Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Article de méthode

Isolement et quantitative immunocytochimique caractérisation des cellules myogéniques primaires et fibroblastes de muscle squelettique humain

16K vues

⸱

DOI :

10.3791/52049

⸱

12 janvier 2015

 ,  ,  ,  , 

Dans cet article

Résumé

Les principaux types de cellules adhérentes dérivées du muscle humain sont les cellules myogéniques et les fibroblastes. Ici, les populations cellulaires sont enrichies à l’aide d’un tri cellulaire activé par magnétisme basé sur l’antigène CD56. L’immunomarquage ultérieur avec des anticorps spécifiques et l’utilisation de techniques d’analyse d’images permettent de quantifier les caractéristiques cytoplasmiques et nucléaires dans les cellules individuelles.

Résumé

La réparation et la régénération du muscle squelettique nécessite l'action des cellules satellites, qui sont les cellules souches musculaires résident. Ceux-ci peuvent être isolés à partir d'échantillons de biopsie de muscle humain en utilisant une digestion enzymatique et leurs propriétés myogéniques étudiés en culture. Quantitativement, les deux principaux types de cellules adhérentes obtenues par digestion enzymatique sont les suivantes: (i) les cellules satellites (appelées cellules myogéniques ou de cellules précurseurs de muscle), identifié initialement comme CD56 + et par la suite en tant que CD56 + / desmine + cellules et (ii) muscle- fibroblastes dérivés, identifiés comme CD56 - et TE-7 +. Fibroblastes prolifèrent très efficacement dans la culture et dans les populations de cellules mixtes ces cellules peuvent dépassement cellules myogéniques de dominer la culture. L'isolement et la purification de types de muscle humain de cellules différentes est donc une considération méthodologique importante lorsqu'il se agit d'enquêter sur le comportement inné ou l'autre type de cellules en culture. Ici, nous DESCRBIE un système de tri basé sur la digestion enzymatique douce de cellules en utilisant de la collagénase et de la dispase suivie magnétique tri cellulaire activé (MACS) qui donne à la fois une grande pureté (> 95% des cellules myogéniques) et avec un bon rendement (~ 2,8 x 10 6 ± 8,87 x 10 5 cellules / g de tissu après 7 jours in vitro) pour les expériences de culture. Cette approche repose sur l'incubation de la population de cellules dérivées du muscle mixte avec des microbilles magnétiques des billes conjuguées à un anticorps dirigé contre CD56 et puis en faisant passer les cellules si un champ magnétique. CD56 + liés à microbilles sont conservés par le champ tandis CD56 - cellules passer sans entraves à travers la colonne. Les suspensions cellulaires de ne importe quelle étape du processus de tri peuvent être étalées et cultivées. Suite à une intervention donnée, la morphologie cellulaire et l'expression et la localisation des protéines, y compris des facteurs de transcription nucléaires peut être quantifiée en utilisant un marquage par immunofluorescence avec des anticorps spécifiques et une image pe traitement et logiciel d'analyse.

Introduction

La réparation et la régénération du muscle squelettique nécessite l'action des cellules satellites 1, les cellules souches myogéniques 2,3. In vivo ces cellules existent dans un état ​​réversible de repos située entre le sarcolemme et lame basale de chaque myofibre, mais se activent à proliférer, fusible et de différencier que le tissu musculaire est endommagé, réparer et régénérer 3. Les cellules satellites peuvent être isolés à partir d'échantillons de biopsie musculaire humaine jeunes et les personnes âgées en utilisant une digestion enzymatique 4 et leurs propriétés myogéniques peut ensuite être étudié ....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

NOTE: Pour les études réalisées dans notre laboratoire tous les sujets ont donné leur consentement écrit et éclairé à participer et à toutes les expériences ont été réalisées avec l'approbation du Comité d'éthique du National Health Service au Royaume-Uni (Comité éthique de la recherche de Londres; référence: 10 / H0718 / 10) et conformément aux la Loi sur les tissus humains et de la Déclaration d'Helsinki.

1. Préparation initiale Avant la biopsie musculaire (15 min)

  1. Faire milieu de croissance de muscle squelettique humain. Pour un 50 ml tube conique stérile graduée ajouter 2,5 ml du mélange de supplément, 10 ml de ....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

Cellules fibroblastes et myogéniques purifiés peuvent être cultivées en milieu de différenciation adipocytaire pendant trois jours, suivie par du milieu de la nutrition adipogénique de ne importe où entre 7-30 jours pour évaluer leur potentiel de l'adipogenèse. Utilisation des populations cellulaires purifiées, Oil Red O en combinaison avec une coloration immuno-coloration pour les marqueurs de lignage adipogènes et myogéniques ont montré que seule la fraction de fibroblastes était capable de différenciation adipogène <.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Nous avons décrit un procédé de tri immunomagentic pour l'enrichissement sélectif de précurseurs musculaires humaines dérivées à partir de petits échantillons de matériau de biopsie musculaire. Cette technique a été inestimable dans notre laboratoire pour surmonter la perte de cultures dérivées du muscle de fibroblastes humains, mais également pour comprendre le comportement unique de populations distinctes de progéniteurs dérivées du muscle. Cellules myogéniques Une fois purifiés peuvent être étudiés pour des chang.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier Carl Hobbs et Lindsey Majoram pour leur assistance technique, ainsi que le professeur Pat Doherty pour l’utilisation des installations de microscopie. Le Dr Agley a été soutenu par une bourse d’études du King’s College de Londres. Le financement du Spurrell Trust est également reconnu.

....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Collagénase  ; DRoche  ;
Dispase IISigmaD4693-1GDoit être stérilisé par filtre avant utilisation
Trypsine/EDTA(Gibco) Invitrogen15400-054
100 μ ; Passoire à cellules mBD Biosciences352360
Solution de collagène (3 mg/ml dans de l’acide acétique à 0,1 %)Sigma, Dorset, Royaume-UniC8919  ;
Filtre seringue Minisart SRP15 (0,2 μ ; m)Sartorius17573ACKMembrane en polytétrafluoréthylène (PTFE)
CD56 microbilles humainesMiltenyi Biotech130-050-401Soyez conscient de la durée de conservation limitée des microbilles
Microbilles anti-fibroblastes, humainesMiltenyi Biotech130-050-601
40 &mu ; m Filtres de pré-séparationMiltenyi Biotech130-041-407
Capteurs à grandes cellulesMiltenyi Biotech130-042-202Ces colonnes sont équipées d’une résistance d’écoulement. L’utilisation de la résistance d’écoulement n’est pas nécessaire pour obtenir les puretés myogéniques élevées décrites ici.
Colonnes LS  ;Miltenyi Biotech130-042-401
Séparateur MiniMacsMiltenyi Biotech130-042-102Ce séparateur s’adapte à la colonne à grandes cellules mais pas à la colonne LS.  ;
MidiMACSMiltenyi Biotech  ;130-042-302
MACS multistandMiltenyi Biotech130-042-303
BSASigmaDoit être stérilisé par filtre avant utilisation
Oil Red OSigmaO0625
Triethyl phosphateSigma538728
Whatman PaperSigmaZ241121-1PAKN° 42, sans cendres. Pour préparer le filtre, pliez le papier filtre circulaire pour faire un demi-cercle, puis pliez à nouveau le demi-cercle en deux pour former un cône. Insérez le cône dans un entonnoir pour le filtrage.  ;
réactif anti-décoloration ProLong Gold, InvitrogenP36930Cela peut être acheté avec ou sans DAPI et n’éteint pas la fluorescence initiale.
AxioVisionCarl ZeissContacter Zeiss
Adobe Photoshop CS5 ExtendedAdobe (acheté auprès de Pugh Computers)ADPH16982*  ;
11088866001Sondes moléculaires de

Références

  1. Mauro, A. Satellite cell of skeletal muscle fibres. J. Cell Biol. 9, 493-495 (1961).
  2. Hawke, T. J., Garry, D. J. Myogenic satellite cells: physiology to molecular biology. J. Appl. Physiol. 91, 534-551 (2001).
  3. Yin, H., Price, F., Rudnicki, M. A.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Explorer plus d’articles

Digestion enzymatiquetri cellulaire activé par billes magnétiquesmarquage immunofluorescentcellules CD56 positivesfibroblastes dérivés du muscleanalyse d'image quantitativefacteurs de transcription nucléairespurification de culture cellulaire