролитера cDNA из фондовой пластины и запустите пластину с помощью протокола RT-qPCR, пригодного для использования грунтовок. Для подтверждения целей, выявленных анализом РНК, был проведен анализ отдельных мРНК из четырех независимых образцов трех штаммов червей.

F07C4.12 ген был upregulated в обоих анализах в eat-2 червей, но его upregulation в rsks-1 червей не был обнаружен анализ RT-qPCR. Кроме того, РНК seq обнаружила изменения экспрессии mrp-1 у червей eat-2 и rsks-1, которые были подтверждены с помощью RT-qPCR. Upregulation или down-regulation генов маркеров органеллы у червей-мутантов также были обнаружены в результате анализа RT-qPCR.

Сравнение GTCp с RIPA-извлеченным белком у червей, разделенных страницей SDS и окрашенных в кумасси синий показал аналогичное качество с лучшим разрешением больших белков для GTCp извлеченных белков. Западный анализ помарки показал подобные уровни протеина в большинств случаи;однако, протеины большле чем 75 kilodalton показали более низкие уровни в RIPA-извлеченных протеине. Сравнение целевых показателей мРНК и уровней белка из четырех отдельных образцов трех штаммов червей показало низкую изменчивость уровней мРНК с большей изменчивостью на уровне белка.

В контексте изоляции ДНК, выход сильно зависит от мастерства для восстановления облачного межфазного слоя из органического, или розовый, слой. Для улучшения растворения белков из гранул может потребоваться увеличение объема буфера повторной виолонтилизации или добавление других моющих средств, помимо SDS. Использование этого метода может помочь правильно определить случаи, когда перевод мРНК на белок не является основным и может привести к более глубокому расследованию пост-транскриптионных и пост-трансляционных механизмов регулирования при различных условиях.

В нашей лаборатории этот протокол используется для сохранения ценных и ограниченных времен основных образцов. Кроме того, я могу себе представить, что это был бы полезный протокол для принятия в циркадном ритм-поле. Реагент GCTP и растворители, используемые в изоляции РНК, представляют опасность и должны использоваться с осторожностью.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Биология выпуск 145 multiomics протеомики transcriptomics RNAseq RT-ПЦР западной помарки ДНК РНК белков C. elegans Гуанидиновые тиоцианат

Related Videos

Определение генетических профилей выражения в С. Элеганс Использование Microarray и ПЦР в реальном времени

10:27

Определение генетических профилей выражения в С. Элеганс Использование Microarray и ПЦР в реальном времени

Related Videos

23.7K Views

Экспресс-протокол для интеграции внехромосомных матриц с высокой скоростью передачи в геном C. elegans

06:33

Экспресс-протокол для интеграции внехромосомных матриц с высокой скоростью передачи в геном C. elegans

Related Videos

9.4K Views

Методы для изучения изменений в присущих агрегации белков с возрастом у нематоды Caenorhabditis elegans

11:57

Методы для изучения изменений в присущих агрегации белков с возрастом у нематоды Caenorhabditis elegans

Related Videos

9.1K Views

Очищение и анализ Caenorhabditis elegans Внеклеточные Vesicles

09:30

Очищение и анализ Caenorhabditis elegans Внеклеточные Vesicles

Related Videos

8.2K Views

Приготовление экстракта белка и ко-иммунопреципиентация от Caenorhabditis elegans

07:22

Приготовление экстракта белка и ко-иммунопреципиентация от Caenorhabditis elegans

Related Videos

9.8K Views

Выделение активного caenorhabditis elegans Nuclear Extract и восстановление для транскрипции in vitro

06:09

Выделение активного caenorhabditis elegans Nuclear Extract и восстановление для транскрипции in vitro

Related Videos

3K Views

Лазерная микродиссекция для видогностических однотканных применений

08:57

Лазерная микродиссекция для видогностических однотканных применений

Related Videos

2.7K Views

Мелкомасштабная экстракция геномной ДНК Caenorhabditis elegans

06:40

Мелкомасштабная экстракция геномной ДНК Caenorhabditis elegans

Related Videos

6.1K Views

Липидные добавки для долголетия и транскрипционного анализа генов при caenorhabditis elegans

07:25

Липидные добавки для долголетия и транскрипционного анализа генов при caenorhabditis elegans

Related Videos

2K Views

Выделение и характеристика естественной микробиоты модельной нематоды Caenorhabditis elegans

07:05

Выделение и характеристика естественной микробиоты модельной нематоды Caenorhabditis elegans

Related Videos

3.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code