9,270 Views
•
08:06 min
•
October 25, 2019
DOI:
Синтез белка без клеток является новой технологией в системах и синтетической биологии для производства белков в пробирке. Системы синтеза белка без клеток не имеют клеточной стенки, поэтому у нас есть прямой доступ к метаболитам. В этом протоколе мы количественно абсолютные измерения 40 метаболитов, участвующих в центральном метаболизме углерода и энергии, что позволяет нам охарактеризовать метаболизм без клеток.
Протокол опирается на метастазирование соединений с анилином, что позволяет лучшее разделение и более высокое разрешение масс-спектрометрии. Кроме того, мы используем внутренние стандарты с изотопным мы маркировать анилин, для абсолютной количественной оценки метаболитов. Помеченные метаболиты coelute, который устраняет последствия подавления железа.
Позволяет точной количественной оценки соединений. Работая в капоте, объедините 550 микролитров анилина с 337,5 микролитров воды класса LC-MS. И 112,5 микролитров 12 молярной соляной кислоты в центрифуге трубки.
Vortex хорошо, и хранить шесть молярных анилинового раствора при рН 4,5 и 4 градуса по Цельсию. Для приготовления шестимоляного углерод-13 анилинового раствора при рН 4.5 объединить 250 миллиграммов анилина углерода-13 со 132 микролитров воды и 44 микролитера 12 молирной соляной кислоты. Vortex хорошо, и хранить при четырех градусах по Цельсию.
Чтобы подготовить 200 миллиграммов на миллилитровый раствор EDC, растворите два миллиграмма EDC в 10 микролитров воды для каждого образца, который будет помечен. И вихрь хорошо. Для подготовки образцов, утолить и осадок белков в клеточной реакции синтеза белка, добавив равный объем ледяного 100% этанола к клеточной реакции синтеза.
Центрифуга образца на 12000 раз г, в течение 15 минут при четырех градусах по Цельсию. Перенесите супернатант образца в новую центрифугу. Чтобы обозначить образец раствором анилина углерод-12, перенесите шесть микролитров образца в новую центрифугную трубку и доввелите объем до 50 микролитров с водой.
Добавьте 5 микролитров по 200 миллиграммов на миллилитр раствора EDC, хорошо смешайте раствор анилина углерода-12 и перенесите в трубку 5 микролитров. Вихрь реакции с нежной тряски в течение двух часов при комнатной температуре. Через два часа снимите трубки со шейкера и перенесите их в дымовой капот.
Добавьте 1,5 микролитера триэтиламина к каждой реакции, чтобы остановить реакцию анилина пометки и стабилизировать соединения. Центрифуга при 13 500 раз г в течение трех минут. И спасти супернатанта.
Для маркировки внутренних стандартов раствором анилина углерод-13 разбавляют внутренний раствор бульона до 80 микромолеров с окончательным объемом 50 микролитров. Добавьте пять микролитров раствора EDC на миллилитр 200 миллилитров и пять микролитров хорошо смешанного раствора анилина углерод-13. Вихрь реакции с нежной тряски в течение двух часов при комнатной температуре.
Через два часа снимите трубки со шейкера и добавьте 1,5 микролитров триэтиламина в реакцию в дымовом капюшоне. Центрифуга при 13 500 раз г в течение трех минут и сохранить супернатант. Чтобы угадать помеченный внутренний стандарт и помеченный образец, смешайте 25 микролитров каждого в флаконе автозамперов.
И проанализируйте по процедуре LC-MS. Затем, чтобы создать стандартную кривую для негермета метаболитов, во-первых, разбавить фондовый раствор нетегами метаболитов в различных концентрациях, с объемом 50 микролитров. Добавьте пять микролитров раствора 200 миллиграммов на миллилитр EDC и пять микролитров анилинового раствора углерода-12 в каждую концентрацию.
Вихрь реакции с нежной тряски в течение двух часов при комнатной температуре. И приступить к лечению триэтиламином. И центробежка перед анализом LC-MS, как раньше.
После инициализации LC-MS, в соответствии с инструкциями производителя, введать пять микролитров образца в колонку. И приобрести соответствующие м над z ионных интенсивностей для углерода-12 анилин помечены образца. Затем снова ввилите пять микролитров одного и того же образца.
И приобрести м над z ионных интенсивностей для углерода-13 анилин помечены стандартами. В этом протоколе были количественно определены метаболиты, выражаюющие зеленый флуоресцентный белок в синтезе белка на основе E.coli. 40 метаболитов, участвующих в центральном метаболизме углерода и энергии, были обнаружены и количественно с использованием внутренних стандартов.
В то время как стандартная кривая для пяти метаболитов, которые не были помечены анилином, также была разработана. Разнообразные метаболиты, участвующие в этих путях, были классом фосфорилированных сахаров, фосфорно-карбоксиловых кислот, карбоксиловых кислот, нуклеотидов и софадов. Кроме того, метод позволил разделение структурных пар изомеров, таких как глюкоза-шесть фосфатов, и фруктоза-шесть фосфатов в одном LC-MS перспективе.
Наиболее важным шагом является маркировка де-белкового образца анилином. Поскольку анилиновое решение отделяется, важно работать быстро и эффективно, сохраняя при этом хорошие методы безопасности. Этот метод помогает охарактеризовать метаболизм без клеток с количественной оценкой 40 метаболитов.
Но, дополнительные соединения находятся в клеточной смеси, такие как аминокислоты, которые могут быть количественно. Это помогло бы в обеспечении более всестороннего взгляда на метаболизм без клеток. Этот метод показал, что безклеточные системы имеют сложные метаболизмы, все еще работающие, которые потенциально могут быть использованы для повышения энергоэффективности и урожайности углерода.
Протокол опирается на пометку соединений анилином с использованием EDC в качестве катализатора. Оба этих реагента опасны и должны использоваться с осторожностью.
Здесь мы представляем надежный протокол для количественной оценки 40 соединений, участвующих в центральном метаболизме углерода и энергии в реакции синтеза белка без клеток. Смесь синтеза без клеток производная с анилином для эффективного разделения с использованием обратной фазы жидкой хроматографии, а затем количественно масс-спектрометрии с использованием изотопно обозначенных внутренних стандартов.
11:53
Quantitative Proteomics Using Reductive Dimethylation for Stable Isotope Labeling
Видео по теме
16256 Views
10:44
Mass Spectrometry and Luminogenic-based Approaches to Characterize Phase I Metabolic Competency of In Vitro Cell Cultures
Видео по теме
9857 Views
09:26
Cellular Lipid Extraction for Targeted Stable Isotope Dilution Liquid Chromatography-Mass Spectrometry Analysis
Видео по теме
16118 Views
10:37
Deep Proteome Profiling by Isobaric Labeling, Extensive Liquid Chromatography, Mass Spectrometry, and Software-assisted Quantification
Видео по теме
11998 Views
11:09
An HS-MRM Assay for the Quantification of Host-cell Proteins in Protein Biopharmaceuticals by Liquid Chromatography Ion Mobility QTOF Mass Spectrometry
Видео по теме
10149 Views
07:25
Quantitative Metabolomics of Saccharomyces Cerevisiae Using Liquid Chromatography Coupled with Tandem Mass Spectrometry
Видео по теме
4449 Views
08:52
Measurement of Protein Turnover Rates in Senescent and Non-Dividing Cultured Cells with Metabolic Labeling and Mass Spectrometry
Видео по теме
3536 Views
06:31
"Cell Surface Capture" Workflow for Label-Free Quantification of the Cell Surface Proteome
Видео по теме
2329 Views
14:42
Liquid Chromatography Coupled to Refractive Index or Mass Spectrometric Detection for Metabolite Profiling in Lysate-based Cell-free Systems
Видео по теме
4833 Views
09:04
Selected Reaction Monitoring Mass Spectrometry for Absolute Protein Quantification
Видео по теме
17079 Views
Read Article
Цитировать это СТАТЬЯ
Vilkhovoy, M., Dai, D., Vadhin, S., Adhikari, A., Varner, J. D. Absolute Quantification of Cell-Free Protein Synthesis Metabolism by Reversed-Phase Liquid Chromatography-Mass Spectrometry. J. Vis. Exp. (152), e60329, doi:10.3791/60329 (2019).
Copy