RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/63391-v
Brook M. Jensen1, Rachel A. Althoff1, Sarah E. Rydberg1, Emma N. Royster1, Alden Estep2, Silvie Huijben1
1Center for Evolution and Medicine, School of Life Sciences,Arizona State University, 2United States Department of Agriculture, Agricultural Research Service, Center for Medical, Agricultural and Veterinary Entomology
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This study investigates a topical application bioassay for measuring insecticide susceptibility in mosquitoes and fruit flies. It highlights the methodology's advantages, including lower variability and the ability to calculate mass-relativized lethal doses.
Мы описываем методологию и важность местного применения биоанализа для измерения восприимчивости к инсектицидам у комаров и плодовых мух. Представленный анализ является высокопроизводительным, использует массу насекомых, что позволяет рассчитать массу релятивизированной смертельной дозы вместо концентрации и, вероятно, имеет более низкую изменчивость, чем другие подобные методы.
При непосредственном нанесении инсектицида на насекомое, а не через поверхностный контакт, существует минимальное изменение воздействия инсектицидов, и это позволяет нам более точно измерять профиль восприимчивости популяций комаров. Основным преимуществом данного метода является то, что он позволяет рассчитывать массово-релятивизированные летальные дозы инсектицида, а не летальные концентрации, что значительно улучшает сравнение коэффициентов резистентности. Будьте осторожны, чтобы правильно хранить инсектициды, избегать загрязнения ваших инструментов и убедитесь, что части шприца находятся в хорошей форме.
Это поможет вам получить последовательные результаты. Для начала извлеките необходимые растворы инсектицидов из морозильной камеры. Немедленно вихрьте раствор или инвертируйте пять раз и поместите его в светостойкий контейнер при комнатной температуре, чтобы инсектициды нагрелись до комнатной температуры перед использованием.
Установите пять микроцентрифужных трубок с 0,5 миллилитрами ацетона каждая. Наполните ствол шприца полностью ацетоном из первой трубки. Затем выбросьте ацетон в контейнер для отходов, быстро надавив на плунжер, и повторите еще четыре раза, чтобы завершить в общей сложности пять промывок ацетона из той же ацетоновой аликвоты.
Затем заполните ствол шприца полностью воздухом и выбросьте воздух и потенциальные остатки ацетона в контейнер для отходов. Повторите еще два раза, чтобы завершить три промывки воздухом. Создайте воздушный карман внутри ствола между плунжером шприца и верхней частью иглы, подтянув плунжер примерно на пять миллиметров в ствол.
Пометьте пластиковые стаканчики случайным идентификатором для оценки смертности слепых. Используя аспиратор, приводимый в действие всасыванием от ингаляции, аспирируйте нужное количество трех-пятидневных взрослых комаров. Поместите наконечник аспиратора в трубку с хлопком, обернутым вокруг наконечника.
Осторожно выдохните и постучите по аспиратору, чтобы перенести комаров в коническую трубку. Используйте вату, чтобы заткнуть трубку, когда наконечник аспиратора удален, а затем крышкой крышки. Ненадолго сбивайте комаров в трубках, помещая их минимум на 10 минут при четырех градусах Цельсия или закапывая под лед в лоток для льда.
Перенесите сбитых комаров в палатку для обработки насекомых. Осторожно выложите комаров на пластиковый лоток, помещенный на лед, и вылейте около 50 комаров за раз, чтобы каждый из них коснулся прохладного лотка под ним и оставался сбитым с ног. Сортируйте комаров по полу, осторожно подбирая их за ноги или крылья щипцами, а затем помещая каждый пол в отдельную чашку для хранения, и останавливайтесь, когда желаемое число будет достигнуто.
Во время сортировки удалите всех комаров, которые травмированы или являются очень большими или маленькими. Чтобы записать вес чашки комара, поместите пустую чашку с чашкой Петри в качестве крышки на весы и нанесите на весы тару. Вылейте комаров в контейнер и поместите крышку сверху.
Поместите контейнер на весы и запишите окончательный вес вместе с количеством комаров. Немедленно поместите чашку образцов обратно на лед, чтобы держать их обездвиженными, пока все чашки образца не будут взвешены. Разделите подготовленных комаров на пять-10 отдельных стаканчиков, помещенных на лед, помеченных случайными идентификаторами.
Используйте пинцет и ручной счетчик, чтобы получить от 20 до 25 комаров на чашку. Чтобы отсортировать плодовых мушек, обезбольте мух с помощью углекислого газа в течение семи секунд. Вылейте мух на пакет со льдом, завернутый в скамейку.
Используя кисть с мелким наконечником, разделите и посчитайте самцов и самок. Используйте кисть, чтобы аккуратно подобрать выбранных мух, и поместите их в чистую, пустую бутылку. После выбора равного количества самцов и самок плодовых мушек, маркируйте бутылки с названием штамма и общим количеством плодовой мухи.
Обезболить бутылку плодовых мушек с помощью углекислого газа в течение семи секунд. Вылейте плодовых мушек на бумагу для взвешивания и используйте бумагу в качестве воронки, чтобы ввести мух в заостренный флакон, помеченный случайным идентификатором.Поместив крышку чашки Петри поверх флакона плодовых мушек, поместите его на весы. Запишите совокупный вес и количество образцов в оценочном листе.
Немедленно поместите флакон плодовых мушек в лоток со льдом с крышкой сверху, чтобы мухи не могли убежать. Загрузите шприц с правильной концентрацией инсектицидов, начиная с наименее концентрированной дозы и работая в направлении наиболее концентрированной дозы с каждой группой организмов. Опрокидывайте образцы на бумагу для взвешивания, помещенную поверх лотка на льду.
Отделите образцы, которые находятся близко друг к другу, используя чистую кисть без инсектицидов или ватный тампон, чтобы обеспечить легкий доступ к каждому образцу для дозирования. С помощью шприца нанесите одну каплю раствора инсектицида на вентральную грудную клетку и область брюшка для комаров и спинку для плодовых мушек. Немедленно вылейте образцы обратно в маркированный пластиковый стаканчик.
Накройте чашку сеткой и резинкой. Обратите внимание на обновленное количество образцов на чашке, если какие-либо образцы были убиты, повреждены или спасены в этом процессе. Поместите готовую чашку в лоток для хранения.
Для первой чашки запишите время, когда дозировка завершена. Повторяйте дозирование для каждой чашки до тех пор, пока все образцы не будут дозированы с надлежащими концентрациями инсектицидов, и запишите время окончания, когда все образцы были дозированы. Внесите 10% раствор сахарозы в каждую чашку с помощью влажного ватного тампона и храните комаров и плодовых мушек при желаемой температуре и влажности.
Регистрирует смертность образцов через 24 часа после начала воздействия инсектицидов. Классифицируйте комаров как живых, если они могут летать и держать себя в вертикальном положении, и мертвых, если они неподвижны или атаксические, как описано ВОЗ. Следуйте той же оценке смертности плодовых мушек.
После выполнения биоанализа были получены данные о дозовом ответе с двумя штаммами, которые являются генотипом Рокфеллера и IICC для мужского и женского Aedes aegypti. Массовая релятивизированная средняя смертельная доза для Рокфеллера и IICC составила 0,008 и 0,336 нанограмма на миллиграмм соответственно. Результаты не выявили различий между кривыми дозовой реакции самок и самцов комаров в пределах каждого штамма.
Поэтому данные обоих полов были объединены для расчета средних значений смертельной дозы. Поскольку 95%-ные доверительные интервалы для медианной смертельной дозы этих двух штаммов не перекрывались, эти значения считались существенно отличающимися. Кроме того, при расчете коэффициентов резистентности штамм IICC был более чем в 40 раз более устойчивым, чем восприимчивый штамм Рокфеллера.
Также были получены данные о реакции на дозу для плодовой мухи, Drosophila melanogaster, штамма Canton-S, и было обнаружено, что массовая релятивизированная средняя смертельная доза составляет 0,213 нанограмма на миллиграмм. Последовательность имеет решающее значение, особенно при хранении и применении инсектицида и оценке смертности. Кроме того, будьте осторожны при обращении с образцом, чтобы избежать вреда или смерти, не вызванной инсектицидом.
С помощью этого метода мы теперь можем точно определить техническую устойчивость популяции комаров и то, как условия окружающей среды влияют на устойчивость или как техническая устойчивость предсказывает практическую устойчивость.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
06:30
Related Videos
33.9K Views
03:55
Related Videos
876 Views
04:43
Related Videos
653 Views
03:56
Related Videos
793 Views
09:32
Related Videos
16.3K Views
10:49
Related Videos
9K Views
08:41
Related Videos
9.3K Views
11:06
Related Videos
16.5K Views
17:39
Related Videos
16K Views
12:00
Related Videos
15.3K Views