11 октября 2019 г.
Наша общая цель состоит в том, чтобы понять, как клетки чувствуют внеклеточные сигналы, которые приводят к направленного аксонального роста. Здесь мы описываем методологию светоиндуточной молекулярной адсорбции белков, используемую для производства определенных микрошаблонов внеклеточных матричных компонентов для изучения конкретных событий, которые регулируют аксон ный рост и поиск пути.
Микрошафинг является очень мощным инструментом, поскольку он позволяет изучать клеточные реакции для определения биохимических и биофизических сигналов, с которыми клетки сталкиваются в живых организмах. В отличие от других методов, описанный является более гибким для генерации шаблонов. Например, это позволяет производство градиентов и микро-шаблонов нескольких белков с высокой воспроизводимостью.
Наша группа использует LIMAP не только для изучения нейронального патового предопределения, но и для того, как другие клетки реагируют на сигналы, влияющие на пролиферацию клеток, дифференциацию и миграцию. Микро-шаблон используется для ответа на фундаментальные вопросы в клеточной биологии. Полученные знания могут быть использованы для изменения существующих устройств в регенеративной медицине, например, ремонт нерва после повреждения периферического нерва.
Начните с разработки шаблонов для шаблонов на программном обеспечении цифрового рисования. Выберите размер изображения 1, 824 пикселей в длину и 1140 пикселей в ширину. Создайте шаблон и сохраните шаблон в качестве 8-битного файла TIFF.
Перед узором, очистить и активировать поверхность с плазменным очистителем с использованием давления процесса от 1000 до 1, 300 миллиторов и мощностью 29,6 Вт в течение одной-пяти минут. Используйте блюдо из стеклянного дна с 20-миллиметровым внутренним размером и толщиной стекла от 0,16 до 0,19 миллиметра. Выберите либо шесть хорошо или одного хорошо блюдо, в зависимости от количества условий, тестируются.
Вырезать PDMS трафареты в стерильных условиях, чтобы убедиться, что они вписываются во внутреннее стекло дно хорошо. Удалите внутренние пломбы микроуэлла стерильными типсами и хорошо наклейте трафареты на стекло. Подготовь в PBS раствор PLL-PEG по 0,1 миллиграмма на миллилитр и добавьте по 20 микролитров к каждому микровлайку.
Затем инкубировать блюдо при комнатной температуре в течение одного часа. После инкубации удалите из каждой колодец 15 микролитров PLL-PEG и вымойте его пять раз 20 микролитров PBS, не давая ему высохнуть. Подготовьте один микроуэлл для создания эталонного шаблона, удалив 18 микролитров PBS из одной колодец и добавив пять микролитров фотоинициатора, оставив PBS в оставшихся микроуровлях.
Затем используйте флуоресцентный маркер, чтобы хорошо отметить пустое внутреннее стекло. Распоить значительно выше цели, и настроить объективную направленность до тех пор, пока логотип PRIMO и слоган заботиться о ваших клетках "находятся в центре внимания. Затем завехай положение координационного самолета.
Чтобы создать эталонный шаблон, визуализировать край микроуэлла с помощью фотоинициатора с помощью передаваемого света через камеру, и выбрать символ ROI из правого меню. Выберите PRIMO для загрузки желаемого шаблона шаблона, который будет проецироваться на рентабельность инвестиций в качестве конструктора. Перейдите в периферийную область микроуэлла, выберите Lock и отрегулируйте фокус на положение калибровки.
Затем выберите Play, чтобы начать фотопаттернирование эталонного шаблона. Вымойте микроуэлл эталонного шаблона три раза с помощью 20 микролитров PBS, чтобы удалить фотоинициатор. Затем добавьте 20 микролитров флуоресцентно помеченной внеклеточной матрицы, или ECM, белкового раствора.
Инкубировать блюдо при комнатной температуре в течение 10 до 20 минут, убедившись, чтобы защитить ссылку хорошо от света. После инкубации удалите 18 микролитров белкового раствора и трижды промойте колодец 20 микролитров PBS. Используйте эпифлюоресценцию микроскопа для визуализации эталонного шаблона.
Отрегулируйте фокус на краях шаблона через траекторию камеры и заметь положение в соответствии с наилучшим фокусом. Это положение будет оптимальным лазерным фокусом, используемым для последующего узора. В стерильных условиях удалите 18 микролитров PBS со всех микроуровн.
Добавьте пять микролитров фотоинициатора к каждой хорошо, и гомогенизировать путем трубопроводов вверх и вниз. При шаблоне нескольких белков в одном и том же микроуэлле загрузите все наборы желаемых шаблонов одновременно. Затем выберите количество строк, столбцов и дозы.
Сохраните конфигурацию шаблона в качестве файла в программном обеспечении. Перейдите в область, где был создан эталонный шаблон, и отрегулируйте фокус на оптимальное положение. Затем выберите Play, чтобы инициировать фотопаттернирование.
Конструкционые блоки превращаются из красного в синий по мере завершения фотопаттернинга. Удалите фотоинициатор из микровелл, мыть их три раза с 20 микролитров PBS. После последней стирки удалите 18 микролитров PBS с каждого микроуэлла и добавьте 20 микролитров белкового раствора ECM.
Инкубировать блюдо при комнатной температуре от 20 до 30 минут, убедившись, чтобы защитить его от света. Затем удалите 15 микролитров белкового раствора ECM и трижды промойте микролагов с помощью 20 микролитров PBS. Чтобы предотвратить перекрестное связывание, добавьте 20 микролитров PLL-PEG, или BSA, в микроуэллы и инкубировать блюдо при комнатной температуре в течение одного часа, в темноте.
Затем удалите 15 микролитров блокирующего агента и трижды помойте все микролагов 20 микролитров PBS. Удалите 18 микролитров PBS и добавьте 5 микролитров фотоинициатора к каждому микроуэллу, гарантируя, что фотоинициатор однороден на всей поверхности микроуровн. Перейдите на первый микроуровн и загрузите сохраненную ранее конфигурацию шаблона.
Затем выберите действия, которые будут узорчаты для второго раунда фотопаттернинга, убедившись, что выберите действия из первого раунда. После фотопаттернинга удалите PLPP, стирая PBS. Затем инкубировать в течение 20 минут со вторым раствором белка ECM, и мыть микроуэллы три раза с 20 микролитров PBS.
Используйте эпифлюоресценцию микроскопа для визуализации и изображения печатных моделей. Когда готовы пластины клеток, добавить один миллилитр среды с клетками к внутреннему стеклу хорошо, убедившись, чтобы покрыть все микроуровн. И поместите блюдо культуры в 37 градусов по Цельсию, и 5%углекислого газа инкубатора.
Для обеспечения того, чтобы генерируемые узоры были точным представлением шаблона, измерения интенсивности флуоресценции получены вдоль полос и из соответствующей фоновой области над каждой полосой. Воспроизводимые определенные микро-шаблоны достигаются в диапазоне от 20 до 2 микрометров в ширину, но эффект края можно наблюдать при печати функций 20 микрометров или шире. Определенные концентрации белка получают либо инкубации с различной концентрацией белка, или изменение лазерной дозы, которая используется для расщепления антиклейной пленки.
Интенсивность лазера пропорциональна уровню серой шкалы шаблона, генерируя градиенты УФ-освещения. Измерение профиля интенсивности флуоресценции по градиентной полосе линейно в шаблоне шаблона и в генерируемом градиентном рисунке. Этот протокол может быть использован для создания микро-шаблонов с несколькими белками в одном микроуэлле, таких как поперечные узоры с горизонтальными полосами фибронектина и вертикальные полосы ламинина.
Но блокирующий шаг необходим для предотвращения перекрестного связывания белков. Генерируемые поперечные модели могут быть впоследствии использованы для клеточных анализов с нейрональными клеточными линиями, или CAD-клетки, или первичные нейроны, крысы DRGs. При выполнении этого протокола, наиболее важные аспекты, чтобы помнить делают надлежащую калибровку системы, не давая microwells высыхания во время нескольких шагов стирки, и с использованием правильных параметров для инкубации белка и блокирования.
Анализ поведения клеток обычно включает микроскопию, такую как флуоресценция, промежуток времени, AFM. Дальнейшая характеристика может включать другие биохимические методы, такие как профилирование экспрессии генов.
Данное исследование направлено на выявление механизмов, с помощью которых клетки воспринимают внеклеточные сигналы, стимулирующие рост аксонов. Используя метод светоиндуцированной молекулярной адсорбции белков (LIMAP), авторы работы сосредоточились на создании определенных микропаттернов из компонентов внеклеточного матрикса для изучения процессов, связанных с прорастанием и поиском пути аксонами.
Метод светоиндуцированной молекулярной адсорбции белков (LIMAP) с использованием системы PRIMO позволяет осуществлять точное микропаттернирование белков внеклеточного матрикса, что обеспечивает возможность проведения высокопроизводительного анализа взаимодействий между клетками и ВКМ. Данная возможность имеет решающее значение для снижения рисков при проверке гипотез на ранних этапах исследований и стандартизации релевантных для конкретных заболеваний моделей in vitro. Воспроизводимость и гибкость этого метода напрямую влияют на прогностическую достоверность и непрерывность трансляционного процесса в цепочках биофармацевтических исследований и разработок.
Микропаттернирование LIMAP интегрируется в континуум от этапа открытия до доклинических исследований, позволяя проводить клеточные анализы на основе выдвинутых гипотез и поддерживая принятие решений по идентификации ведущих соединений.