20 мая 2021 г.
Этот протокол подробно описывает все этапы, связанные с получением гемопоэтических прародителей CD34+ на основе лейкофильтра и их дифференцировкой in vitro и созреванием в проплателетоносные мегакариоциты, способные высвобождать тромбоциты в культуральная среда. Эта процедура полезна для углубленного анализа клеточных и молекулярных механизмов, контролирующих мегакариопоезис.
Этот протокол предлагает простой метод получения человеческих кроветворных прародителей и индуцирования их дифференцировки в мегакариоциты. Он может служить основой для лучшего понимания мегакариопоэза Этот метод использует источник, но предлагает преимущество в том, что он доступен и обилен для лабораторных исследований в области кроветворения. Этот метод используется для лучшего понимания мегакариопоезиса для клетки, которая будет использоваться в терапии, они должны быть подготовлены в условиях GMP, что в настоящее время не так.
Понимание шагов, включая коллекцию PBMC, может быть полностью завершено только с визуальной демонстрацией. Перед началом эксперимента подключите фильтр лейкоредукции к пустому 600-миллилитровой передаточной сумке и к набору трубок. В шкафу биологической безопасности впрыскивайте 25 миллилитров фильтрованного буфера элюдения на фильтр лейкоредукции в пустой мешок и используйте шприц объемом 30 миллилитров, чтобы осторожно аспирировать содержимое пакета через фильтр.
Переведите собранные эритроциты в новую 50-миллилитровую трубку и разбавьте клеточную суспензию вдвое 2%-ным декстраном. Хорошо перемешайте, чтобы агрегировать клетки крови и дать клеткам отстой в течение 30 минут при комнатной температуре. Когда эритроциты осядут, перенесите супернатант в 50-миллилитровую трубку и заполните трубку двумя миллимолярными растворами PBS EDTA.
Аккуратно накладывают половину супернатанта на 25 миллилитров среды градиента плотности в каждой из двух 50 миллилитровых трубок, не нарушая поверхность градиента, и разделяют ячейки центрифугированием градиента плотности. Используйте одноразовую пипетку для переноса ячеек с каждого интерфейса на новую 50-миллилитровую трубку. Промывайте клетки два раза по 50 миллилитров двух миллимоляров PBS EDTA за одну промывку.
После второй промывки повторно суспендируют гранулы в одном объеме 50 миллилитров свежего PBS EDTA для подсчета. Здесь можно остановить процедуру, поддерживая собранные клетки под перемешиванием при четырех градусах Цельсия в течение ночи. Для селекции CD34 + клеток определите количество клеток и соберите клетки путем центрифугирования и повторно суспендируем клеточную гранулу в 300 микролитрах двух миллимолярных PBS EDTA на 10-восьмую клетку.
Добавьте соответствующий объем блокирующего рецептор FC реагента и 50 микролитров CD34 микро-шариков на 10 к восьмой клетке. Через 30 минут при четырех градусах Цельсия промыть клетки двумя миллимолярами PBS EDTA и повторно суспендировать гранулу в 500 микролитров свежего двух миллимолярного PBS EDTA, на 10 до восьми клеток. Увлажните и соответствующим образом размер магнитной колонки с помощью PBS EDTA, а затем добавьте образец в колонку.
Промыть колонку два раза тремя миллилитрами двух миллимоляров PBS EDTA за одну промывку. Прежде чем ускользнуть от CD34+ клеток, с двумя пятимиллилитровыми объемами двух миллимоляров PBS EDTA на элюирование. Чтобы оценить чистоту выбранных клеток магнитной бусины, добавьте два микролитра соответствующего человеческого антитела против CD34 к 100-микролитровой аликвоте изолированных клеток и хорошо перемешайте перед инкубацией в течение 15 минут при четырех градусах Цельсия.
После инкубации промыть клетки в PBS и повторно суспендировали гранулу в 200 микролитрах PBS для анализа чистоты образца клетки методом проточной цитометрии. После подсчета соберите CD34+ клетки путем центрифугирования и немедленно повторно суспендируют гранулу в холодном растворе один до плотности от 10 до шести клеток на миллилитр, прежде чем быстро добавить клеточную суспензию в холодный раствор два. Затем немедленно поместите криотрубку в морозильную камеру при температуре минус 80 градусов цельсия на 24 часа, прежде чем перенести криотрубку в хранилище жидкого азота.
В этом репрезентативном исследовании клетки были восстановлены путем лейкорезуктной фильтрации, как показано с приблизительной жизнеспособностью 95%. После магнитного отбора шариков была получена более 90% чистой популяции CD34 + клеток. Пролиферация клеток обычно уменьшается после недели культивации, но без значительных изменений жизнеспособности клеток.
К седьмому дню клетки CD34 + должны начать экспрессить CD41, специфический и ранний маркер или для развития мегакариоцитов и тромбоцитов. К 10-му дню большинство клеток в культуре обычно развиваются в зрелые CD41,экспрессирующие мегакариоциты. К 13-му дню расширение тромбоцитов мегакариоцитов и высвобождение тромбоцитов можно наблюдать с помощью световой микроскопии.
Общее количество CD41, CD42, 8 положительных тромбоцитов, высвобождаемых в культуру, затем может быть количественно определено с использованием калиброванного числа флуоресцентных шариков. Этот метод прокладывает путь для усиления основных механизмов мегакариопоэсиса и для увеличения урожайности тромбоцитов в визуальном виде. Даже если этот метод кажется утомительным, он очень прост, нужно просто наберитесь терпения и заранее подготовьте все регионы.
Несмотря на то, что мы критически говорим о мегакариопоэзе, мы получаем клетки CD42, которые могут быть использованы в кроветворных путях.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлен подробный оптимизированный протокол выделения гемопоэтических стволовых клеток (CD34+) человека из лейкофильтров, которые обычно утилизируются после подготовки крови к трансфузии. Этот протокол позволяет осуществлять дифференцировку данных предшественников in vitro в зрелые мегакариоциты, способные к формированию протромбоцитарных отростков и высвобождению тромбоцитов, что представляет собой ценный инструмент для изучения биогенеза тромбоцитов и мегакариопоэза.
Использование CD34+ клеток из фильтров для лейкодеплеции обеспечивает масштабируемый и этически простой источник для изучения дифференцировки мегакариоцитов и образования тромбоцитов in vitro. Этот подход устраняет основные трудности на ранних этапах исследований, позволяя проводить надежный механистический анализ биогенеза тромбоцитов без зависимости от костного мозга или пуповинной крови. Данный протокол позволяет с высокой степенью уверенности проводить валидацию мишеней и фармакологическую оценку в рамках портфелей НИОКР в области гематологии.
Данный протокол интегрирован в непрерывный процесс исследований: от ранних механистических изысканий через разработку методов анализа до доклинической валидации в области гематологических исследований.