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方法文章

糖原的生化滴定 体外

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DOI:

10.3791/50465

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2013年11月24日

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本文内容

摘要

我们在此介绍一种准确、可重复且便捷的生化方法,用于糖原的滴定 体外该技术采用Abcam糖原检测试剂盒,基于将糖原逐步水解为葡萄糖,并通过荧光法测定葡萄糖含量。

摘要

糖原是脊椎动物体内葡萄糖的主要储能聚合物,在整体机体代谢和细胞代谢中均发挥关键作用。目前已存在多种检测糖原的方法,但仅有少数具备定量能力。本文介绍一种采用Abcam糖原检测试剂盒的方法,该方法基于糖苷淀粉酶特异性将糖原降解为葡萄糖。随后,葡萄糖被特异性氧化为一种产物,该产物与OxiRed探针反应生成荧光信号。该滴定法准确、灵敏,可用于细胞提取物或组织切片。然而,与其他技术相比,该方法无法提供糖原在细胞内分布的信息。作为该技术的应用示例,本文描述了在常氧(21% O2)与低氧(1% O2)条件下培养的两种细胞系——中国仓鼠肺成纤维细胞CCL39和人结肠癌细胞LS174中糖原含量的测定。我们假设低氧是一种信号,可促使细胞合成并储存糖原以维持生存1。

引言

糖原是由葡萄糖残基组成的多分支聚合物,存在于多种细胞类型的细胞质中。它是细胞内主要的能量储存形式之一,在葡萄糖代谢中发挥重要作用。大多数哺乳动物细胞均能合成并储存糖原,可在代谢应激期间迅速降解为葡萄糖,以促进糖酵解和ATP的生成。肝细胞可大量合成糖原,通过调节血糖水平,为机体持续提供葡萄糖。相比之下,其他细胞(如肌肉细胞、红细胞)中的糖原浓度较低, 等等。相对较低。然而,在局部范围内,这些数量足以提供能量 短期暴露于营养缺乏环境时,细胞会受到突然影响。

糖原合成与糖原分解在所有组织中遵循相同的步骤图1首先,葡萄糖通过葡萄糖转运蛋白(GLUTs)进入细胞,并由磷酸葡萄糖变位酶迅速将葡萄糖-6-磷酸(G6P)转化为葡萄糖-1-磷酸(G1P)。随后,G1P被修饰为UDP-葡萄糖,UDP-葡萄糖的C1碳原子连接到糖原蛋白(glycogenin)——糖原的锚定蛋白——的酪氨酸残基上。这一分子被视为糖原引物,通过将UDP-葡萄糖连接到引物末端葡萄糖的α(1→4) 键合 通过 糖原合成酶。最后,当形成一条含有超过11个葡萄糖残基的线性链时,分支酶会将至少由6个葡萄糖残基组成的末端寡糖链通过α(1→6)糖苷键转移至邻近链上的另一个葡萄糖残基上。这一过程的重复进行形成具有大量分支的分形结构,其....

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方案

糖原的生化滴定

1. 细胞裂解

  1. 以每100 mm直径培养皿0.5–2 × 106的浓度接种细胞。
  2. 处理:将细胞在低氧浓度(缺氧)条件下于厌氧工作站(Bug-Box anaerobic work station,Ruskinn Technology Biotrace International Plc,Bridgend,UK)中培养24、48或72小时,气体环境设置为1%或0.1% O2、94%或94.9% N2以及5% CO2。同时,将对照组细胞置于常氧条件(21% O2,5% CO2)下培养。每24小时更换一次培养基(含25 mM葡萄糖的培养基),以尽量减少实验期间葡萄糖浓度的变化。
  3. 处理结束后,用PBS洗涤细胞2次,以去除培养基中残留的葡萄糖。用预冷的PBS刮取细胞。
  4. 将细胞悬液在1,000 rpm下离心5分钟,弃去上清液,并用PBS洗涤沉淀一次。沉淀物可在继续实验前于-20 °C冷冻保存。
  5. 将沉淀重悬于100 μl蒸馏水中。加入Glycogen Assay Kit(Abcam)提供的100 μl糖原水解缓冲液。将裂解液在95 °C下煮沸5分钟,以灭活酶活性。
  6. 涡旋振荡后,在13,000 rpm下离心10分钟,去除不溶性物质....

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结果

肿瘤中的低氧水平(缺氧)会向肿瘤细胞发出信号,提示其需要储存能量以应对后续的营养耗竭,从而维持生存。由于糖原是哺乳动物细胞中葡萄糖主要的能量储存多聚体,我们研究了缺氧条件下糖原储存的调控机制。细胞裂解液中糖原浓度的计算与标准化必须基于荧光原始数据进行,如表1、表2和表3所示。生化糖原检测证实,在CCL39细胞的电子显微照片中观察到的电子致密聚集体(图2A)即为糖原颗粒(图2B)。缺氧条件下糖原的积累依赖于缺氧诱导因子-1(HIF-1)这一转录因子,HIF-1是细胞适应缺氧过程中的主要转录调控因子(图3)。最后,我们在多种癌细胞和非癌细胞系中证明,储存的糖原可在6小时内被细胞迅速代谢(图4A),并且在葡萄糖饥饿条件下,糖原的利用可保护细胞免于死亡(图4B)1。

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讨论

糖原的生化滴定 体外 可实现对细胞糖原含量的精确定量。相较于其他一些技术(PAS染色、使用糖原抗体的免疫荧光染色), 等等然而,该滴定法具有高度特异性、灵敏性和可重复性。此外,该方法操作便捷,无需使用放射性物质,仅需荧光分光光度计即可完成。但该技术仅为定量分析,无法提供细胞内糖原分布的信息。

本文所述技术适用于细胞提取物,但通过适当的组织糖原提取方法,也可应用于组织切片。该检测用于 体外 应用,且由于糖原的测定是间接的(水解为葡萄糖后测定),因此无法用于动态监测糖原储存情况 体内.

PAS染色已广泛用于诊断多种糖原累积病(von Gierke病、Cori病、McArdle病), 等等。也可用于检测真菌感染或区分不同类型的肿瘤亚型。理论上,过碘酸-雪夫染色(PAS染色)可与图像分析仪联用以测定糖原浓度。然而在实际操作中,该技术难以实施,且相较于本文所述方法存在以下不足:首先,PAS阳性染色(紫红色)与阴性染色(苏木精-蓝色)存在颜色重叠,技.......

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披露

作者声明无利益冲突。

致谢

我们感谢 Thierry Pourcher 博士允许我们使用荧光分光光度计并提供帮助。本实验室获得以下机构资助:法国抗癌联盟(认证研究团队)、抗癌研究协会、法国国家癌症研究所(INCa)、法国国家科研署、METOXIA(欧盟第七框架计划)、A. Lacassagne 中心、法国国家科学研究中心、法国国家健康与医学研究院以及尼斯大学(http://www.unice.fr/isdbc/)。我们感谢 M. Christiane Brahimi-Horn 博士对本文的审阅和编辑校正。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
试剂
DMEMInvitrogen31966.047
糖原检测试剂盒Abcamab65620
PBS
仪器
荧光分光光度计PerkinElmerLS 50B

参考文献

  1. Pelletier, J., et al. Glycogen Synthesis is Induced in Hypoxia by the Hypoxia-Inducible Factor and Promotes Cancer Cell Survival. Front Oncol. 2, (2012).
  2. Alonso, M. D., Lomako, J., Lomako, W. M., Whelan, W. J. A new look at the biogenesis of glycogen. FASEB J<....

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