3 февраля 2021 г.
Приведены подробные инструкции по созданию модульного флуориметра с открытым исходным кодом, совместимого со многими недорогими нагревателями для выполнения количественного усиления изотермических нуклеиновых кислот в режиме реального времени.
Этот метод позволяет людям без опыта в области электроники создавать такие инструменты, как этот флуориметр для амплификации и обнаружения изотермических нуклеиновых кислот, что имеет решающее значение для молекулярной диагностики. Основным преимуществом данной методики является то, что система может быть полностью собрана из коммерчески доступных материалов и программного обеспечения с открытым исходным кодом при низких затратах. Этот флуориметр может использоваться с несколькими изотермическими методами амплификации.
Это важно, поскольку методы изотермической амплификации все чаще используются для выявления широкого спектра инфекционных и наследственных заболеваний. Чтобы собрать оптический корпус, поместите 3/16-дюймовую резьбовую вставку длиной 4-40 в отверстие поверх нижней части корпуса оптики STL и поместите резьбовую вставку длиной 1/4 дюйма 4-40 во все другие отверстия детали. Вставьте центральную испытательную плату в верхнюю полость корпуса с пятью контактами, обращенными к верхней и ближайшей к центральной оси устройства, и закрепите испытательную плату винтом длиной 3/16 дюйма 4-40.
Поместите один из объективов с фокусным расстоянием 20 миллиметров в секцию под центральной испытательной доской выпуклой стороной, обращенной к нижней части устройства и в стороне от испытательной доски. Чтобы создать первую конфигурацию, поместите фильтр длинных проходов в следующую секцию под объективом с фокусным расстоянием 20 миллиметров. Чтобы создать вторую конфигурацию, поместите две желтые пленки эмиссионного фильтра в секцию под объективом.
Чтобы создать первую конфигурацию, поместите дихроичное зеркало в диагональную секцию вблизи центра оболочки, соблюдая ориентацию фильтра, указанную производителем. Чтобы создать вторую конфигурацию, поместите светоотвод в диагональную секцию. Поместите второй объектив с фокусным расстоянием 20 миллиметров в секцию под дихроичным зеркалом или делителя луча в зависимости от конфигурации, причем выпуклая сторона направлена к верхней части устройства.
Чтобы создать первую конфигурацию, поместите фильтр возбуждения в секцию справа от дихроичного зеркала, убедившись, что стрелка указывает на дихроичное зеркало. Чтобы создать вторую конфигурацию, поместите одну синюю фольгу фильтра возбуждения в секцию справа от светоотвотрателя. Поместите объектив с 15-миллиметровым фокусным расстоянием справа от фильтра возбуждения выпуклой стороной лицом к дихроичному зеркалу.
И поместите светодиод в оставшуюся часть печати, а светодиод будет направлен к дихроичному зеркалу или разветвителю луча, в зависимости от конфигурации. Убедитесь, что два провода, ведущие от светодиода, вставлены в каналы углубления, чтобы печать плотно закрылась. И повторите настройку для другой стороны 3D-печати.
Затем поместите экструдированные части верхней половины оболочки в утопленные канавки нижней половины оболочки, чтобы закрыть пустую сторону куска оптическими компонентами. И закрепите детали вместе с помощью винтов длиной 3/8 дюйма 4-40. Чтобы собрать электронику и сенсорный экран, подключите две мини-макетные платы и поместите микроконтроллер в одну из макетных плат, гарантируя, что порт micro-USB микроконтроллера обращен наружу.
Чтобы подключить светодиодную модуляцию, подключите CTL-контакт драйвера LED+к цифровому контакту микроконтроллера. И LED-контакт светодиодного драйвера к GND-контакту микроконтроллера. Снимите пластиковые крышки на задней части макетных плат и прижмите клеевую подложку макетных плат к 3D-печатной части, чтобы прикрепить комбинированные макетные платы к внутренней части задней части держателя ЖК-экрана STL, напечатанного на STL.
Закрепите держатель ЖК-экрана с помощью собранных макетных плат внутри оптического корпуса с помощью винтов длиной 1 дюйм 4-40. Чтобы подключить светодиодный источник питания, подключите led-положительный контакт светодиодного драйвера к положительному проводу первого светодиода. И подключите отрицательный провод первого светодиода к положительному проводу второго светодиода на макетной плате.
Подключите отрицательный провод второго светодиода к LED-контакту светодиодного драйвера. Для подключения светодиодного блока питания используйте бочковой разъем к 2-контактному адаптеру для подключения положительного и отрицательного проводов 10-вольтового блока питания к VIN+ и VIN-контактам светодиодного драйвера соответственно. Чтобы подключить блок питания тестовой платы датчика и передачу данных, используйте 4-контактный провод от гнезда к мужской перемычке для подключения контактов SCK, SDA, VDUT и GND на платах тестирования датчиков light-to-digital к мини-макетной плате через зазор в правом верхнем углу отпечатка держателя ЖК-дисплея.
На макетной плате убедитесь, что 3,3-вольтовый контакт микроконтроллера и контакт VDUT обеих тестовых плат, GND-контакт микроконтроллера и GND-контакт обеих тестовых плат, аналоговый 4-контактный микроконтроллер и контакт SDA обеих тестовых плат и аналоговый 5-контактный микроконтроллер , и контакт SCK обеих испытательных плат соединен. Используйте четыре винта M2.5 для крепления одноплатного компьютера к держателю ЖК-экрана, при этом порты HDMI и адаптера питания одноплатного компьютера направлены вверх, а одноплатный компьютер сосредоточен на 3D-печатной детали. Затем подключите сенсорный дисплей к одноматному компьютеру в соответствии с инструкциями сенсорного экрана.
И подключите порт HDMI одноплатного компьютера к порту HDMI сенсорного экрана. Для записи данных флуоресценции в режиме реального времени после того, как тепловой блок был включен и достиг соответствующей температуры, включите одноплатный компьютер и используйте кабель micro-USB-USB для подключения одноплатного компьютера к микроконтроллеру. Откройте предоставленный скрипт Python на сенсорном экране и измените время измерения.
Измените путь к выходному файлу переменной на имя файла данных, создаваемого программой. И измените переменные последовательного порта на нужные значения. Поместите в тепловой блок две трубки ПЦР, содержащие реакции, которые необходимо контролировать.
И поместите флуориметр на тепловой блок с трубками ПЦР, центрированными между четырьмя колышками, выдавливающимися из каждого оптического канала. После подтверждения того, что 3D-печатный флуориметр подключен, подключите адаптер питания для светодиодов и запустите программу Python. На ЖК-экране появится графический пользовательский интерфейс для измерения флуоресценции в режиме реального времени в обеих ПЦР-трубках.
В конце эксперимента просмотрите измерения и файлы выходных данных, сохраненные в заданном пользователем расположении. После сборки производительность флуориметра может быть проверена путем измерения флуоресценции из серии разбавления красителя FITC. В этом репрезентативном анализе оба канала флуориметра показали линейный отклик в желаемом диапазоне.
Здесь показаны исходные вычитаемые флуоресценции положительной и отрицательной реакции управления армификацией полимеразы рекомбиназы и отрицательные реакции управления стандартного коммерческого комплекта, измеренные на второй конфигурации флуориметра. Измерения флуоресценции в режиме реального времени пользовательской реакции изотермической амплификации с петлевой обратной транскрипцией для РНК SARS-COVID-2 на первой конфигурации флуориметра показывают, что амплификация происходит, как и ожидалось, в клинически значимом диапазоне числа копий РНК. В то время, когда глобальные цепочки поставок очень напряжены, оборудование с открытым исходным кодом, такое как этот флуориметр, может помочь нам уменьшить некоторые неравенства в отношении здоровья, связанные с пандемией.
Эта статья предоставляет подробные инструкции по сборке открытого, модульного флуориметра, предназначенного для реального времени, количественного изотермического амплифицирования нуклеиновых кислот. Устройство совместимо с различными недорогими нагревателями, что делает его доступным для молекулярной диагностики.
This open-source fluorimeter addresses a critical bottleneck in molecular diagnostics by enabling real-time, quantitative isothermal nucleic acid amplification at low cost. By eliminating dependence on expensive thermocyclers with integrated fluorescence detection, the system supports scalable deployment in resource-constrained environments. Its modular design and compatibility with multiple amplification methods enhance translational readiness and reduce technical barriers to assay development and validation.
The fluorimeter fits within the discovery continuum from early target validation through lead identification and preclinical evaluation, particularly for nucleic acid-targeted therapeutics and diagnostics.