2 сентября 2025 г.
В этой статье представлен подробный протокол сбора образцов рака молочной железы, разработанный для оптимизации их использования для биобанкинга, персонализированной медицины и других исследовательских приложений. Подробно описан рабочий процесс сбора образцов, включая процедуры биопсии молочной железы и мастэктомии, с акцентом на минимизацию повреждения тканей и максимальное качество образцов.
Цель — улучшить сбор образцов рака для биобанкинга, чтобы обеспечить более персонализированное лечение с помощью высококачественного секвенирования РНК и органоидной культуры из филиппинских тканей рака молочной железы. Недавние достижения включают использование органоидов, полученных от пациентов, и секвенирования РНК для прогнозирования ответа на лечение при раке молочной железы в недавней статье, особенно для случаев лимфоваскулярного вторжения, связанного с лекарственной резистентностью. Для точного анализа тканей рака молочной железы мы используем биопсии с ультразвуковым контролем, РНК-секвенирование и процентную оценку опухоли и 3D-органоидные культуры.
Основные задачи включают получение высококачественной РНК из небольших биопсийных образцов, а также вопросы качества сохранения органоидов. Начав с рака груди, мы изучим дальнейшую экспрессию генов в более крупной филиппинской когорте и используем органоиды для тестирования терапии следующих видов: щитовидной железы, яичников, поджелудочной железы и редких видов рака, таких как филлоды. Для начала установите игольчатый биопсионный пистолет с 14-калиберным ядром под ультразвуковым наблюдением в амбулаторной клинике, операционной или другой асептической среде.
Для каждого ядра возьмите образец молочной железы длиной примерно два сантиметра от центра опухоли и один сантиметр от соседней нормальной ткани. Берите два типа образцов — нормальную ткань и опухолевую ткань — у каждого пациента. Передайте каждый образец научному ассистенту для размещения в чашке Петри с раствором PBS.
Отсортировать девять образцов тканей опухоли на шесть ядер для анализа РНК и три ядра для биобанкинга. Разрежьте каждое сердцевина вдоль или поперечно стерильным лезвием. Поместите три обычных ядра тканей в чашки Петри.
Разрежьте сердечники пополам и выделите их для анализа. Распределите образцы между пробирками в соответствии с приоритетом. Поместите половину ядер в выделенные криофлаконы объёмом два миллилитра с 1,25 миллилитра раствора стабилизации РНК.
Зафиксируйте остальные половинки в флаконах образца, содержащих 10% нейтрального буферного формалина. Заполните и отправьте формы хирургической патологии с фиксированными образцами в отделение патологии. После мастэктомии поместите образец в чистый пакет после документации и немедленно транспортируйте в отдел патологии лабораторий без формалина, чтобы сократить время холодной ишемии.
При гроссинге получите блок опухолевой ткани размером минимум один кубический сантиметр и разрежьте на две половины. Равномерно разделяйте свежую половину блока для секвенирования РНК, биобанкинга и культуры органоидов. Немедленно поместите ткань для секвенирования РНК в пятимиллилитровые предварительно охлаждённые и маркированные криофлаконы, заранее заполненные 2,5 миллилитрами раствора стабилизации РНК.
Для биобанкинга используйте пятмиллилитровые криофлаконы с таким же раствором. Для органоидной культуры используйте 15-миллилитровые конические флаконы, предварительно заполненные пятью миллилитрами раствора для хранения тканей и 0,01 миллилитра примоцина. Втяните треть всех опухолевых блоков в одну коническую трубку.
Получите минимум один кубический сантиметр нормального блока ткани и разрежьте его пополам для биобанкинга РНК и рутинной гистопатологии. Переместить блок тканей в пятимиллилитровые предварительно охлаждённые и маркированные криофлаконы, заполненные 2,5 миллилитрами раствора стабилизации РНК для секвенирования РНК и биобанкинга. Затем запечатайте все криофлаконы парапленкой.
Храните при четырёх градусах Цельсия в течение 24 часов. Затем переведите температуру до минус 20 градусов Цельсия на два-четыре часа. И наконец, храните при минус 80 градусах Цельсия.
Запечатайте крышки флаконов парапленкой. Поместите запечатанные криофлаконы в полицей для пробирок и накройте их абсорбентом и пузырчатой пленкой. Поместите завернутую решётку в закрываемый пакет с терморегистратором.
Разместите гелевые пакеты на дно полистироловой коробки. Затем положите пакет поверх гелевого пакета. Положите ещё один слой гелевых пакетов сверху на сумку.
Убедитесь, что трубки зажаты между гелевыми пакетами, чтобы образцы оставались холодными во время транспортировки. Положите закрытую коробку из полистирола в картонную коробку и положите манифест в пакет Ziploc. Запечатайте и промаркуйте коробку для отправки.
Перед передачей курьером обратите внимание на количество флаконов и время отправления из биобанка. Два образца с изменяющимися значениями RIN и концентрацией не прошли этап подготовки библиотеки во время секвенирования и были исключены в итоговом анализе. Все образцы показали отличные показатели качества секвенирования, при которых более 90% вызовов оснований имели точность не менее 99,9%. Яркопольная визуализация показала успешное формирование органоидов из тканей мастэктомии рака молочной железы третьей стадии после неоадъювантной терапии с обильными сфероидными структурами, видимыми при низком и высоком увеличении.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Эта статья представляет детальный протокол оптимизации сбора образцов рака молочной железы для биобанков и персонализированной медицины. Она акцентирует внимание на минимизации повреждения тканей и максимизации качества образцов с помощью точных методик.
Optimized breast tissue collection and biobanking protocols are critical for enabling high-fidelity RNA sequencing and 3D organoid culture, directly impacting predictive confidence in breast cancer research. These procedures support translational continuity from sample acquisition to molecular profiling and functional drug response testing, informing portfolio decisions in precision oncology. The approach establishes a scalable infrastructure for multi-institutional biobanking and personalized medicine initiatives in resource-limited settings.
This protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum by linking clinical sample acquisition, molecular profiling, and functional drug testing in organoid models.