Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Medicine
Click here for the English version

Medicine

شبكية العين مفرزة النموذجي في القوارض بواسطة حقن تحت الشبكية من هيالورونات الصوديوم

Published: September 11, 2013 doi: 10.3791/50660
Automatic Translation
1, 1, 1
1Retina Service, Angiogenesis Laboratory, Department of Ophthalmology, Massachusetts Eye and Ear Infirmary, Harvard Medical School

ERRATUM NOTICE

Summary

إنشاء مفارز الشبكية التجريبية مع ارتفاع استنساخه ومستمرة من مفرزة، ودون نزف تحت الشبكية، المهم لدراسة الفيزيولوجيا المرضية لفقدان خلية مستقبلة للضوء في شبكية العين مرض وتقييم التدخلات العلاجية المحتملة. هنا، ونحن التقرير مثل هذا الأسلوب في التفاصيل.

Abstract

حقن تحت الشبكية من هيالورونات الصوديوم هو طريقة مقبولة على نطاق واسع على إحداث انفصال الشبكية (RD). ومع ذلك، فإن ارتفاع ومدة RD أو حدوث نزيف تحت الشبكية يمكن أن تؤثر على موت الخلايا المستقبلة للضوء في شبكية العين منفصلة. وبالتالي، فإنه من المفيد لخلق ال RDs استنساخه دون نزف تحت الشبكية لتقييم موت الخلايا المستقبلة للضوء. نحن تعديل طريقة ذكرت سابقا لخلق الفقاعي و RDS المستمرة في موقع استنساخه مع نادر الحدوث النزف تحت الشبكية. في خطوة حاسمة من هذه الطريقة تعديل هو خلق شق الصلبة الختم الذاتي، والتي يمكن منع تسرب هيالورونات الصوديوم بعد الحقن في الفضاء تحت الشبكية. لجعل شق الصلبة الختم الذاتي، يتم إنشاء نفق الصلبة، تليها الاختراق الصلبة في المشيمية مع 30 G الإبرة. على الرغم من أن نزف المشيمية قد تحدث خلال هذه الخطوة، قبض مع الرمح الجراحية يقلل من معدل تنحنح المشيميةorrhage. يسمح هذا الأسلوب نموذج أكثر استنساخه وموثوق بها للوفاة مبصرة في الأمراض التي تنطوي على مثل RD RD تشرمي المنشأ، واعتلال الشبكية من الخداج، واعتلال الشبكية السكري، واعتلال المشيمية و الشبكية المصلي المركزي، والضمور البقعي المرتبط بالعمر (AMD).

Introduction

يحدث موت الخلايا المستقبلة للضوء وانخفاض البصرية لاحقا عندما يتم فصل خلايا مستقبلة للضوء في شبكية العين من الأساسي الظهارة الصبغية. وينظر الفصل المادي بين المستقبلات الضوئية في مختلف اضطرابات الشبكية، بما في ذلك الضمور البقعي المرتبط بالعمر (AMD)، اعتلال المشيمية و الشبكية المصلي المركزي، واعتلال الشبكية السكري، واعتلال الشبكية الخداج، وكذلك تشرمي المنشأ (أي الناجم عن انقطاع في شبكية العين) انفصال الشبكية ( RD). حقن تحت الشبكية من هيالورونات الصوديوم هو النموذج المقبول على نطاق واسع لخلق RD الذي يؤدي إلى موت الخلايا المستقبلة للضوء، وتوفير نظرة ثاقبة على الفيزيولوجيا المرضية لمبصرة انحطاط 1-15.

تنكس مبصرة تحت الشبكية الناجم عن حقن هيالورونات الصوديوم، لأول مرة في عام 2001 7، في الاستفادة من دورة زمنية معقولة (أيام إلى أسابيع). ومع ذلك، يمكن أن يكون التباين كبيرا من فقدان خلية مستقبلة للضوء من الحيوان الى أنيمالتر بسبب اثنين من العوامل الرئيسية التي تؤثر على موت الخلايا المستقبلة للضوء بعد RD: 1) ارتفاع ومدة RD، و 2) وقوع نزف تحت الشبكية. هناك منحنى التعلم حاد التقنية إلى طريقة التي تساهم في كل من العوامل. زيادة انحطاط خلية مستقبلة للضوء مع ارتفاع RD، والمسافة بين الصباغ الظهارية في شبكية العين (RPE) وطبقة المستقبلات الضوئية يزيد 16-17. بما يتفق مع هذه التقارير، وأظهرت التجارب السابقة لدينا المزيد من الموت مبصرة في ال RDs الفقاعي من ال RDs الضحلة. وأفيد أيضا أن نزف تحت الشبكية هي سامة للخلايا مستقبلة للضوء ويؤثر موت الخلايا مبصرة 18-21. وبالمثل، لاحظنا المزيد من الموت مبصرة في ال RDs مع نزف تحت الشبكية من ال RDs دون نزف تحت الشبكية. وبالتالي، وتقنيات للحد من التباين لابد من التركيز على تحقيق ارتفاعات ثابت من RD مع تجنب نزيف تحت الشبكية.

لدينا طريقة معدلة من فيducing RD يمكن أن تجعل الفقاعي استنساخه وRD الثابتة على نفس الموقف من العين مع نادر الحدوث النزف تحت الشبكية. أجرينا عملية جراحية باستخدام نهج الزمنية لأنه من الأسهل لتحقيق حقل المنطوق أوسع مقارنة مع المواقع الأخرى. بعد شق الملتحمة، يتم إجراء شق الصلبة الختم الذاتي باستخدام إبرة G 30. يتم إنشاء نفق الصلبة، تليها الاختراق الصلبة في المشيمية. في حالة حدوث نزيف المشيمية في هذه الخطوة، فإن النزف خروج العين من خلال الجرح الصلبة، والنزيف يمكن وقفها من قبل قبض مع الرمح الجراحية. ثم يتم إجراء ثقب الغرفة الأمامية من القرنية لتقليل ضغط العين. هذا هو خطوة مهمة لحقن تحت الشبكية وحدها سوف يؤدي إلى زيادة ضغط العين مع انسداد الشريان الشبكية الناتجة ونقص تروية الشبكية الداخلية. ثم يتم إدخال إبرة G 33 متصلة ميكرولتر حقنة هاميلتون 10 في الفضاء تحت الشبكية، و 3.5 μ؛ يتم حقن ل هيالورونات الصوديوم بلطف لفصل الشبكية العصبي الحسي من RPE الكامنة. وعلى النقيض من الأساليب الأخرى لحمل RD التي يتم تنفيذها تحت الملاحظة قاع، يتم تنفيذ هذه التقنية تحت الملاحظة المباشرة. منذ الجرح الصلبة هو الختم الذاتي، سوف هيالورونات الصوديوم لا يتسرب بعد الحقن. أخيرا، يتم وضع الغراء على الجرح الصلبة، ويتم تثبيتها الملتحمة إلى موقعها الأصلي. هذه الخطوات تستمر أيضا يقلل من خطر تسرب هيالورونات الصوديوم. حقن 3.5 ميكرولتر هيالورونات الصوديوم يخلق ال RDs استنساخه (50٪ من الشبكية) في أعين الفئران عمره 8 أسابيع. خلق الجرح الختم الذاتي هو الخطوة الأكثر أهمية في إجراء تعديل لدينا لأنه يمنع هيالورونات الصوديوم حقن من تسرب من العين، مما يسمح الفقاعي استنساخه و RDS الثابتة.

Protocol

أجريت جميع التجارب على الحيوانات وفقا للجمعية للبحوث في مجال الرؤية وبيان العيون لاستخدام الحيوانات في العيون والبحوث الرؤية، والمبادئ التوجيهية واللوائح التي وضعتها في ماساتشوستس العين والأذن المستوصف جنة رعاية الحيوان.

1. المعالجة

  1. تخدير الماوس عمره 8 أسابيع مع حقن داخل الصفاق من خليط من 60 ملغ / كغ الكيتامين و 6 ملغ / كغ زيلازين.
  2. قطع شعيرات. يتم ذلك لأنها تتداخل مع التصور ووضع الصك.
  3. تمدد التلميذ مع 5٪ و 0.5٪ فينيليفرين تروبيكاميد.
  4. قطع أهداب. يتم ذلك أيضا لأنها تتداخل مع التصور ووضع الصك.
  5. تطبيق التخدير الموضعي (0.5٪ بروباراكايين هيدروكلوريد حل العيون).

2. الجراحة تحت المجهر

  1. تعيين الماوس في نقاط البيع الجانبيةition مع الأنف نحو الجراح. يتم تنفيذ قرصة أخمص القدمين إلى تأكيد التخدير الجراحي، وارتدى قفازات معقمة قبل بدء الجراحة.
  2. شق الملتحمة الزمنية في حوف الخلفي وفصل الملتحمة من الصلبة. تجنب اختراق الصلبة. بعد هذه الخطوة، فهم الملتحمة في حوف مع ملقط للسيطرة على العين.
  3. إجراء شق الصلبة الختم الذاتي باستخدام غيض من إبرة G 30 مع شطبة وأشار المباراة. جعل نفق الصلبة من خلال الصلبة واختراق الصلبة في المشيمية (الشكل 1). تجنب اختراق شبكية العين. في حالة حدوث نزيف المشيمية ويخرج من خلال الجرح الصلبة، مع إجراء قبض الرمح الجراحية حتى يتوقف النزيف. وسوف يكون هذا الجرح الصلبة مع ضغط العين ذاتيا مختومة.
  4. ثقب القرنية مع إبرة 30 G لتخفيف الضغط داخل العين. استخدام إبرة موازية لالقزحية لتجنب اصابة القزحية والعدسة خلال البريدn حاول في الغرفة الأمامية. فإن ضغط العين يسبب الجرح لختم الذاتي.
  5. إدراج إبرة G 33 متصلة ميكرولتر حقنة هاميلتون 10 في الفضاء تحت الشبكية مع شطبة وأشار إلى أسفل (نحو العين الداخلية)، وحقن 3.5 ميكرولتر هيالورونات الصوديوم بلطف لفصل الشبكية العصبي الحسي من RPE الكامنة. تجنب اختراق شبكية العين مع إبرة 33 G لأن هيالورونات الصوديوم سوف يذهب الى الفضاء الزجاجي ولكن ليس الفضاء تحت الشبكية إذا تم اختراق شبكية العين. أيضا، وتجنب حقن السريع لأنه سيخلق المسيل للدموع عن طريق الفم، وسوف هيالورونات الصوديوم تتسرب إلى الغرفة الأمامية.
  6. اسمحوا تدفق الخلط المائي الخروج من ثقب القرنية عن طريق دفع القرنية حول ثقب القرنية مع ملقط لضبط ضغط العين.
  7. تأكيد غياب التسرب من الجرح الصلبة باستخدام الرمح الجراحية.
  8. للحد من خطر تسرب هيالورونات الصوديوم، ووضع الغراء cyanoacrylate الجراحية علىالجرح الصلبة.
  9. أعد الملتحمة إلى موقعها الأصلي باستخدام الغراء cyanoacrylate الجراحية. أن يزيد هذا من الحد من مخاطر تسرب هيالورونات الصوديوم.
  10. فحص قاع العين باستخدام غطاء زجاجي والتأكد من إنشاء RD الفقاعي دون نزف تحت الشبكية.

3. بعد العلاج

  1. تطبيق مرهم مضاد حيوي للعين باسيتراسين للحد من خطر العدوى.
  2. الحفاظ على الفئران على وسادة التدفئة لمنع التخدير (مزيج من الكيتامين وزيلازين) من التسبب في انخفاض درجة حرارة الجسم لاحقا إلى انخفاض ضغط الدم.
  3. وضع الفئران إلى قفص الحيوان بعد أن توقظ من التخدير. رصد الفئران يوميا لمضاعفات. إذا نشأت أي مضاعفات، الموت ببطء الفئران كما هو موضح أدناه.

4. تضحية

  1. الموت ببطء الفئران عن طريق خلع عنق الرحم بعد الحقن داخل الصفاق من 100 ملغ / كغ بنتوباربيتال الصوديوم، وenucleaالشركة المصرية للاتصالات عيون في نقاط زمنية مناسبة لكل تجربة (لا يظهر). تجنب الضغط على العين أثناء استئصال بسبب هيالورونات الصوديوم قد يتسرب. يجب أن يكون ال RDs الفقاعي المستمرة لمدة 14 أيام على الأقل.

Representative Results

لتقييم استمرار RD التي أدلى بها هذا البروتوكول، أدلى cryosections في أيام 3 و 7 و 14 بعد تحريض RD. واستخدمت ستة عيون لكل نقطة زمنية. تم استخدام الهيماتوكسيلين ويوزين (HE) تلطيخ لتصور أقسام. أظهر جميع المقاطع RD الفقاعي تقترب العدسة (الشكل 2). أظهرت عين واحدة نزيف تحت الشبكية في يوم 7. لم تظهر أي علامات على عيون أي عدوى أو إصابة العدسة.

الشكل 1
الشكل 1. خلق شق الصلبة الختم الذاتي. يظهر هذا التخطيطي صورة مستعرضة من العين الفأر العادي. خط أحمر يشير إلى شق الصلبة الختم الذاتي. نفق الصلبة تليها الاختراق الصلبة في المشيمية مع 30 G إبرة يخلق شق الصلبة الختم الذاتي. هذا الجرح الصلبةوسوف يكون مع ضغط العين، والتي يمكن منع تسرب هيالورونات الصوديوم بعد الحقن في الفضاء تحت الشبكية وتحقيق مفارز الشبكية الفقاعي المستمرة ذاتيا مختومة.

الرقم 2
الشكل 2. بالطبع وقت انفصال الشبكية. وتظهر هذه الصورة قاع انفصال الشبكية الفقاعي دون نزف تحت الشبكية مباشرة بعد الجراحة. Cryosections مع الهيماتوكسيلين ويوزين (HE) عرض تلطيخ مستمرة انفصال الشبكية الفقاعي دون نزف تحت الشبكية من خلال 14 يوم على الأقل.

Discussion

وقد تم الإبلاغ عن عدة طرق لإنشاء نموذج RD في عيون القوارض 3-15، 22. معظمهم من استخدام الحقن تحت الشبكية من هيالورونات الصوديوم لأنه هو مادة لزجة تستخدم عادة أثناء الجراحة العين في البشر، وليس أنه يرتبط مع أي سمية العين المعروف 1-15. هيالورونات الصوديوم، بدلا من المعتاد المالحة أو الفوسفات مخزنة المالحة (PBS)، ويزيد من مدة RD.

الطرق للحقن تحت الشبكية من هيالورونات الصوديوم استخدام أحد النهجين: نهج transvitreal 3-6 أو نهج بطريق الصلبة 7-15. يتم تنفيذ كلتا الطريقتين مع المراقبة من قاع. في النهج transvitreal، هو عرض حاقن تحت الشبكية في تجويف الجسم الزجاجي، يتم إنشاء retinotomy في الشبكية الطرفية، ويتم حقن هيالورونات الصوديوم في الفضاء تحت الشبكية. في هذه الطريقة، يتم إجراء اثنين من الدموع في شبكية العين، مما يزيد من خطر الشبكيةل نزف التي قد تذهب الى الفضاء تحت الشبكية. بالإضافة إلى ذلك، هناك خطر الإصابة العدسة عند إنشاء retinotomy. هناك عدة طرق لتعديل النهج بطريق الصلبة. في معظم هذه الطرق 7-12، بعد تخفيض ضغط العين مع ثقب الغرفة الأمامية، وإبرة G 30 متصلة حقنة مليئة هيالورونات الصوديوم يتم إدراجها مباشرة في الفضاء تحت الشبكية من خلال الملتحمة، الصلبة، المشيمية، وRPE. ثم يتم حقن هيالورونات الصوديوم في الفضاء تحت الشبكية. خطر الشبكية المسيل للدموع وإصابة العدسة باستخدام هذا الأسلوب بطريق الصلبة أقل من أن استخدام النهج transvitreal. ومع ذلك، فإن ثقب المحرز في الصلبة بواسطة إبرة 30 G كبيرة، خصوصا للعيون الماوس، وهيالورونات الصوديوم حقنها في الفضاء تحت الشبكية تسرب بسهولة من العين من خلال الجرح الصلبة. هذا يؤدي إلى انخفاض، RD أقل الثابتة والمتغيرة أكثر موت الخلايا المستقبلة للضوء. وعلاوة على ذلك، في حال حدوث نزيف في المشيميةالخطوة ثقب الصلبة، فإن نزيف تنتشر في الفضاء تحت الشبكية لأن ضغط العين قد انخفض قبل حقن هيالورونات تحت الشبكية.

يمكن أن العديد من العوامل التي تؤثر تأثير RD على الشبكية منفصلة، ​​بما في ذلك نزيف تحت الشبكية وارتفاع واستمرار RD 16-21. خلية مستقبلة للضوء الزيادات الموت مع ارتفاع متزايد من RD 16، 17، وتلف الخلايا المستقبلة للضوء قد تكون أكثر واسعة الانتشار بسبب انخفاض الأكسجين والعناصر الغذائية الأساسية من المشيماء الشعيرية مع ارتفاع RD مقارنة RD الضحلة. نزف تحت الشبكية هي أيضا سامة للخلايا مستقبلة للضوء 18-21؛ الآليات المحتملة لهذا التسمم في انفصال الشبكية وتشمل نقص الأكسجة واضطراب التمثيل الغذائي التي كتبها نزف تحت الشبكية كحاجز نشرها، والعصبية المباشرة الناجمة عن مكونات الدم (مثل الحديد). إصابة العدسة، والتي تم الإبلاغ عن أن يكون لها تأثير وقائي على RETIخلايا العقدة نال 23، قد تؤثر أيضا على موت الخلايا المستقبلة للضوء بعد تحريض RD. بالإضافة إلى ذلك، إذا لم يتم اغلاق موقع الجرح الدخول، هيالورونات الصوديوم قد يتسرب مع التلاعب العين أثناء قلع. هذا قد يؤدي إلى تصنيف خاطئ لRD الضحلة كما، والتي قد تؤثر بدورها على تفسير النتائج.

نحن تعديل طريقة بطريق الصلبة للحقن تحت الشبكية من هيالورونات الصوديوم لزيادة استنساخ المصمم وخفض معدل النزف تحت الشبكية. في خطوة حاسمة من هذا البروتوكول هو خلق شق الصلبة الختم الذاتي باستخدام إبرة G 30، والذي يمنع تسرب هيالورونات الصوديوم بعد الحقن. على عكس الطرق السابقة، يتم تنفيذ هذا البروتوكول من دون مراقبة من قاع بحيث يتم إيلاء اهتمام أكبر على الجرح الصلبة. تطبيق الغراء كما يمنع هيالورونات الصوديوم من تسرب من العين. في تجربتنا، فإن معدل النزف تحت الشبكية مع هذا البروتوكول ثكما أقل بكثير من تلك التي مع البروتوكولات الأخرى. في حالة حدوث نزيف المشيمية خلال الخطوة شق الصلبة، فإنه سيتم الخروج من العين من خلال الجرح الصلبة لأنه يتم تنفيذ هذه الخطوة قبل خفض ضغط العين. إذا نزف المشيمية يحدث بعد تخفيض ضغط العين وانفصال الشبكية العصبي الحسي، وتشريح الدم في الفضاء تحت الشبكية. وجدنا هذا أن يحدث في حوالي 5٪ من الحالات على النقيض من حوالي 10-20٪ مع غيرها من التقنيات. ينبغي استبعاد هذه الحيوانات من التحليل.

ويمكن أيضا أن تستخدم هذه التقنية للحقن تحت الشبكية من بوساطة ناقلات نقل الجينات لاستهداف خلايا مستقبلة للضوء أو RPE 24، 25. لأن السيارة النموذجية (PBS، المالحة) لهذه الحقن بشكل ملحوظ أقل لزوجة من هيالورونات الصوديوم، تعاني التقنيات القياسية بأكثر التسريبات. تقنية الموضحة هنا، عن طريق الحد من هذه المخاطر، ويجعل تجارب نقل ناقلات أكثر استنساخه ويمكن الاعتماد عليها.

Disclosures

ماساشوستس للعيون والأذن المستوصف له مصلحة ملكية في ثلاث براءات الاختراع الأمريكية الموجهة لاستخدام verteporfin. بالإضافة إلى ذلك، ماساتشوستس العين والأذن المستوصف لديها ملكية في بعض طلبات براءات الاختراع الموجهة إلى تدمير الانتقائي للneovasculature المشيمية تحت الشبكية لعلاج الضمور البقعي وغيرها من الاضطرابات. ماساشوستس للعيون والأذن المستوصف يتلقى الإتاوات نتيجة لهذه البراءات وطلبات البراءات والدكتور ميلر يحصل على حصة من نفس وفقا لماساتشوستس للعيون والأذن المستوصف في السياسة المؤسسية وإجراءات براءات الاختراع، والذي يتضمن أحكام تقاسم الملوك. المؤلف الدكتور جوان جورج ميلر، وهو عضو مجلس إدارة في الماضي والمساهم السابق ألكون، وشركة، ويعمل حاليا كمستشار لألكون؛ إيماجين في مجال التكنولوجيا الحيوية، وشركة؛ ISIS الصيدلة؛ Kalvista الصيدلة؛ Regeneron صيدلة، وشركة و ONL التداوي، LLC. يقدم الدكتور ديمتريوس G. Vavvasكمستشار لشركة روش، جينينتيك، كالا الصيدلة.

Acknowledgments

نشكر يندي تشاو لدعمها في استعراض نقدي. وأيد هذا العمل من قبل بوش ولومب الشبكية والجسم الزجاجي زمالة (HM)، ومنحة EY014104 المعهد الوطني للعيون (JWM)، بحوث لمنع العمى مؤسسة (DGV)، ليونز صندوق أبحاث العيون (DGV)، والتبرع السخي من عائلة Yeatts (JWM وDGV).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Ketaject Phoenix 2010025
AnaSed LLOYD 4004821
5% Phenylephrine / 0.5% Tropicamide Massachusetts Eye and Ear Pharmacy
0.5% Proparacaine Hydrochloride Ophthalmic Solution AKORN 17478-263-12
Provics Alcon 8065183085
Webglue Patterson Veterinary 07-8566128
Microscope Leica MG90
30G1/2 PrecisionGlide Needle BD 305106
Weck-Cel Eye Spears Beaver-Visitec 0008685
10 Microliter Syringe Hamilton 7635-01
33 gauge, 0.5 inch needle Hamilton 7803-05
18x18mm Cover Glass Fisher Scientific 18-548A

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Anderson, D. H., Guerin, C. J., Erickson, P. A., Stern, W. H., Fisher, S. K. Morphological recovery in the reattached retina. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 27, 168-183 (1986).
  2. Cook, B., Lewis, G. P., Fisher, S. K., Adler, R. Apoptotic photoreceptor degeneration in experimental retinal detachment. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 36, 990-996 (1995).
  3. Zacks, D. N., et al. Caspase Activation in an Experimental Model of Retinal Detachment. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 44, 1262-1267 (2003).
  4. Zacks, D. N., Han, Y., Zeng, Y., Swaroop, A. Activation of Signaling Pathways and Stress-Response Genes in an Experimental Model of Retinal Detachment. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 47, 1691-1695 (2006).
  5. Nakazawa, T., et al. Characterization of cytokine responses to retinal detachment in rats. Mol. Vis. 12, 867-878 (2006).
  6. Nakazawa, T., et al. Tumor Necrosis Factor-Mediates Photoreceptor Death in a Rodent Model of Retinal Detachment. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 52, 1384-1391 (2011).
  7. Hisatomi, T., et al. Relocalization of apoptosis-inducing factor in photoreceptor apoptosis induced by retinal detachment in vivo. Am. J. Pathol. 158, 1271-1278 (2001).
  8. Hisatomi, T., et al. Critical role of photoreceptor apoptosis in functional damage after retinal detachment. Curr. Eye Res. 24, 161-172 (2002).
  9. Nakazawa, T., et al. Monocyte chemoattractant protein 1 mediates retinal detachment-induced photoreceptor apoptosis. Proc. Natl. Acad. Sci. 104, 2425-2430 (2007).
  10. Trichonas, G., et al. Receptor interacting protein kinases mediate retinal detachment-induced photoreceptor necrosis and compensate for inhibition of apoptosis. Proc. Natl. Acad. Sci. 107, 21695-21700 (2010).
  11. Roh, M. I., Murakami, Y., Thanos, A., Vavvas, D. G., Miller, J. W. Edaravone, an ROS Scavenger, Ameliorates Photoreceptor Cell Death after Experimental Retinal Detachment. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 52, 3825-3831 (2011).
  12. Mantopoulos, D., et al. Tauroursodeoxycholic acid (TUDCA) protects photoreceptors from cell death after experimental retinal detachment. PLoS One. 6, e24245 (2011).
  13. Yang, L., Bula, D., Arroyo, J. G., Chen, D. F. Preventing retinal detachment-associated photoreceptor cell loss in Bax-deficient mice. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 45, 648-654 (2004).
  14. Cebulla, C. M., Ruggeri, M., Murray, T. G., Feuer, W. J., Hernandez, E. Spectral domain optical coherence tomography in a murine retinal detachment model. Exp. Eye Res. 90, 521-527 (2010).
  15. Secondi, R., Kong, J., Blonska, A. M., Staurenghi, G., Sparrow, J. R. Fundus Autofluorescence Findings in a Mouse Model of Retinal Detachment. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 53, 5190-5197 (2012).
  16. Machemer, R. Experimental retinal detachment in the owl monkey. IV. The reattached retina. Am. J. Ophthalmol. 66, 1075-1091 (1968).
  17. Ross, W., Lavina, A., Russell, M., Maberley, D. The correlation between height of macular detachment and visual outcome in macula-off retinal detachments of < or = 7 days' duration. Ophthalmology. 112, 1213-1217 (2005).
  18. Glatt, H., Machemer, R. Experimental subretinal hemorrhage in rabbits. Am. J. Ophthalmol. 94, 762-773 (1982).
  19. Toth, C. A., Morse, L. S., Hjelmeland, L. M., Landers, M. B. 3rd Fibrin directs early retinal damage after experimental subretinal hemorrhage. Arch. Ophthalmol. 109, 723-729 (1991).
  20. Benner, J. D., Hay, A., Landers, M. B. 3rd, Hjelmeland, L. M., Morse, L. S. Fibrinolytic-assisted removal of experimental subretinal hemorrhage within 7 days reduces outer retinal degeneration. Ophthalmology. , 101-672 (1994).
  21. Bhisitkul, R. B., et al. Neuroprotective effect of intravitreal triamcinolone acetonide against photoreceptor apoptosis in a rabbit model of subretinal hemorrhage. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 49, 4071-4077 (2008).
  22. Zeng, R., Zhang, Y., Shi, F., Kong, F. A Novel Experimental Mouse Model of Retinal Detachment: Complete Functional and Histologic Recovery of the Retina. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 53, 1685-1695 (2012).
  23. Leon, S., Yin, Y., Nguyen, J., Irwin, N., Benowitz, L. I. Lens injury stimulates axon regeneration in the mature rat optic nerve. J. Neurosci. 20, 4615-4626 (2000).
  24. Murakami, Y., et al. Inhibition of choroidal neovascularization via brief subretinal exposure to a newly developed lentiviral vector pseudotyped with Sendai viral envelope proteins. Hum. Gene Ther. 21, 199-209 (2010).
  25. Kong, F., et al. Self-complementary AAV5 vector facilitates quicker transgene expression in photoreceptor and retinal pigment epithelial cells of normal mouse. Exp. Eye Res. 90, 546-554 (2010).

Tags

الطب، العدد 79، خلايا مستقبلة للضوء، القوارض، الشبكية البقعي، انفصال الشبكية، ونماذج الحيوان، علم الأعصاب، طب العيون، شبكية العين، والماوس، موت الخلايا المستقبلة للضوء، واعتلال الشبكية،، الضمور البقعي المرتبط بالعمر (AMD)

Erratum

Formal Correction: Erratum: Retinal Detachment Model in Rodents by Subretinal Injection of Sodium Hyaluronate
Posted by JoVE Editors on 01/30/2014. Citeable Link.

A correction was made to Retinal Detachment Model in Rodents by Subretinal Injection of Sodium Hyaluronate. The footnotes were removed from the abstract due to redundancy in the introduction.

Subretinal injection of sodium hyaluronate is a widely accepted method of inducing retinal detachment (RD)1-15. However, the height and duration of RD or the occurrence of subretinal hemorrhage can affect photoreceptor cell death in the detached retina16-21.

to:

Subretinal injection of sodium hyaluronate is a widely accepted method of inducing retinal detachment (RD). However, the height and duration of RD or the occurrence of subretinal hemorrhage can affect photoreceptor cell death in the detached retina.

شبكية العين مفرزة النموذجي في القوارض بواسطة حقن تحت الشبكية من هيالورونات الصوديوم
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Matsumoto, H., Miller, J. W.,… More

Matsumoto, H., Miller, J. W., Vavvas, D. G. Retinal Detachment Model in Rodents by Subretinal Injection of Sodium Hyaluronate. J. Vis. Exp. (79), e50660, doi:10.3791/50660 (2013).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter