Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Article de méthode

Gramicidine basée Assay fluorescence; pour déterminer le potentiel de petites molécules pour modifier les propriétés bicouche lipidique

11.7K vues

⸱

DOI :

10.3791/2131

⸱

13 octobre 2010

 ,  ,  , 

Dans cet article

Résumé

Nous introduisons une vitesse basées sur la fluorescence de dosage qui surveille le taux de la trempe de fluorescence comme une mesure de l'activité du canal gramicidine. Les canaux de gramicidine sont utilisés comme capteurs de force moléculaire pour surveiller les changements dans les propriétés de bicouche lipidique telle que détectée par des protéines bicouche couvrant.

Résumé

Beaucoup de médicaments et d'autres petites molécules utilisées pour moduler la fonction biologique sont des amphiphiles qui s'adsorbent à l'interface bicouche / solution et ainsi modifier les propriétés bicouche lipidique. Ceci est important car les protéines membranaires sont énergétiquement couplées à leur hôte en bicouche interactions hydrophobes. Les changements dans les propriétés bicouche ainsi modifier la fonction des protéines membranaires, qui offre un moyen indirect pour amphiphiles pour moduler la fonction des protéines et un mécanisme possible pour "hors cible" effets des médicaments. Nous avons déjà développé un essai électrophysiologique pour détecter des changements dans les propriétés de bicouche lipidique utilisant des canaux de gramicidine linéaires comme sondes 3,12. Canaux gramicidine sont des mini-protéines formées par la dimérisation de deux transbilayer non-conductrice sous-unités. Ils sont sensibles aux changements dans leur environnement membranaire, ce qui les rend puissants sondes pour surveiller les changements dans les propriétés de bicouche lipidique telle que détectée par des protéines bicouche couvrant. Nous avons maintenant la preuve un dosage par fluorescence pour détecter des changements dans les propriétés bicouche en utilisant les mêmes canaux que les sondes. Le dosage est basé sur la mesure de l'évolution temporelle de la trempe de fluorescence de fluorophores chargés vésicules unilamellaires grande partie grâce à l'entrée d'un désactiveur à travers les canaux de gramicidine. Nous utilisons la fluorescence indicateur / désactiveur paire 8-aminonaphtalène-1 ,3,6-trisulfonate (ANTS) / Tl + qui a été utilisé avec succès dans d'autres dosages extinction de la fluorescence 5,13. Tl + imprègne la bicouche lipidique lentement 8 mais traverse aisément la réalisation des canaux de gramicidine 1,14. La méthode est évolutive et adaptée pour les deux études mécanistes et criblage à haut débit de petites molécules pour la bicouche de perturbations, et le potentiel "hors cible", les effets. Nous constatons que les résultats en utilisant cette méthode sont en bon accord avec les précédents résultats électrophysiologiques 12.

Protocole

1. Générer ANTS-remplie liposomes

  1. Au jour 1, éliminer le solvant organique à partir des lipides.
  2. Retirer du congélateur lipides et laisser s'équilibrer à température ambiante.
  3. Ajouter 0,6 mL de 25 mg / ml (1,2-dierucoyl-sn-glycéro-3-phosphocholine) des lipides dans une solution de chloroforme dans une fiole de 25 ml à fond rond.
  4. Continuellement faire tourner la fiole pendant le séchage sous azote, jusqu'à ce que tous le chloroforme a évaporé et une fine pellicule blanche de couches de lipides toute la moitié inférieure de la fiole.
  5. Sec dans un dessiccateur sous vide pendant une nuit.
  1. Le jour 2, pré....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Nous avons démontré un rapide test basées sur la fluorescence pour déterminer le potentiel de modifier bicouche de médicaments et d'autres petites amphiphiles. Les composés qui modifient les propriétés bicouche sont susceptibles d'altérer la fonction des protéines membranaires dans une indirecte, de manière non spécifique, qui peut contribuer à "hors cible" effets des médicaments. Le test exploite la puissance des canaux gramicidine tant que sondes pour des changements de propriétés bicouche 12

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Une demande de brevet provisoire qui couvre les méthodes décrites dans le manuscrit a été déposé. Les co-inventeurs sont HII et OSA.

Remerciements

Nous tenons à remercier Michael J. Bruno, Radda Rusinova et Jon T. Sack pour de nombreuses discussions stimulantes. Le soutien financier du NIH, et de l'ARRA R01GM021342 complément R01GM021342-35S1, et la Josiah Macy Jr. Foundation pour l'OSA, le Tri-I Programme des OHC pour HII et L. Les Iris et Leverett S. Woodworth Scientifique médical bourses et subventions du NIH MSTP GM07739 pour RK.

....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
ANTSInvitrogenA-350
gramicidineSigma-AldrichG-5002
1,2-diérucoyl-sn-glycéro-3-phosphocholineAvanti Polar Lipid, Inc850398C
Kit Mini-ExtruderAvanti Polar Lipid, Inc610000
Colonne de désalinisation PD-10Sigma-Aldrich54805

Références

  1. Andersen, O. S. Ion transport through simple membranes. Renal Function. Giebisch, G. H., Purcel, E. F. , The Josiah Macy, Jr. Foundation. New York. (1978).
  2. Andersen, O. S., Koeppe, R. E. Bilayer thickness and membrane protein function: An energetic perspective. Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. 36, 1....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Explorer plus d’articles

Canaux de gramicidineextincteur Tl+ de l'ANTSvésicules unilamellaires géantesspectrofluorimétrie à flux interrompuajustement exponentiel étiréeffets de perturbation de la bicouchecriblage de petites moléculesfonction des protéines membranaires