24 февраля 2023 г.
В настоящей статье описывается применение прижизненной визуализации для наблюдения за механически индуцированной кальциевой сигнализацией встроенных остеоцитов in vivo в режиме реального времени в ответ на механическую нагрузку третьей плюсневой кости мыши на тканевом уровне.
Этот протокол предоставляет способ наблюдения встроенных остеоцитов in vivo, что представляет собой важный шаг вперед в изучении механобиологии костей. Основным преимуществом этого метода является возможность наблюдать за событиями на клеточном и молекулярном уровне в остеоцитах in vivo, сохраняя их естественное трехмерное пространственное расположение, кровоток и эндокринные условия, а также преодолевая ограничения, обычно налагаемые клеточными экспериментами in vitro. Этот метод предназначен для фундаментальных научных исследований на мышиных моделях. Они пока не распространяются на терапию или диагностику, но дают возможность получить понимание, которое определит следующее поколение лечения костей.
[Рассказчик] Для начала сделайте скальпельный разрез через дерму между второй и третьей плюсневыми костями, начиная с дистального конца и продвигаясь проксимально по длине костей. С помощью щипцов откройте операционное место, подтягивая кожу к медиальному или латеральному краям. Резецируйте сухожилия разгибателей с помощью прямых ножниц Ваннаса, чтобы обнажить третью плюсневую кость. Вставьте центральный штифт точки опоры устройства для загрузки плюсневых костей в небольшое пространство на дистальном конце, где третья плюсневая кость встречается с проксимальной фалангой. Затем переместите штифт проксимально до тех пор, пока он не упрется в средний стержень третьей плюсневой кости. Обратите особое внимание на то, чтобы гарантировать прямое соприкосновение между костью и штифтом, исключая любые мышцы и фасции. Зажмите лодыжку щипцами и поместите стопу в водяную баню, наполненную DPBS. Закрепите лапу на месте с помощью загрузочного кронштейна и подсоедините кронштейн к механизму тензодатчика привода. Аккуратно поднимите настройку загрузочного устройства с помощью мыши и поместите ее на платформу микроскопа. Начните с объектива с малым увеличением в режиме эпифлуоресценции, чтобы определить местоположение и центрировать средний диафиз кости. После того, как интересующая область будет найдена, переключитесь на большее увеличение объектива с погружением в воду и переключите оптику на два фотона. Задайте плотность пикселей с помощью настроек управления областью Гальво/Резонанс. Чтобы избежать фотообесцвечивания, уменьшите энергопотребление с помощью опции управления мощностью и увеличьте усиление ФЭУ в настройках управления сканером Galvo/Resonance. Определите поверхность кости в двухфотонном режиме, найдя автофлуоресценцию фиброзной надкостницы в зеленом канале, который использует полосовой фильтр с центром 525 нанометров. Если во время нагружения происходит заметное движение кости, выберите другую область интереса по осям Y или Z, чтобы убедиться, что она находится непосредственно над центральным штифтом точки опоры. Если движение не прекращается, отрегулируйте хирургическое положение штифта вручную под третьей плюсневой костью. Проведите визуализацию стека Z с нагрузкой в соответствии с экспериментальным дизайном для регистрации морфометрических сигнальных событий, а затем визуализацию серии T с нагрузкой для записи сигнальных событий, вызванных динамической нагрузкой. Здесь показано одноплоскостное двухфотонное изображение плюсневых остеоцитов, экспрессирующих GCaMp6f in vivo. Эндогенная экспрессия кальциевых репортерных конструкций обеспечивает флуоресцентную мишень без необходимости инкубации. На рисунке представлена проекция 3D Z остеоцитов in vivo, полученная с помощью двухфотонной микроскопии. Поперечный разрез в плоскости XY и сагиттальный разрез показывают глубину стека Z. На репрезентативном изображении показан пример временного хода флуоресцентного сигнала GCaMp6f от встроенного остеоцита. В состоянии покоя наблюдаются низкоуровневые зашумленные колебания. При нагрузке колебания кальция увеличиваются по величине и регулярности, часто происходя в ногу с приложенной нагрузкой.
Этот метод открывает исследователям путь к ответу на функционально обоснованные вопросы, касающиеся механобиологии остеоцитов in vivo, которые ранее были возможны только in vitro или ex vivo.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлен протокол прижизненной визуализации для наблюдения за кальциевой сигнализацией в остеоцитах в ответ на механическую нагрузку in vivo. Этот метод позволяет в режиме реального времени наблюдать за клеточными событиями, сохраняя естественную среду костной ткани.
Прямая визуализация кальциевого сигналинга остеоцитов in vivo при механической нагрузке восполняет критический пробел в понимании механотрансдукции костной ткани на молекулярном уровне. Данная возможность повышает прогностическую достоверность на ранних этапах исследований, позволяя наблюдать за механосенсорными путями в режиме реального времени в их естественном физиологическом контексте. Такой подход способствует снижению механистических рисков и предоставляет данные для валидации мишеней при разработке препаратов для поддержания здоровья костей и терапии скелетных заболеваний.
Этот метод прижизненной визуализации объединяет этапы первичного поиска и доклинических исследований, позволяя напрямую проверять гипотезы и уточнять сигнальные пути в живой костной ткани.