October 29th, 2021
В данной статье подробно объясняется системный подход к оценке наличия микроминеральности у атлантического лосося. Методология включает в себя инструменты и модели с возрастающей биологической сложностью: (1) химический анализ видообразования, (2) растворимость in vitro, (3) исследования поглощения в клеточных линиях и (4) исследования in vivo рыб.
Мы изучали наличие растворимости микрометаллов, таких как цинковый селен, с различными химическими формами или источниками, как мы его называем, в контексте изменения состава корма. В радионуклидном наборе взвесьте приблизительно 0,2 грамма образцов корма для молотого атлантического лосося и смешайте его с радиоиндикатором цинка известной специфической активности в пробоотборной трубке объемом в пять миллилитров. Подготовьте шесть других аликвот буфера и добавьте одну из аминокислот, показанных здесь, к каждой, чтобы достичь конечной молярной концентрации в пять миллимоляров.
Добавьте пресноводный кишечный просветный буфер для подачи образца. Затем добавьте пресноводный кишечный просветный буфер к буферным аликвоткам, содержащим аминокислоты. Закройте трубки и вращайте их на ротационном спиннере со скоростью 25 оборотов в минуту в течение 30 минут.
Затем центрифугируют по 1, 157 х г в течение 10 минут, чтобы отделить растворимые и нерастворимые фракции. Используйте гамма-кассиру для измерения количества в минуту радиоиндикатора цинка в растворимых и нерастворимых фракциях. Дважды промыть клеточную линию кишечника радужной форели одним миллилитром раствора ЭДТА и выкачивать раствор после каждой промывки пипеткой.
Обработать промытые клетки 0,25% раствором трипсина. Осторожно поверните колбу под острыми углами в течение двух минут. Затем добавляют 10 миллилитров среды L-15, содержащей 5% FBS, чтобы нейтрализовать трипсин.
Используя стерильную пипетку, декантировать полученную суспензию ячейки в коническую нижнюю центрифужную трубку. Центрифуга при 130 x G в течение трех минут. Затем с помощью гемоцитометра определяют плотность собранных клеток методом ручного подсчета.
Посейте клетки на 24 пластины лунки при плотности клеток 50 000 клеток на миллилитр на лунку и инкубируйте пластины при 19 градусах Цельсия в нормальной атмосфере в течение 48 часов до экспериментов. После кормления рыб в течение 11 дней и усыпления их, соберите объединенный образец фекалий рыбы, сняв с вентрального плавника до ануса и поместите его на тарелку. Используйте шпатель для переноса кала с пластины в коническую трубку размером 50 миллилитров.
Немедленно храните образцы при 20 градусах Цельсия. В этом исследовании минеральная доступность кормов для рыб оценивается с использованием ряда дополнительных методов. Репрезентативный анализ кормов атлантического лосося с помощью метода масс-спектрометрии плазменной масс-спектрометрии с исключением размеров индуктивно-связанной плазмы дает данные о химических видах цинка, обнаруженных в растворимой фракции.
В этой фракции можно увидеть пять пиков, содержащих цинк, каждый с различной молекулярной массой. Химические вещества цинка, обнаруженные в растворимой фракции, могут иметь различные источники, потому что используемый корм содержит как морские, так и растительные ингредиенты и дополняется. Диапазон молекулярной массы этих видов предполагает, что эти соединения могут быть металлопротеинами.
В то время как растворимость дополненного цинка 65 увеличивает присутствие всех протестированных аминокислот, более высокая растворимость обнаруживается с гистидином и лизином. На поглощение апикального цинка в клетках Arteca GC значительно влияет присутствие L-Met или DL-Met в двух миллимолярных концентрациях. Кроме того, на влияние метионина на поглощение цинка отрицательно влияет присутствие МГБ.
Основным преимуществом этого протокола является то, что мы попытались объединить различные подходы в визуальных, аналитических и инвиво-исследованиях, сравнить и дополнить друг друга, когда дело доходит до изучения минеральной доступности.
Это исследование изучает доступность микроэлементов, в частности цинка, в корме атлантической лососи под различными составами. Используется комплексный метод, включающий химический анализ, тесты на растворимость, исследования клеточного поглощения и in vivo оценки.
Systematic assessment of mineral bioavailability in aquaculture feeds is critical for predictive confidence in nutritional optimization and risk-adjusted feed formulation. Integrating analytical, in vitro, and in vivo methods enables mechanistic de-risking of micronutrient delivery and supports translational continuity from discovery to applied feed development. This approach informs portfolio decisions on ingredient selection and supplementation strategies for improved fish health and growth outcomes.
This multi-method approach spans early discovery through preclinical feed evaluation, integrating analytical chemistry, cell-based assays, and in vivo validation for comprehensive mineral bioavailability assessment.