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Methodenartikel

Die Analyse der dendritischen Spine Morphologie in Cultured ZNS-Neuronen

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DOI:

10.3791/2794

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13. Juli 2011

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Zahlreiche neuere Studien haben Mutationen in synaptischen Proteinen mit Hirnerkrankungen assoziiert identifiziert. Primär kultivierte kortikalen Neuronen bieten eine große Flexibilität bei der Prüfung der Auswirkungen dieser Krankheit assoziierte Proteine ​​auf dendritischen Dorn Morphologie und Motilität.

Zusammenfassung

Dendritischen Dornen sind die Seiten der Mehrheit der exzitatorischen Verbindungen im Gehirn, und bilden die postsynaptischen Fach von Synapsen. Diese Strukturen sind reich an Aktin und haben gezeigt, dass eine hohe Dynamik. Aufgrund der klassischen Hebb'sche Plastizität sowie neuromodulatorischen Signale können dendritischen Dornen in Form und Zahl, die vermutlich von entscheidender Bedeutung sein für die Veredelung von neuronalen Schaltkreisen und die Verarbeitung und Speicherung von Informationen im Gehirn ist. Innerhalb dendritischen Dornen, Link ein komplexes Netzwerk von Proteinen extrazelluläre Signale mit dem Aktin cyctoskeleton ermöglicht die Kontrolle von dendritischen Dorn Morphologie und Anzahl. Neuropathologische Studien haben gezeigt, dass eine Reihe von Erkrankungen, angefangen von Schizophrenie, Autismus-Spektrum-Störungen, abnorme dendritischen Dorn Morphologie oder Zahlen anzuzeigen. Darüber hinaus haben die jüngsten genetischen Studien Mutationen in zahlreichen Genen, die synaptischen Proteine ​​kodieren identifiziert, was für Vorschläge, dass diese Proteine ​​an aberranten Wirbelsäule Plastizität, die zum Teil unterliegen der Pathophysiologie dieser Erkrankungen beitragen können. Um die mögliche Rolle dieser Proteine ​​bei der Kontrolle der dendritischen Dorn Morphologien / Anzahl Studie bietet der Einsatz von kultivierten kortikalen Neuronen mehrere Vorteile. Erstens ermöglicht dieses System für hochauflösende Bildgebung der dendritischen Dornen in fixierten Zellen sowie Zeitraffer-Imaging lebender Zellen. Zweitens ermöglicht diese in vitro-System für einfache Handhabung der Funktion des Proteins durch Expression von mutierten Proteinen, Knockdown von shRNA-Konstrukte oder medikamentöse Behandlungen. Diese Techniken können die Forscher damit beginnen, die Rolle der krankheits-assoziierte Proteine ​​zerlegen und vorherzusagen, wie Mutationen dieser Proteine ​​können in vivo-Funktion.

Protokoll

Die hier beschriebene Protokoll kann verwendet werden, um dendritischen Dorn Morphologie und Dynamik in jeder primären kultivierten Systems zu untersuchen.

1. Vorbereitung der primären kortikalen Neuronen Kulturen

  1. Bereiten Sie High-Density-kortikalen Neuronen Kulturen aus Sprague-Dawley Ratten E18 Embryonen und Kultur in Glia-bedingten serum-freiem Medium 1-2.
  2. Euthanize eine schwangere Ratte (E18) nach ACUC Verfahren; schnell zu entfernen Gebärmutter (mit Föten in it) und in eine 100 mm Petrischale auf Eis.
  3. Aufschneiden Gebärmutter und Amnionmembran, halten Fötus durch den Hals (Nabelschnur intakt....

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Diskussion

Die oben beschriebenen Techniken für die detaillierte quantitative Analyse der dendritischen Dorn Morphologie, lineare Dichte und Beweglichkeit in fester oder leben primären kortikalen Neuronen sind auf das Verständnis der Auswirkungen der postsynaptischen Mechanismen, die zu Neuropathologien beitragen können konzentriert. Ein ähnlicher Ansatz kann verwendet werden, um Wirbelsäule Morphologie und Motilität in allen stacheligen Neuron, einschließlich Hippocampus pyramidal, Purkinje, oder mittlere stachelige Neuronen zu q.......

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Offenlegungen

Die Produktion dieser Arbeit wurde durch MetaMorph (Molecular Devices, Inc.) unterstützt.

Danksagungen

Wir bedanken uns bei Kelly Jones für die sorgfältige Bearbeitung. American Heart Association Postdoctoral Fellowship (DPS);; Diese Arbeit wurde vom NIH R01MH 071316, Alzheimer Association, der National Alliance for Research on Schizophrenia and Depression (NARSAD) und die National Alliance for Autism Research (naar) (PP) unterstützt amerikanischen Heart Association Promotionsstipendium (KMW).

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Name des Reagenzes Firma Katalog-Nummer Kommentare (optional)
18 mm rund Deckglas Nr. 1.5 Warner Instruments 64-0714 (CS-18R15)
22 mm ² Deckglas Nr. 1.5 Warner Instruments 64-0721 (CS-22S15)
Poly-D-Lysin Sigma P-0899 MW 70 ~ 150 kDa
Neurobasal Medien Invitrogen 21103049
B27 Invitrogen 17504044
Glutamin Invitrogen 21051024
Penicillin-Streptomycin Invitrogen 15140148
D, L-APV (AP-5) Ascent Scientific Asc-004
Lipofectamine 2000 Invitrogen 11668019
DMEM Invitrogen 11965092
HEPES MediaTech CellGro 25 bis 060-C 1 1M, pH 7
Formaldehyd-Lösung EMD Chemicals FX0415-5 36%, Histologie grade
Normale Ziegen Serum VWR 100188-514 Jackson Immunoresearch Labs
Triton X-100 Fisher Scientific AC21568-2500 Acros Organics
Alexa Fluor 488 Ziege anti-Maus IgG (H + L) hochvernetzte adsorbiert Invitrogen A-11029
Alexa Fluor 488 Ziege anti-Kaninchen IgG (H + L) * hochvernetzte adsorbiert * Invitrogen A-11034
ProLong Gold-Antifade Reagenz Invitrogen P36934 Spezielle Verpackungen
Anbei Abbildungsstufe Kammer Warner RC-30HV
Temperature Controller-Einheit Warner TC-344B
MetaMorph Universal Imaging

Referenzen

  1. Banker, G., Goslin, K. Developments in neuronal cell culture. Nature. 336, 185-186 (1988).
  2. Xie, Z. Kalirin-7 controls activity-dependent structural and functional plasticity of dendritic spines. Neuron. 56, 640-656 (2007).
  3. Spear, L.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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