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方法文章

观察脉络丛上皮细胞的纤毛运动 离体

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DOI:

10.3791/52991

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2015年7月13日

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本文内容

摘要

本研究优化了一种详细的光学显微技术,用于实时观察和分析脉络丛上皮细胞纤毛的运动 离体 以及用于超微结构分析的电子显微镜方法。

摘要

脉络丛位于脑室壁内,其主要功能被认为是产生脑脊液。覆盖在脉络丛组织表面的脉络丛上皮细胞(CPECs)具有多种独特的纤毛,但这些纤毛的大多数功能仍有待研究。为了揭示CPEC纤毛的功能,特别是与其运动性相关的作用,已建立了一种ex vivo观察系统,用于监测胚胎期、围产期和出生后时期的纤毛运动。将脉络丛从脑室中分离出来,并在配备微分干涉差光学系统的视频增强对比显微镜下进行观察。在此条件下,开发出一种简单且定量的方法,可在ex vivo状态下连续数小时分析CPEC纤毛的运动特征。接下来,通过扫描电子显微镜观察纤毛在发育过程中的形态学变化,以阐明纤毛形态成熟度与其运动性之间的关系。有趣的是,该方法能够清晰地显示纤毛数量和长度的变化,二者在出生后第2天(P2)达到峰值,而纤毛摆动频率则在P10达到最高,随后在P14突然停止。这些技术将有助于阐明纤毛在各种组织中的功能。尽管相关技术已在先前的报道中发表1,但本研究重点在于详细描述在ex vivo条件下观察CPEC纤毛运动性和形态学的具体技术方法。

引言

纤毛是大多数脊椎动物细胞表面的毛发状突起,因其与一类被称为纤毛病2–4的疾病相关而受到医学研究者的关注。尽管该细胞器广泛存在于各类细胞中,但已报道的纤毛功能多种多样,包括运动性和生物感应功能。例如,黏膜上皮表面的运动纤毛可将黏液5和上皮碎片转运至管道出口,从而通过清除上皮表面物质来预防疾病。此外,在早期发育期和胚胎阶段,纤毛可调控干细胞的增殖6,并参与决定脊椎动物身体的左右不对称性7。

脉络丛上皮细胞(CPECs)是神经上皮细胞的衍生物,覆盖在脑内脉络丛组织的表面,通过产生脑脊液(CSF)在维持颅内环境稳态中发挥重要作用。先前的研究已证明,CPECs具有多个非运动性纤毛,其纤毛上特异性富集G蛋白偶联受体,从而调控脑脊液的生成8。尽管这些纤毛曾被认为属于静止的非运动性纤毛,但研究发现部分CPEC纤毛在新生儿期会表现出短暂的运动性1。这一发现具有重要意义,因为它揭示了所谓的非运动性纤毛并非从发育初期就完全不动,而可能在特定的时间窗口内表现出短暂的运动性,这或许是对特定生理需求和功能的响应9。为了精确描述CPEC纤毛的运动特性,有必要建立一种涵盖CPEC纤毛独特动力学特征分析的ex vivo 观察系统。

关于运动性....

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方案

实验动物的方案和使用已获得山梨大学和早稻田大学机构动物护理与使用委员会的批准。动物护理工作均按照机构指南进行。

1. CPEC 准备

  1. 准备以下仪器和材料:体视显微镜(最好具备底部透射照明功能)、一对已火焰灭菌的钟表匠镊子(Dumont #3 或 #4)、直头手术剪刀(已火焰灭菌)、两个无菌的 10 cm 塑料培养皿(各含 20 ml 冰冷的 Leibovitz L-15 培养基)、35 mm 玻底培养皿(含 2 ml 室温 Leibovitz L-15 培养基)、一个 100 ml 烧杯(盛有 70% 乙醇)、新生小鼠幼崽。
  2. 将一只新生小鼠短暂浸入 70% 乙醇中,随后使用手术剪迅速断头处死。
  3. 立即将头部放入无菌 10 cm 培养皿中的冰冷 Leibovitz L-15 培养基内。
  4. 用钟表匠镊子去除颅骨表面的皮肤,切开颅骨以暴露脑组织,然后切断颅神经以完整分离脑组织。
  5. 将脑组织转移至另一含有冰冷 Leibovitz L-15 培养基的新培养皿中,在体视显微镜下观察,确保脑组织完全浸没在培养基中。
  6. 使脑组织背侧朝上放置,并调整方向,使嗅球位于三点钟位置(适用于右利手操作者),用左手镊子轻轻固定脑组织。
  7. 用右手持精细解剖镊(Dumont #3 或 #4),沿大脑纵裂切开胼胝体及连接大脑半球的下方实质组织。
  8. 轻柔地将大脑....

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结果

工作流程概览见图1,其中包括设备的图像。

CPECs 的活体运动观察

视频 1 展示了从围产期小鼠中分离的脉络丛上皮细胞(CPECs)的动态影像,视频 2 展示了 视频 1 中图像的放大视图。需要注意的是,与视频相比,静态图像中单根纤毛尖端的细节较不清晰。图 2 展示了根据 视频 1 和 视频 2 所示数据追踪的两根纤毛的运动轨迹,这两根纤毛分别表现出摆动和旋转两种不同的运动模式。图 3 展示了对纤毛运动轨迹的简单分析,其中在旋转运动中,两个坐标轴之间的相位差明显可见。

CPEC 纤毛尖端轨迹分析

定量分析每条轨迹的详细方法如

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讨论

该方法的展望

尽管此处描述的技术并未比先前发表的方法提供更详细的纤毛分析,但该技术的意义在于系统的简便性和成本效益,可轻松应用于任何类型的纤毛运动能力筛选 离体特别是,TI Workbench 提供了一个简单且用户友好的界面,使研究人员能够更轻松地观察和分析纤毛运动。目前尚未开发出针对视频增强差分干涉对比显微(video-enhanced contrast-DIC)中无染色纤毛等低对比度物体的有效自动追踪方法。尽管该技术中的纤毛运动追踪为手动操作,但与使用通用图像分析软件包相比,纤毛运动追踪分析所需的工作量已得到最优减少。

样品解剖

准备 离体 CPEC 样本需要快速且轻柔的操作,以保持组织的活性,从而确保纤毛的运动能力 离体由于红细胞污染会模糊观察视野,因此强烈建议用磷酸盐缓冲液对分离的组织进行轻柔而细致的冲洗。为避免出血,操作时需小心谨慎,防止撕裂附着于脉络丛胶质层上的后脉络动脉,该动脉可辨认为一条明显的红褐色丝状.......

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披露

作者声明不存在竞争性经济利益。本文旨在报告在分离的脉络丛组织中观察纤毛运动的详细方法学。相关科学创新已在先前的研究中报道1,8。

致谢

本工作得到了日本文部科学省(MEXT)私立大学研究支援项目:配套资金补助(T.I.)以及日本文部科学省(MEXT)科学研究费补助金(C类)(S.T. 和 K.N.)的支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
活细胞成像所需试剂
用于活细胞成像
乙醇Wako Chemicals057-00456
Leibovitz L-15 培养基Life Technologies11415-064
用于扫描电镜(SEM)样品制备
乙醇Wako Chemicals057-00456
Hank's 平衡盐溶液Life Technologies14170112
多聚甲醛 Merck1040051000
戊二醛 Nacalai Tesque17003-05
乙酸异戊酯Nacalai Tesque02710-95
分子筛 4A 1/8 Wako Chemicals130-08655用于无水乙醇的制备
磷酸盐缓冲液(PBS)Sigma-AldrichD1408
0.1 M 磷酸盐缓冲液配制 100 ml 时,混合 19.0 ml 的 0.1 M NaH2PO4 与 81.0 ml 的 0.1 M Na2HPO4
磷酸二氢钠(二水合物)Nacalai Tesque31718-15
磷酸氢二钠(无水)Nacalai Tesque31801-05
蔗糖Nacalai Tesque30406-25
四氧化锇Nisshin EM300
干冰
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解剖用工具与材料
适用于活细胞成像与扫描电镜(SEM)样品制备
体视显微镜OlympusSZX7
平铺纸巾
Φ10 cm 塑料培养皿
100 ml 烧杯
直头手术剪SansyoS-2B
钟表镊DumontNo.DU-3 或 -4, INOX
用于活细胞成像
玻璃底培养皿Matsunami GlassD110300
用于扫描电镜(SEM)样品制备
铝箔
带聚乙烯盖的 5 ml 玻璃小瓶Nichiden Rika-GlassPS-5A
移液管Samco ScientificSM251-1S用于样品转移
牙签用于样品转移
金-钯离子溅射仪HitachiE-1030
临界点干燥仪HitachiHCP-2
[header]
显微镜设备与材料
用于活细胞成像
倒置显微镜OlympusIX81
100 W 汞灯灯箱及电源OlympusU-ULH 和 BH2-RFL-T3
100 W 汞灯UshioUSH103D
DIC 聚光镜,数值孔径 0.55OlympusIX-LWUCD
电子快门Vincent AssociatesVS35S22M1R3-24 和 VMM-D1可使用手动快门
带通滤光片(400–700 nm,Φ45 mm)Koshin KagakuC10-110621-1
中性密度滤光片(ND 滤光片,Φ45 mm)Olympus45ND6, 45ND25使用 25% 与 6% ND 滤光片组合
带 DIC 元件的物镜(水浸)OlympusUApo 40XW/340, 数值孔径 1.15,配 IX-DPAO40
高速摄像机Allied Vision TechnologiesGE680≥200 Hz 帧率,1 毫秒曝光时间
图像采集与分析软件内部开发软件TI Workbench具备高帧率采集能力
摄像机控制与分析用计算机AppleMac Pro
防振台Meiritsu SeikiAD0806
组织固定重物Warner Instruments切片锚定套件可用 U 形压扁的 Φ0.5 mm 铂丝粘附尼龙网自制
盖玻片(组织固定的替代重物)Matsunami定制盖玻片可用作组织固定重物
用于扫描电镜(SEM)
倒置显微镜OlympusIX81
扫描电子显微镜JEOLJSM-6510

参考文献

  1. Nonami, Y., Narita, K., Nakamura, H., Inoue, T., Takeda, S. Developmental changes in ciliary motility on choroid plexus epithelial cells during the perinatal period. Cytoskeleton. 70 (12), 797-803 (2013).
  2. Bisgrove, B. W., Yost, H. J. The roles of cilia in d....

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重印与许可

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