RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/63047-v
Christian Friess1, Magdalena Götz1,2,3, Jacob Kjell1,2,4
1Division of Physiological Genomics, Biomedical Center,Ludwig Maximilian University of Munich, 2Institute for Stem Cell Research,Helmholtz Zentrum München, 3SYNERGY, Excellence Cluster Systems Neurology,University of Munich, 4Department of Clinical Neuroscience,Karolinska Institutet
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This study presents a cryo-section-dissection method for the precise and efficient preparation of the murine ventricular neurogenic niche, enabling deep quantitative proteome analysis. By minimizing tissue perturbation, this technique is particularly suitable for exploring the molecular microenvironment across various biological contexts, such as health and disease.
Крио-секция-рассечение-рассечение позволяет свежей, замороженной подготовке самой большой нейрогенной ниши в мышином мозге для глубокого количественного анализа протеома. Метод является точным, эффективным и вызывает минимальное возмущение тканей. Поэтому он идеально подходит для изучения молекулярного микроокружения этой ниши, а также других органов, регионов и видов.
Наш метод рассечения позволяет точно выделить нейрогенную нишу желудочков и поэтому хорошо подходит для изучения молекулярной микросреды этой ниши. Основным преимуществом этого метода рассечения является то, что он точен, эффективен и вызывает минимальное возмущение тканей, но при этом совместим с масс-спектрометрией для анализа протеомов. В этом протоколе мы извлекаем нейрогенную нишу желудочка из мозга мыши, но этот метод также может быть применен к другим видам и в различных состояниях здоровья и болезни.
Техника может потребовать некоторой подготовки. особенно при скальпельных разрезах при обнажении и извлечении желудочковой нейрогенной ниши. После усыпления 8-10-недельной мыши C57 black/6 мужского пола, извлеките мозг путем ручного рассечения и поместите его в культуральную посуду, содержащую ледяную среду для рассечения.
Используя скальпель, удалите обонятельную луковицу, сделав прямой корональный разрез между обонятельной луковицей и внутренним полюсом коры. Затем удалите передний полюс коры, сделав корональный разрез, гарантируя, что боковые желудочки видны в корональной плоскости. Затем с помощью ножниц откройте оба боковых желудочка сверху, начиная с сагиттального сечения от кортикальной поверхности до просвета желудочков.
Удлините этот разрез С-образным способом после сгибания желудочков. Далее соедините каудальные концы левого и правого сагиттального разреза, используя дополнительный корональный разрез. Далее удаляют кору и мозолистое тело, покрывающие медиальные стенки желудочков.
Если ткань прикреплена к медиальным желудочковым стенкам, сделайте дополнительные разрезы или поднимите кору и мозолистое тело ножницами, чтобы выбить ткань. Затем, используя щипцы, удаляют кору и мозолистое тело, покрывающие боковые желудочки. С помощью щипцов аккуратно раздвиньте стенки желудочков и удалите сосудистое сплетение.
Затем положите мозг на стеклянную горку и поместите горку поверх сухого льда, чтобы заморозить мозг стенками желудочков в открытой конфигурации. Перед разделением убедитесь, что мозг прикреплен к пластине прикрепления криостата в заднем мозге с помощью встраивающей среды для замороженных тканей. Кроме того, убедитесь, что никакая среда встраивания не вступает в контакт с передним мозгом, особенно в желудочках.
Затем отрежьте корональные участки мозга толщиной от 50 до 100 микрометров до конца бокового желудочка и установите участки на стеклянные слайды. Поместите стеклянные слайды на сухой лед под рассеченный микроскоп. Поднимите ломтики из сухого льда на 15-30 секунд, чтобы добиться кратковременного, неполного оттаивания, сделав компактный миелин полосатого тела наблюдаемым в виде плотных белых точек.
Затем, используя предварительно охлажденный скальпель, отделяют субэпендимальную зону от соседнего полосатого тела и переносят его целым куском или разрезанным на две-четыре части в микроцентрифужную трубку с помощью тупого края охлажденного скальпеля. Затем проделайте то же самое для медиальной желудочковой зоны. Миелин-ассоциированные, гликопротеин-положительные внутренние капсулы полосатого тела были идентифицированы во всех образцах, но редко в крио-секционно-диссекционных образцах с помощью иммуногистохимии.
Стриатальное загрязнение в образцах wholemount было подтверждено обогащением миелиновых белков в субэпендимальной зоне по сравнению с образцами сомато-сенсорной коры. Напротив, сравнение этих белков-маркеров миелина в образцах крио-секции-диссекции не показало существенных различий в субэпендимальной зоне и образцах сомато-сенсорной коры. При сравнении результатов масс-спектрометрии между криосекцией-рассечением и микродиссекцией лазерного захвата микродиссекция лазерного захвата дала примерно вдвое меньше количественных белков, хотя время сбора тканей было примерно в два раза больше.
Принципиальный компонентный анализ показывает, что существует большая вариабельность среди образцов, собранных с помощью микродиссекции лазерного захвата, изображенных в виде квадратов, чем среди образцов, собранных с помощью криосекции-рассечения, изображенных в виде кругов. Тест на обогащение 2D-аннотации между криосекцией-рассечением и микродиссекцией лазерного захвата для субэпендимальных и медиальных эпендимальных зон выявил аналогичное обогащение как в методах, так и в областях для белков, связанных с внеклеточным пространством. Криосекция-диссекция обеспечивает более надежную идентификацию и количественную оценку нейрогенеза в субэпендимальных зонально-ассоциированных белках внеклеточного матрикса.
В случае тенасцина-С только криосекция-диссекция отображала обогащение в субэпендимальной зоне по сравнению с медиальной эпендимальной зоной. Следите за тем, чтобы участки мозга на слайдах не стали полностью размороженными. В целом, хорошо практиковать этапы процедуры рассечения для получения последовательного результата.
Метод рассечения также может быть использован с другими методами анализа белка, которые могут легко обнаружить очень низкие обильные белки, такие как факторы роста и цитокины. Этот метод микродиссекции позволил нам идентифицировать новый регулятор нейрогенеза, и мы считаем, что он позволит другим идентифицировать другие регуляторы нейрогенеза в различных контекстах.
Related Videos
09:54
Related Videos
26.5K Views
10:51
Related Videos
16.8K Views
09:24
Related Videos
7.9K Views
06:54
Related Videos
11.8K Views
09:58
Related Videos
4K Views
09:25
Related Videos
7.2K Views
07:06
Related Videos
22.2K Views
11:45
Related Videos
10.2K Views
06:45
Related Videos
5.5K Views
08:57
Related Videos
1.3K Views