Biology

플라스틱 삽입 및 Xenopus laevis의 태아의 Sectioning

Published: April 29, 2007 doi: 10.3791/188

Souichi Ogata¹, Shimako Kawauchi¹, Anne Calof², Ken W.Y. Cho¹

¹Department of Developmental and Cell Biology, University of California, Irvine (UCI), ²University of California, Irvine (UCI)

Summary

플라스틱 부분은 조직의 여러 유형의 파라핀 - 임베디드 또는 냉동 부분보다이 방법이 더 유용하고, 형광 항체와 보조 immunostained 수있는 조직의 얇은 부분에서 진정한 조직 형태를 유지합니다. 얼룩, 플라스틱 포함하고, sectioning에 대한 방법은이 동영상에서 보여주입니다.

Protocol

정치

(피셔 고양이 # 03-339 - 25B) 작은 유리 섬광 병에 MEMFA 또는 3.7 % FA + PBS로 전체 배아 또는 해부 explants을 전송합니다. 그것보다 더뿐만 아니라, 2 시간, RT에서 nutator에 병을 부화합니다. 2 시간 이상 FA에서 배아를 두지 마십시오. FA의 긴 배양은 배아 조직 어렵게하고 검색 과정에서 항체의 가난한 침투가 발생합니다.
FA의 대부분을 기음과 유리병 (~ 4.5ml)의 상단에 덴트의 정착액을 추가합니다. 부드럽게 신선한 덴트의 다른 4.5ml과 덴트의에 교류를 배아를 씻어 몇 번 병을 반전하고, 적어도 48 시간 동안 -20 º C에서 알을 품다. 숙박 충분하지 않습니다. 이 단계는 항체에 대한 배아가 더 투과합니다. 배아는 몇 주 동안이 조건에 보관하실 수 있습니다.

Immunofluorescence

표본을 Rehydrate. 다음과 같이 메탄올의 등급 시리즈를 품어 :

75% MeOH / H ₂ O 10 분
50% MeOH / PBS 10 분
25% MeOH / PBS 10 분
PBS 10 분
PBS 10 분
60mm 플라스틱 요리와 1.5 % 아가로 오스 / PBS 번호판을 확인합니다. 그것이 고체 된 후 아가로 오스 위에 PBS 하거라.
배아의 헤미 - sectioning : 1.5 % 아가로 오스 / PBS 판에서 배아를 넣어. 포셉 한 쌍의있는 배아를 잡고 얇은 면도날을 사용하여 배아의 중심을 반으로 잘라. 당신이 성공적으로 직선 절단 평면과 반으로 가지고있는 사람을 선택합니다.
PBT와 유리 섬광 약병에 bisected 배아를 전송합니다. 20 % 염소 혈청 + PBT의 4.5ml와 교류. nutator (차단) 2 시간 RT에서 알을 품다.
PBT의 기본 항체의 적절한 희석을 준비합니다. 이 당 샘플 0.5ml이 필요합니다. 예를 들어, 나는 5mm 플라스틱 부분에서 C - cadherin의 subcellular 지방화를 연구하기 위해 토끼 안티 - C - cadherin PAB의 2백분의 1 희석를 사용합니다.
차단 솔루션을 기음과 희석 주 항체의 0.5ml를 추가합니다. 스티로폼 튜브 홀더에 서있는 위치에 튜브를 넣어. nutator 4 º C에서 밤새 품어.
희석 기본 항체 (이 희석 차 항체가 저장하고 다음 1~2주에 활용할 수 있습니다)를 제거합니다. RT 4 회 (40~60분 각)의 PBT의 4.5ml로 씻으십시오.
PBT에서 비오틴 - 복합 이차 항체의 100분의 1 희석의 0.5ml와 교류. nutator 4 º C에서 밤새 품어. 빛과 비오틴을 보호하기 위해 알루미늄 호일로 튜브를 커버.
이 시점에서, 치료는 어떤 표지 또는 알루미늄 호일에서 튜브를 유지, 빛, 즉로부터 시료를 보호하기 위해 이동해야합니다.
비오틴 - 보조 항체 (이 또한 다음 1-2주에 활용할 수 있습니다)를 제거합니다. RT에서 (각 40-60분) 또는 4 회 대한 PBT의 4.5ml 씻으십시오.
PBT에서 Streptavidin (FITC, 텍사스 - 빨강, 등) 찬란 - 라벨의 200분의 1 희석의 0.5ml와 교류. nutator 4 º C에서 밤새 품어.
streptavidin을 (이것도 활용할 수 있습니다)를 제거합니다. RT에서 - (30 분 각 15) 3 회 대한 PBT의 4.5ml로 씻으십시오.
RT 30 분 3.7 % FA + PBS의 4.5ml의 배아를 수정.
두 번 PBS의 4.5ml로 씻으십시오.
표본을 탈수. 다음과 같이 에탄올의 등급 시리즈를 품어 :

30% EtOH / H ₂ O 10 분
50% EtOH / H ₂ O 10 분
75% EtOH / H ₂ O 10 분
백퍼센트 EtOH 10 분
표본은 빛으로부터 그것을 보호하기 위해 커버 4 개 º C 100 % EtOH에 저장할 수 있습니다.

침투

Technovit 7,100 침투 믹스를 확인하십시오. 나는 보통 50ml 원뿔 튜브 기본 액체 15ml 받아를 경화제의 150mg 추가하고 15 분 동안 nutator에 락을하여 섞는다. 이 침투 믹스는 최대 1 개월 4 ° C에 보관하실 수 있습니다.
Technovit의 침투 믹스 / EtOH 콤보의 등급 일련의 교환에 의해 침투 믹스로 표본을 침투로 다음과 :
1. 50% Technovit / EtOH - 1시간
2. 100 % Technovit - 1시간
3. 100 % Technovit - 하룻밤
specimeN 4 º C.에 1 개월에 대한 100 % 침투 믹스에 저장할 수 있습니다 빛을에서 그들을 보호하기 위해 샘플에 덮개를 넣어.

퍼가기

Technovit 7100 포함 믹스를 만들기 : 1.5ml 튜브에 침투 믹스의 0.75ml을 가지고 경화제 II의 50ml를 추가합니다. 반전 튜브를 여러 번하여 섞는다.
플라스틱 전송 피펫을 사용하여 하나의 표본이 0.5ml 얇은 벽 PCR 튜브에 하룻밤에 침투 가져가라. 뜨는의 대부분을 제거합니다.
표본이 섹션의 단계 # 1, "퍼가기"에서 만든 포함 믹스의 0.25ml를 추가합니다. 동양 부드럽게 재미 - 팁 해부 니들 (해부 바늘 나무 - 핸들)을 이끌어하여 튜브의 바닥에 마주 절개의 비행기를 만들기 위해 bisected 배아.
뚜껑을 닫고 비닐은 중합 수 있도록 약 4 시간 동안 어두운 장소에서 튜브를 품어.
Technovit 3,040 믹스를 확인하십시오. 계량 접시에 분말 1g을 가지고, 액체 0.5ml를 추가합니다. 즉시 bluetip를 사용하여 분말 및 액체를 섞는다. 강화된 spacimen 위에 부어. 이 노란색 Technovit 3040은 튜브에서 나오는에서 전체 플라스틱 블록을 방지할 수 있습니다.

Sectioning

크실렌과 Histoknife H 닦아 (EtOH 자주 충분하지 않습니다) 및 마이크로톰에 설정합니다. 약 45 °의 칼날을 각도. 이 지역의 청결은 sectioned 조각의 품질에 중요하기 때문에, 너무, 크실렌과 블레이드의 전면에 무대 영역을 닦아주십시오.
튜브의 측면을 잘라 골판지 나이프를 사용하여 해제 팁 껍질.
마이크로톰의 척 홀더로 표본을 설정합니다.
섹션 슬라이스에 마운트 챔버를 만들기 위해 슬라이드 유리에 "언론 - 투 - 인감"실리콘 절연체를 부착합니다. 단단히 깨끗한 benchtop에있는 슬라이드에 절연체를 눌러 절연체가 완전히 다른 공기 방울없이 연결되었는지 확인하기 위해 반대편에서보세요. 최대가 물의 표면, 평면 오목되지 않거나 모양으로 볼록이된다고 볼 수있는 수준으로, 파스퇴르 피펫을 사용하여 슬라이드에있는 수영장에 깨끗하고 따뜻한 DH ₂ O를 (~ 40 ° C) 하거라.
섹션 조각 만들기 시작합니다. immunofluorescence 연구, 나는 5mm 섹션 조각합니다. 목적과 신호의 농도에 따라 8mm - 현장 하이브리드화 샘플의 경우, 슬라이스의 두께는 ~ 3의 범위에서 조정할 수 있습니다.
작은 페인트 브러쉬를 사용하여, 블레이드의 앞 단계에서 물을 장착 챔버에 섹션 조각 운반. 워터 풀 위에 슬라이스로 페인트 잡고 재미 - 팁 해부 바늘로 두드리는하여 물을 슬라이스 드롭 다운. 그것은 물의 표면을 안타로 슬라이스는 곧 둥근 모양으로 확장됩니다.
대부분의 장착 챔버의 수면 면적이 섹션 슬라이스가 가득하면, 파스퇴르 피펫을 사용하여 물을 거의 절반까지 빨아. 샘플 완전히 건조하기 위해 슬라이드 따뜻한 하룻밤에 슬라이드를 품어.
5 분 동안 DAPI (TE에 0.1mg/ml)의 1ml와 카운터 얼룩. 기음 DAPI는 예제를 건조.
슬라이드에서 실리콘 고무 절연체를 제거합니다. 이제 사진은 샘플 촬영하실 수 있습니다. 4 샘플을 보관 ° 빛으로부터 보호 C를.

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Materials

Name	Type	Company	Catalog Number	Comments
PBS	Buffer			1 L recipe: 8.0 g NaCl 0.2 g KCl 2.68 g Na₂HPO₄·7H₂O 0.2 g KH₂PO₄The pH is supposed to be 7.4. Adjust the volume to 1 L. Autoclave.
PBT	Buffer			Add 0.5 mLl of Triton X-100 and 1.0 g of BSA (Molecular Biology grade, fraction V is good [>99%], but don’t use crude 97% Albumin) to 500ml of autoclaved PBS. Filtrate through 0.2 mm filter cup. Store it in 4ºC.
·Dent’s fixative	Reagent			Mix 40 mL of methanol and 10 mL of DMSO. Keep it in –20°C.
3.7% FA+PBS	Reagent			Mix 37% formaldehyde and PBS at 1:9 ratios. Make it fresh at each time and discard the left over.
Biotinylated Anti-Mouse IgG (H+L), made in goat	Ab	Vector Laboratories	BA-9200
Biotinylated Anti-Rabbit IgG (H+L), made in goat	Ab	Vector Laboratories	BA-1000
IG’S HUADS BIOTIN GTXRBT	Ab	Invitrogen	ALI3409	BioSource™
IgG (g), Goat Anti-Mouse	Ab	Invitrogen	M30115	CALTAG™
Fluorescent streptavidin kit	Reagent	Vector Laboratories	SA-1200	Contains streptavidin labeled with three different fluorophores (FITC, Texas Red and AMCA) suitable for this procedure.
20% goat serum/PBT	Buffer			This will be used as a blocking solution.
Small paintbrush	Tool
Dull-tip dissection needle	Tool
Kulzer Technovit 7100 GMA , 3040	Reagent		7100 GMA , 3040	glycol methacrylate
Kulzer Tungsten Histoknife H	Tool	Energy Beam Sciences	H1310
75% MeOH/H₂O	Buffer
50% MeOH/PBS	Buffer
25% MeOH/PBS	Buffer
30% EtOH/H₂2O	Buffer
50% EtOH/H₂O	Buffer
75% EtOH/H₂O	Buffer
100% EtOH	Buffer
Small glass scintillation vials	Tool	Fisher Scientific	03-339-25B
0.5 mL Thin-wall PCR tubes	Tool	Molecular BioProducts	3430
Press-to-Seal Silicone Rubber Insulators	Tool	Grace Bio-Lab Inc.	JTR1L-2.5	32 mm L x 19 mm W, 2.5 mm D
Thin razor blade	Tool
1.5% Agarose in PBS
Primary antibody against your antigen or epitope tags: Make an appropriate dilution in PBT.Biotin-conjugated secondary antibody: various vendors sell biotin-conjugated antibodies.