18 октября 2022 г.
Генерация библиотеки пептидных дисплеев AAV и последующая проверка с помощью штрих-кодирования кандидатов с новыми свойствами для создания AAV следующего поколения.
Этот протокол закрывает значительный разрыв между естественной эволюцией вирусов и их использованием в качестве рекомбинантных векторов для генной терапии человека, обеспечивая их инженерию, диверсификацию и стратификацию. Этот метод позволяет проводить высокопроизводительный параллельный скрининг новых, изолированных или сконструированных аденоассоциированных вирусов, короче говоря, вариантов AAV, тем самым экономя количество животных, работу, затраты и время. Идентифицированные варианты капсида AVV могут повысить эффективность и специфичность доставки терапевтических трансгенов на основе AAV, тем самым снижая требуемую дозу вируса.
Это может повысить безопасность и применимость генной терапии. Тот же подход может быть также использован для капсидной или промоторной инженерии других средств доставки генов, что улучшает наше понимание их биологии и их использования в генной терапии. Продемонстрировать процедуру помогут аспиранты Йонас Беккер и Цзиссинь Лю, постдок Джоанна Шумска и Маргарита Заяс, а также научные сотрудники Эмма Герстманн и Эллен Видтке из моей лаборатории.
Начните с анализа данных секвенирования NGS с помощью Python 3 и Biopython. Анализ NGS состоит из двух этапов. На первом шаге выполните поиск в файлах последовательностей последовательностей, удовлетворяющих определенным критериям, таким как фланкирующие последовательности, длина и расположение, с помощью первого сценария, а также файла конфигурации, предоставляющего необходимые сведения.
На втором шаге преобразуйте извлеченные последовательности, начиная с последовательности AGWGGC, используя сценарий номер два, а также конфигурацию и zuordnung. txt-файлы, предоставляющие необходимую информацию. Подготовьте две папки: сценарий и данные.
Скопируйте сжатые файлы Gzip, полученные в результате виртуализации, в папку данных. Затем скопируйте Python и конфигурационные файлы в папку скрипта, как описано в текстовой рукописи. Перед запуском скриптов откройте zuordnung.
txt и добавьте два столбца, разделенных табуляцией. Введите имена файлов Gzip в первом столбце и желаемое окончательное имя во втором столбце. Измените переменные в конфигурационном файле, как описано в текстовой рукописи.
Используя специальную команду, инициируйте обнаружение и извлечение последовательности вариантов. На выходе будут файлы TXT с извлеченными последовательностями ДНК и их номерами считываний. Заголовок этого файла содержит статистические данные, и эти данные будут перенесены в следующие файлы.
Эти данные TXT будут входным файлом для сценария номер два, в котором последовательности ДНК переводятся, ранжируются и анализируются. Используя специальную команду, инициируйте PV-перевод и анализ текстовых выходных файлов первого сценария, как описано в текстовой рукописи. Выходные файлы скрипта номер два будут названы с помощью второго столбца таблицы подстановки в zuordnung.
txt с расширениями в зависимости от типа анализа. Убедитесь, что три выходных файла содержат статистические данные в первых строках и первом столбце с индексом каждой последовательности ДНК из входных текстовых файлов. Остальные столбцы должны состоять из последовательности ДНК, количества считываний, прямого или обратного считывания и транслируемой пептидной последовательности.
Недопустимые последовательности должны иметь NA и недопустимы в последних двух столбцах. Визуализируйте выходные файлы с помощью доступного программного обеспечения в зависимости от потребностей пользователя. Для выполнения анализа данных секвенирования NGS с использованием пользовательского кода в Python 3 рабочий процесс включает в себя обнаружение последовательностей штрих-кодов, управляемых фланговыми последовательностями, их длиной и расположением, а также анализ обогащения и распределения штрих-кода по набору тканей.
Подготовьте две папки: сценарий и данные. Скопируйте сжатые файлы Gzip, полученные в результате виртуализации, в папку данных. Затем скопируйте python и конфигурационные файлы в папку script, как описано в текстовой рукописи.
Перед выполнением скрипта создайте два текстовых файла с разделителями-табуляция:capsidvariance. txt-файл с последовательностями штрих-кодов, присвоенными именам вариантов капсида AAV, и загрязнением. txt-файл с последовательностями штрих-кодов, которые происходят из-за возможного загрязнения.
Наконец, отредактируйте конфигурационный файл, включив в него информацию о пути к папке с данными виртуализации, последовательности фланкирующих областей штрих-кодов, их положении и размере окна для обнаружения штрих-кода. Выполните сценарий обнаружения штрих-кода с предоставленными путями и конфигурационными файлами с помощью соответствующей команды. Результатом выполнения этой команды будут TXT-файлы с пересчетом для каждого варианта капсида и общим количеством чтений, восстановленных из необработанных данных.
Для оценки распределения капсида AAV со штрих-кодом среди тканей или органов, в zuordnung. txt, присвойте имя каждого текстового файла, полученного в результате запуска обнаружения штрих-кода, названию ткани или органа. Добавьте имена текстовых файлов в первый столбец и соответствующие названия тканей или органов в назначении с разделителями вкладок.
Создайте органы. txt файл со списком названий включенных и нецелевых органов, которые соответствуют именам, приведенным в задании zuordnung. txt-файл.
Затем создайте normalization_organ. txt и normalization_variant. Вкладка TXT разделила текстовые файлы с нормализованными значениями для всех вариантов капсида и всех органов и тканей.
В первом столбце с normalization_organ. txt, напишите названия, данные для каждого органа, а второй столбец со значениями нормализации для соответствующей ткани. Заполните первый столбец normalization_variant.
txt со списком имен capsid и вторым столбцом с нормализованными значениями количества прочитанных операций для каждого capsid в библиотеке в пуле. Отредактируйте конфигурационный файл, указав полные пути ко всем дополнительным файлам, и выполните скрипт анализа штрих-кода с помощью этой конкретной команды. Сценарий анализа штрих-кода выводит несколько файлов, таких как текстовые файлы с относительной концентрацией или RC-значениями распределения капсида в различных тканях на основе нескольких этапов нормализации, описанных ранее, и файл электронной таблицы, который объединяет данные текстового файла в объединенные матричные данные.
Визуализируйте данные и проведите кластерный анализ матричных данных, как описано в текстовой рукописи. Скрипт введет относительную концентрацию. XLS и генерируют два графика иерархической тепловой карты кластера и анализа главных компонент.
Чтобы изменить графики или параметры PNG, откройте скрипт R и следуйте инструкциям в разделе комментариев. Количественные области репсового гена AAV2 показали, что 99,2% были положительными для ITR, что позволяет предположить, что капсиды AAV содержали все вирусные геномы. Во всех трех наборах извлеченные чтения на основе последовательностей сигнатур, характерных для библиотеки, составляли около 94% от общего числа чтений, что указывает на хорошее качество.
Из них более 99% были действительными PV-чтениями, а более 99% действительных PV-чтений были уникальными, что говорит о том, что библиотека была сбалансирована с высоким внутренним разнообразием. Две основные ветви иерархии тепловой карты отражали разницу в эффективности трансдукции вариантов капсида. Левая ветвь с большинством вариантов капсида включала все капсиды, которые показали высокое относительное значение концентрации в большинстве тканей.
Помимо поразительно высокой специфичности печени, три других капсида проявляли специфичность в диафрагме, скелетных мышцах, бицепсах и мозге. Правая ветвь иерархической кластеризации включала варианты капсида с общей более низкой эффективностью трансдукции, наиболее очевидной в двенадцатиперстной кишке и поджелудочной железе. Анализ главных компонентов исходного подмножества формирует кластер вариантов капсида с высокой специфичностью печени и обрисовывает выдающийся мышечный тропизм капсида VAR60.
При попытке использовать этот протокол необходимо обращать внимание на опечатки. Синтаксис также отличается, если вы используете командную строку Windows, по сравнению с Linux. После выявления новых вариантов AAV терапевтический и трансляционный потенциал должен быть проверен на модели умершего или более крупного животного.
Этот метод позволяет проводить прямое параллельное сравнение вариантов AAV в идентичных условиях и является чрезвычайно универсальным, прокладывая путь для его трансляции у крупных животных или даже у людей.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Этот протокол касается инженерии и диверсификации аденовирусов, ассоциированных с аденовирусом (AAV) для применений в генной терапии. Он позволяет высокопроизводительное скринирование вариантов AAV для повышения их эффективности и специфичности при доставке терапевтических трансгенов.
High-throughput engineering, barcoding, and screening of AAV capsid variants enable rapid identification of gene therapy vectors with optimized tissue specificity and transduction efficiency. This approach streamlines early vector discovery, reduces animal usage, and accelerates the translation of next-generation gene delivery systems. The methodology supports portfolio-wide de-risking and prioritization of candidates for preclinical advancement.
This methodology integrates from early discovery through lead identification and preclinical vector validation, providing a reusable platform for gene therapy vector optimization.