September 20th, 2022
Мы построили нецелевой метаболомический рабочий процесс, который объединил XY-Meta и metaX вместе. В этом протоколе мы показали, как использовать XY-Meta для генерации спектральной библиотеки приманки из ссылки на спектры открытого доступа, а затем выполнили управление FDR и использовали metaX для количественного определения метаболитов после идентификации спектров метаболомики.
Этот протокол позволяет проводить качественный и количественный анализ нецелевого метаболома на основе контроля качества FDR, что эффективно снижает ложноположительные результаты идентификации метаболитов. Этот рабочий процесс интегрирует XY-Meta, который использует стратегию target-decoy для более точной оценки FDR для идентификации метаболома в модуле качественного анализа. Эта мера может эффективно фильтровать ложноположительные результаты нецелевой идентификации метаболомов, что повышает надежность обнаружения биомаркеров или ключевых молекул.
Мы ожидаем, что исследователи смогут понять и освоить стратегию target-decoy для управления FDR и должны попытаться строго запустить этот конвейер несколько раз с параметрами протокола по умолчанию. Начните с перехода на веб-страницу базы данных GNPS и нажмите кнопку Обзор наборов данных. Найдите ключевое слово в столбце заголовка, затем щелкните идентификационный номер набора данных.
Загрузите набор данных с помощью FTP и сохраните необработанные данные в соответствующей папке. Чтобы преобразовать формат необработанных данных, сначала установите программное обеспечение ProteoWizard. В поле Путь установки ProteoWizard введите msconvert.
exe, за которым следуют конкретные параметры для преобразования формата необработанных данных в формат mzXML. Опять же, используя msconvert. exe преобразуйте эти данные в формат MGF и сохраните их в папке MGF.
Чтобы подготовить справочную спектральную библиотеку для метаболитов, перейдите на веб-страницу GNPS. Выполните поиск по ключевому слову NIST, нажмите кнопку Просмотр для получения подробной информации и загрузите библиотеку. Сохраните библиотеку в папке базы данных.
Загрузите программу XY-Meta. Найдите файл конфигурации параметров в папке config и измените его содержимое, как описано в текстовом протоколе. Задайте тип adducts в виде списка в папке adduct.
Выполните идентификацию метаболитов и контроль скорости ложного обнаружения с помощью команды XY-Meta.exe. Загрузите и установите пакет программного обеспечения metaX. Затем отредактируйте список образцов.
txt для указания образца и соответствующих ему масс-спектрометрических данных, как описано в текстовом протоколе. Используйте файл R, поставляемый с текстовым протоколом, для запуска скрипта для количественной оценки групп Mock и wild-type с помощью программного обеспечения metaX. Проверьте выходную папку, в которой хранятся результаты количественного анализа, например график PCA.
Затем измените параметры в скрипте R, чтобы аннотировать пики в качественном и количественном анализе с использованием идентификации метаболитов, чтобы интегрировать как результаты, так и запустить скрипт R. Коробчатые графики количественных метаболитов показали, что общее распределение здоровых и больных образцов было сходным с низким колебанием средних значений. Только 3,39% метаболитов имели более 30% недостающих значений.
Принципиальный компонентный анализ графика образцов из обеих групп показал, что metaX заметно увеличил долю метаболитов с CV менее 0,3. Диаграмма Венна дифференциально обнаруженных метаболитов из трех статистических методов испытаний выявила 119 общих метаболитов. Время удержания и массу по распределению заряда всех аннотированных метаболитов строили с коэффициентом ложного обнаружения менее 0,01, показывая шесть значимых и дифференциально обнаруженных метаболитов.
Важно ограничить время тестирования рабочего процесса. Помните, чтобы не отбирать слишком много образцов для анализа и держать не менее двух образцов в каждой группе. Этот метод позволяет контролировать качество метаболизированной идентификации по данным независимого сбора данных, создавая более надежную спектральную библиотеку эталонного спектра с использованием результатов сопоставления спектра, основанных на контроле FDR.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Этот протокол позволяет проводить качественный и количественный анализ нетargетированного метаболома с использованием контроля качества FDR для уменьшения ложных положительных результатов в идентификации метаболитов. Рабочий процесс интегрирует XY-Meta для более точной оценки FDR через стратегию цель-приманка.
High-throughput untargeted metabolomics generates vast spectral datasets, challenging data quality and increasing the risk of false positives in metabolite identification. Integrating FDR control via a target-decoy strategy enhances predictive confidence and supports robust biomarker discovery at critical early discovery and lead identification stages. This workflow enables scalable, reproducible metabolome analysis, directly impacting portfolio triage and translational research continuity.
This integrated workflow spans early discovery through preclinical research, supporting hypothesis testing, pathway clarification, and robust biomarker identification.